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龍脊稻作梯田土壤細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)和功能類群及影響因子分析

2021-05-24 13:00王曉彤靳振江周軍波程躍揚(yáng)袁武潘復(fù)靜劉德深
關(guān)鍵詞:龍脊稻作類群

王曉彤,靳振江,2,3*,周軍波,程躍揚(yáng),袁武,潘復(fù)靜,2,3,劉德深,2,3

(1.桂林理工大學(xué)環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院,廣西桂林 541004;2.桂林理工大學(xué)巖溶地區(qū)水污染控制與用水安全保障協(xié)同創(chuàng)新中心,廣西桂林 541004;3.桂林理工大學(xué)廣西環(huán)境污染控制理論與技術(shù)重點實驗室,廣西桂林 541004)

梯田是沿等高線修筑的階梯狀農(nóng)田,是人為開墾又與獨特的自然氣候和地理因素密切相關(guān)的山地耕作生態(tài)系統(tǒng),其垂直特性是區(qū)別于其他農(nóng)業(yè)土地利用方式的顯著特征[1]。與普通稻田相比,稻作梯田屬于山坡耕地,梯田獨特的構(gòu)造能夠增加地表水的下滲量,減緩水流對土壤的沖刷[2],有效防止土壤侵蝕,梯田形式能夠有效改善土壤養(yǎng)分狀況,改善立地條件。梯田海拔高度的變化會導(dǎo)致土壤養(yǎng)分含量、溫度、水分等也隨之變化[3-4],并且梯田的光能利用率普遍高于一般農(nóng)耕地,有助于梯田土壤利用率,發(fā)揮梯田效益[5]。我國的稻作梯田主要分布在南方亞熱帶和熱帶的丘陵和山地地區(qū)。在2018 年第五次全球重要農(nóng)業(yè)文化遺產(chǎn)國際論壇上,包括龍脊稻作梯田在內(nèi)的4個南方山地稻作梯田被聯(lián)合國糧農(nóng)組織列入全球重要農(nóng)業(yè)文化遺產(chǎn)名錄[6]。因此,探討稻作梯田的維持機(jī)制有利于農(nóng)業(yè)文化遺產(chǎn)的保護(hù)和稻作梯田管理的持續(xù)性。

土壤微生物是評價土壤質(zhì)量和健康狀況的重要指標(biāo)之一,對土壤pH 和養(yǎng)分等環(huán)境因子的變化十分敏感[7]。在稻作梯田中,土壤微生物在梯田土壤的生物地球化學(xué)循環(huán)過程中具有重要的作用[8]。目前,關(guān)于梯田土壤微生物方面的研究已有報道,梁勇等[8]的研究發(fā)現(xiàn),元陽梯田稻田土壤微生物數(shù)量總體上在低海拔(1 450~1 500 m)稻田較高,土壤自生固氮菌、放線菌、細(xì)菌和真菌、纖維分解菌的數(shù)量受季節(jié)的影響明顯。王燦等[9]發(fā)現(xiàn),紫外線輻射能夠顯著降低水稻孕穗期、抽穗期和成熟期稻田土壤微生物量碳。這些研究表明,土壤微生物易受水稻生長的影響。另外,古梯田水稻土不同年代序列古菌豐度也有報道[10]。而在休閑期,土壤的干擾較少,微生物相對穩(wěn)定,但對休閑期細(xì)菌多樣性還鮮有研究;而且,土壤細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)和功能類群受哪些重要土壤理化因子的影響尚不清楚。因此,選擇休閑期的龍脊稻作梯田為研究對象,開展兩個方面的研究:一是分析梯田土壤的微生物群落結(jié)構(gòu)和優(yōu)勢功能類群特征;二是明晰梯田土壤中影響優(yōu)勢微生物群落和功能類群的重要環(huán)境因子,以期豐富稻作梯田基礎(chǔ)理論,為稻作梯田的管理提供科學(xué)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 研究區(qū)概況

龍脊稻作梯田距今已有600 多年的歷史[11],堪稱世界梯田原鄉(xiāng),位于廣西壯族自治區(qū)龍勝各族自治縣龍脊鎮(zhèn)平安村龍脊山,距桂林市約80 km。龍脊稻作梯田地處亞熱帶季風(fēng)氣候區(qū),年平均氣溫18.1 ℃,極端最高溫度39.5 ℃,極端最低溫度-4.8 ℃,無霜期314 d,年降雨量1 500~2 400 mm,年均日照時數(shù)1 223 h,年均空氣相對濕度82%。龍脊稻作梯田分布在海拔850~1 060 m 之間,位于東經(jīng)109°32′~110°14′、北緯25°35′~26°17′之間[12]。龍脊稻作梯田高海拔、低氣溫,主要種植粳稻,為單季稻,產(chǎn)量一般為6 000~7 500 kg·hm-2。通常5 月下旬開始灌水插秧,9 月下旬到10 月上旬成熟,收割后秸稈不還田。施肥以無機(jī)復(fù)合肥為主,插秧前施用無機(jī)復(fù)合肥作為基肥,用量為1 050~1 500 kg·hm-2,后期追肥視水稻生長狀況而定。

1.2 供試土壤與樣品采集

2016 年3 月27 日和3 月28 日,在龍脊梯田景區(qū)沿梯田海拔(ALS)高度,大致按照10 m高度差進(jìn)行采樣(圖1),共19 個樣地,參考《土壤農(nóng)業(yè)化學(xué)分析方法》[13]進(jìn)行土壤樣品采集。在每個樣地中隨機(jī)選取3個采樣點,每個樣點采取等量均勻的0~20 cm 耕層土壤[14],3 個樣點均勻混合為1 個樣本。樣本帶回實驗室后,去除植物根系和石塊等雜物,一部分研磨過2 mm 篩,放入-80 ℃冰箱儲存,用于后續(xù)細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)分析;另一部分在陰涼處自然風(fēng)干后研磨,分別過0.85、0.25、0.15 mm 篩后于陰涼處保存,用于測定土壤理化性質(zhì)。

1.3 土壤理化指標(biāo)及養(yǎng)分含量的測定

土壤理化性質(zhì)的分析方法參照《土壤農(nóng)業(yè)化學(xué)分析方法》[13]進(jìn)行,設(shè)樣點平行組。土壤含水率(SWC)的測定采用烘干法;pH 的測定采用無CO2蒸餾水作浸提劑,按照土水1∶2.5的比例浸提,用精密pH計(型號:IS128C)直接測定;土壤有效磷(AP)采用鹽酸-氟化銨法測定;土壤有機(jī)碳(SOC)采用濃硫酸-重鉻酸鉀外加熱法測定;堿解氮(AN)采用堿解擴(kuò)散法測定;土壤總氮(TN)采用濃硫酸消煮-凱氏定氮法測定;土壤總磷(TP)采用碳酸鈉熔融法測定。土壤理化性質(zhì)見表1。

1.4 高通量測序

用混合樣進(jìn)行微生物測序。使用環(huán)境樣本DNA提取試劑盒(Power Soil,QIAGEN 公司)進(jìn)行基因組DNA 抽提后,使用0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA。按指定測序區(qū)域,合成帶有Barcode 的特異引物對樣本的16S rRNA V4 區(qū)域進(jìn)行擴(kuò)增[15],引物序列為515F(5′-GTG YCA GCM GCC GCG GTA A-3′)和806R(5′-GGA CTA CHV GGG TWT CTA AT-3′)。每個樣本進(jìn)行3 次重復(fù),每個PCR 反應(yīng)終止于線性擴(kuò)增期。PCR 結(jié)束后,將同一樣本的PCR 產(chǎn)物混合后用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,使用OMEGA 膠回收試劑盒切膠回收PCR 產(chǎn)物,TE 緩沖液洗脫回收目標(biāo)DNA 片段。測序由成都羅寧生物公司采用PE250 測序方式在Illumina 測序技術(shù)的分析平臺上完成。雙端測序得到的PE reads首先使用FLASH進(jìn)行拼接,同時對序列質(zhì)量進(jìn)行控制,在去除低質(zhì)量堿基及接頭污染序列等操作過程后完成數(shù)據(jù)過濾,得到可供后續(xù)分析的高質(zhì)量目標(biāo)序列。在97%的相似水平上使用UPARSE 算法(默認(rèn))進(jìn)行OTUs(可操作分類單元)的聚類。挑選出OTUs 的代表性序列。使用Uchime 去除嵌合體。使用SILVA 等數(shù)據(jù)庫(默認(rèn))或Greengene進(jìn)行物種分類信息的劃分,同時去除注釋為葉綠體、線粒體以及非細(xì)菌或古菌界的OTUs。α-多樣性可以反映細(xì)菌群落的豐度和多樣性,通過Chao 指數(shù)和Ace 指數(shù)來分析樣品中細(xì)菌群落的豐富度,Shannon指數(shù)和Simpson指數(shù)來分析樣品中細(xì)菌群落的多樣性,Observed 和Coverage指數(shù)來表示測序深度。

圖1 采樣點示意圖Figure 1 Schematic diagram of sampling points

表1 龍脊稻作梯田土壤的理化性質(zhì)Table 1 Physico-chemical properties of paddy soils in Longji rice terraces(0~20 cm)

1.5 數(shù)據(jù)分析與統(tǒng)計

采用EXCEL 2010 進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,使用FAPROTAX在線軟件進(jìn)行細(xì)菌功能預(yù)測,基于SILVA數(shù)據(jù)庫構(gòu)建細(xì)菌域全譜系的基因功能圖譜,進(jìn)行細(xì)菌功能分類預(yù)測。用SPSS 25.0 進(jìn)行Pearson 相關(guān)性分析,使用OmicShare Tools 進(jìn)行主成分分析(PCoA)。用Origin 2017 繪制優(yōu)勢細(xì)菌門和屬的群落組成圖。將數(shù)量占總OTUs 數(shù)0.3%以上的OTUs 界定為優(yōu)勢OTUs[16],利用Rstudio 和TBtools 繪制優(yōu)勢OTUs 和細(xì)菌功能類群與環(huán)境因子的相關(guān)性熱圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 龍脊稻作梯田稻田土壤細(xì)菌的多樣性分析

本研究中,19 個采樣點共得到3 991 個細(xì)菌OTUs,它們分屬于細(xì)菌界的48 門、112 綱、239 目、454科和792 屬。從圖2 龍脊稻作梯田稻田土壤細(xì)菌的α-多樣性可知,反映細(xì)菌群落豐富度的Chao1指數(shù)和Ace 指數(shù)分別為1 183~1 984和1 295~2 173;反映細(xì)菌群落多樣性的Shannon 指數(shù)和Simpson 指數(shù)分別為4.52~5.16 和0.946~0.976 之間;表示測序深度的Observed指數(shù)和Coverage指數(shù)分別為819~1 271和0.932~0.961。從表2 土壤環(huán)境因子與土壤微生物α-多樣性之間的相關(guān)性可知,Simpson 指數(shù)與ALS 呈顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05),而與土壤pH 呈顯著正相關(guān)(P<0.05),說明土壤細(xì)菌多樣性受到ALS和土壤pH的影響。

圖2 龍脊稻作梯田土壤微生物α-多樣性指數(shù)Figure 2 Soil microbial α-diversity index in Longji rice terraces

表2 土壤微生物α-多樣性與環(huán)境因子之間的相關(guān)性(r)Table 2 Correlation between soil microbial α-diversity and environmental factors(r)

基于Bray-Curtis 距離算法對不同樣點土壤細(xì)菌群落組成進(jìn)行主成分分析(PCoA),結(jié)果如圖3 所示,軸1和軸2的差異貢獻(xiàn)值共為37.91%。從圖3可以看出,樣點18 和19、樣點16 和17、樣點13 和14、樣點8和9、樣點3 和4、樣點6 和7 與樣點1 和2 兩兩之間在海拔高度上比較接近,表明細(xì)菌β-多樣性樣點在海拔高度上的分布以小集群分布為主。

圖3 龍脊稻作梯田細(xì)菌β-多樣性基于Bray-Curtis距離算法的主成分分析Figure 3 Principal component analysis of bacterial β-diversity in Longji rice terraces based on Bray-Curtis distance algorithm

2.2 龍脊稻作梯田土壤細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)分析

本研究把篩選到門和屬水平的OTUs 序列豐度占總OTUs 豐度0.3%以上定義為優(yōu)勢門和優(yōu)勢屬,Others 表示未分類的和OTUs 序列豐度占總OTUs 豐度0.3%以下的門和屬。土壤細(xì)菌在門和屬水平的組成及相對豐度如圖4所示。

從圖4a 可以看出,在門水平上,龍脊稻作梯田共有變形菌門(Proteobacteria)、綠彎菌門(Chloroflexi)、酸桿菌門(Acidobacteria)、放線菌門(Actinobacteria)、厚壁菌門(Firmicutes)、WD272 門、芽單胞菌門(Gemmatimonadetes)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、浮霉菌門(Planctomycetes)、硝化螺旋菌門(Nitrospirae)和疣微菌門(Verrucomicrobia)等11 個優(yōu)勢門,它們的豐度分別為49.22%、29.18%、5.32%、4.18%、3.76%、2.98%、1.61%、1.06%、0.71%、0.66%和0.40%,其OTUs 豐度合計占細(xì)菌總OTUs的99.08%。從圖4b可以看出,在屬水平上,龍脊稻作梯田共有鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas)、羅思河小桿菌屬(Rhodanobacter)、酸桿菌屬(Acidibacter)、不動桿菌屬(Acinetobacter)和端瘤桿菌屬(Telmatobacter)、青枯菌屬(Ralstonia)、嗜酸棲熱菌屬(Acidothermus)、慢生根瘤菌屬(Bradyrhizobium)、假雙頭斧形菌屬(Pseudolabrys)、土壤芽孢桿菌屬(Solibacillus)、芽孢八疊球菌屬(Sporosarcina)、嗜冷芽孢桿菌屬(Psychrobacillus)、鏈球菌屬(Streptococcus)、陶厄氏菌屬(Thauera)、Rhizomicrobium屬和假單胞菌屬(Pseudomonas)等16個優(yōu)勢屬,OTUs豐度合計占細(xì)菌總OTUs 的33.98%。其中樣點5、11、16、17、18和19 的最優(yōu)勢屬和次優(yōu)勢屬分別為羅思河小桿菌屬和鞘氨醇單胞菌屬,豐度分別為8.72%~21.53%和7.13%~10.27%;其余13 個樣點的最優(yōu)勢屬和次優(yōu)勢屬分別為鞘氨醇單胞菌屬和羅思河小桿菌屬,豐度分別為8.70%~20.87%和2.34%~11.57%。

圖4 龍脊稻作梯田細(xì)菌門(a)和屬水平(b)的群落組成Figure 4 Bacterial community composition at the level of phylum(a)and genus(b)in Longji rice terraces

2.3 龍脊稻作梯田細(xì)菌群落與環(huán)境因子的相關(guān)分析

細(xì)菌優(yōu)勢OTUs與環(huán)境因子的相關(guān)性分析結(jié)果如圖5 所示,pH 與OTU36(Rhodospirillales,紅螺菌目)等4 個優(yōu)勢OTUs 呈顯著的正相關(guān)關(guān)系,與OTU1(Sphingomonas,鞘氨醇單胞菌屬)和OTU2(Chloroflexi,綠彎菌門)呈顯著負(fù)相關(guān)關(guān)系。ALS 與OTU23(Ktedonobacteria,纖線桿菌綱)等3 個優(yōu)勢OTUs 呈顯著的正相關(guān)關(guān)系,與OTU496(Psychrobacillus,嗜冷芽孢桿菌屬)和OTU89(紅螺菌目)呈顯著負(fù)相關(guān)。

圖5 龍脊稻作梯田細(xì)菌優(yōu)勢OTUs與環(huán)境因子的相關(guān)性Figure 5 Correlation between bacterial OTUs for advantage and environmental factors of Longji rice terraces

AN 與OTU20(綠彎菌門)等4 個優(yōu)勢OTUs 呈顯著正相關(guān),與OTU10(纖線桿菌綱)呈顯著負(fù)相關(guān);C/N 與OTU9(Gemmatimonadaceae,芽單胞菌科)等5個優(yōu)勢OTUs 呈顯著正相關(guān),與OTU4789(綠彎菌門)呈顯著負(fù)相關(guān)。另外,AP 與3 個優(yōu)勢OTUs 呈顯著正相關(guān),SOC 和TP 均與1 個優(yōu)勢OTUs 呈顯著正相關(guān)。以上結(jié)果表明,影響龍脊稻作梯田土壤細(xì)菌群落豐度的主要環(huán)境因子為pH、C/N、AN和ALS。

2.4 龍脊稻作梯田土壤細(xì)菌功能的預(yù)測

圖6 是龍脊稻作梯田土壤細(xì)菌功能菌與土壤理化因子的相關(guān)性熱圖,共獲得51 個功能類群,相對豐度占總OTUs 相對豐度的70.36%。相關(guān)性分析結(jié)果顯示,C/N 與發(fā)酵類、碳?xì)浠衔锝到忸?、芳族烴降解類和脂肪族非甲烷烴降解類等4 個功能類群豐度呈顯著正相關(guān),與好氧氨氧化菌功能類群豐度呈顯著負(fù)相關(guān);pH 與暗氫氧化類和碳?xì)浠衔锝到忸?、捕食者或外來寄生蟲類、芳族烴降解類和脂肪族非甲烷烴降解類等5 個功能類群的豐度呈顯著正相關(guān);ALS 與3類硫呼吸類功能細(xì)菌呈顯著正相關(guān),與胞內(nèi)寄生類細(xì)菌呈顯著負(fù)相關(guān);AN與反硝化作用類、一氧化二氮反硝化作用類、硝酸鹽反硝化類和亞硝酸鹽反硝化類等4 個功能類群豐度呈顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05)。另外,TN與2個功能類細(xì)菌呈顯著正相關(guān),含水率、AP和TP分別與1 個功能類細(xì)菌呈顯著正相關(guān)。以上結(jié)果表明,影響龍脊稻作梯田土壤細(xì)菌群落功能類群的主要環(huán)境因子為pH、C/N、ALS和AN。

3 討論

3.1 龍脊稻作梯田細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)與土壤因子的關(guān)系

土壤微生物的群落組成及多樣性是反映土壤微生物群落生態(tài)功能的重要指標(biāo)[16-18]。在本研究中,Simpson 指數(shù)與ALS 和pH 分別呈顯著負(fù)相關(guān)和顯著正相關(guān),說明海拔的降低和pH 的提高均會增強(qiáng)土壤微生物的物種多樣性和均勻度,從而增加土壤生態(tài)系統(tǒng)的穩(wěn)定性。土壤微生物和土壤環(huán)境因子都是維持土壤生態(tài)系統(tǒng)穩(wěn)定的重要組成部分[19],微生物的豐富度和數(shù)量的增大都會使整個土壤生態(tài)系統(tǒng)的穩(wěn)定性得到明顯提升,也使其多樣性十分明顯[20]。張媚等[21]研究表明,山核桃園土壤pH值降低,土壤微生物的多樣性也隨之降低,土壤微生物優(yōu)勢菌群的群落結(jié)構(gòu)改變,山核桃樹體抗蟲抗病能力減弱。相似的結(jié)果也出現(xiàn)在茶園中,當(dāng)茶園土壤pH 低于6.0 時,微生物的生長活性隨之減弱[22];反之,施用石灰將土壤pH 從4.1提高至6.88,土壤中細(xì)菌和放線菌數(shù)量提高近百倍[23],從而改善茶樹長勢。由此說明土壤微生物多樣性與土壤生態(tài)系統(tǒng)穩(wěn)定性之間息息相關(guān)。土壤pH會直接影響植物生長和生理代謝,從而影響其對土壤養(yǎng)分的吸收利用,在土壤能量流動和物質(zhì)循環(huán)過程中又反過來影響土壤微生物的多樣性[21]。侯建偉等[24]研究發(fā)現(xiàn),隨著土壤pH 的升高,細(xì)菌群落Simpson 指數(shù)也隨之增加,說明pH 是決定細(xì)菌Simpson 多樣性指數(shù)的重要因素[25]。在本研究中,受地質(zhì)背景影響,龍脊稻作梯田土壤pH值呈酸性,梯田開墾時間早,耕作時間長,土壤受人為干擾強(qiáng)烈[8],不同樣地之間肥料施用的種類、用量和時間差異較大,影響了細(xì)菌群落多樣性。從這個意義上說,提高土壤pH 可以提高土壤微生物多樣性和均勻度,從而增強(qiáng)龍脊稻作梯田土壤生態(tài)系統(tǒng)的穩(wěn)定性。有研究表明,麥作耕地環(huán)境pH 值從4.0 升至8.3 時,相應(yīng)的細(xì)菌拷貝數(shù)也隨之增加了約3 倍,且細(xì)菌群落多樣性也增加了1 倍[26-27]。茶園常用石灰調(diào)節(jié)酸性土壤pH,pH 每升高1~2 個單位,土壤細(xì)菌數(shù)量會增加10 倍以上[28]。細(xì)菌群落生長和pH 值正相關(guān),并且這種現(xiàn)象不會因土壤類型不同而變化[29]。

圖6 龍脊稻作梯田土壤理化因子與細(xì)菌功能類群相關(guān)熱圖Figure 6 Heatmap of soil physicochemical factors with bacterial functional group in Longji rice terraces

在門水平上,變形菌門為最優(yōu)勢菌門。在三江平原濕地[30]、松花江下游沿江濕地[31]、秦嶺中段北坡[32]和青藏高原[33]不同生境的土壤中,變形菌門也是細(xì)菌群落的優(yōu)勢菌門,表明該門的細(xì)菌有較寬的生態(tài)位,對土壤環(huán)境有高度適應(yīng)性。理鵬等[34]研究表明,變形菌門細(xì)菌的代謝與碳氮循環(huán)密切相關(guān),高豐度的變形菌門有利于土壤肥力的保持。在本研究中,β-變形菌、δ-變形菌和α-變形菌均屬于變形菌門中的優(yōu)勢綱,β-變形菌可降解烴類芳香族類化合物,參與氮循環(huán)。δ-變形菌在化能自養(yǎng)的代謝過程中通過還原硫酸鹽升高生境的pH[35]。α-變形菌包含與植物進(jìn)行共生作用的細(xì)菌(如根瘤菌屬)[36],表明這個門的細(xì)菌群落在水稻吸收利用土壤養(yǎng)分的過程中發(fā)揮著重要的作用。圖5 相關(guān)性分析表明,土壤微生物群落組成和豐度受pH、ALS、AN 和C/N 這些驅(qū)動因子的敏感調(diào)節(jié)。有研究顯示,土壤pH 是影響土壤新陳代謝和細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)和多樣性的重要因子[37-39],能顯著影響稻田中細(xì)菌的多樣性和細(xì)菌類群的分布[40]。本研究中,pH 與細(xì)菌Simpson 指數(shù),門和屬水平上的綠彎菌門、Rhizomicrobium屬和假雙頭斧形菌屬的豐度以及OTU36(變形菌門)、OTU28(放線菌門)等4 個OTUs 的豐度呈顯著正相關(guān)(P<0.05),表明pH 顯著影響了龍脊稻作梯田土壤細(xì)菌群落組成和豐度。龍脊梯田地處溫暖濕潤的亞熱帶地區(qū),水分長期在巖石裂隙中移動,對堿土金屬有較強(qiáng)的淋濾作用,促使土壤酸化,使pH 降低;同時,淋濾作用促進(jìn)土壤黏化,改變土壤物理性質(zhì),使土壤蓄水保水能力增強(qiáng),經(jīng)過長期耕作,形成水稻土[41],為這些細(xì)菌創(chuàng)造了適宜生存的穩(wěn)定條件。另外,海拔高度變化對優(yōu)勢物種具有一定的影響[42],本研究中,ALS 與優(yōu)勢屬鞘氨醇單胞菌屬、優(yōu)勢OTUs中OTU1(鞘氨醇單胞菌屬)等3 個OTUs 的豐度呈顯著正相關(guān),說明海拔高度變化影響了龍脊稻作梯田的土壤細(xì)菌群落結(jié)構(gòu);AN 與OTU20(綠彎菌門)等4 個優(yōu)勢OTUs 的豐度呈顯著正相關(guān)。在本研究中,綠彎菌門為次優(yōu)勢菌門,這個門的細(xì)菌在廣西的石灰土[16]和太湖地區(qū)的黃泥土[43]中均為優(yōu)勢菌門,是進(jìn)行光合作用的自養(yǎng)微生物,具有固碳作用,因此可使土壤氮轉(zhuǎn)化消耗減少,促進(jìn)堿解氮含量提升[44]。土壤C/N 是土壤質(zhì)量的重要反映,在本研究中,C/N 與芽單胞菌門、厚壁菌門、浮霉菌門、鏈球菌屬的細(xì)菌和OTU25等5 個OTUs 的豐度呈極顯著正相關(guān)。研究表明,芽單胞菌主要進(jìn)行碳氮的固定[45],能夠?qū)⒏鞣N糖分子轉(zhuǎn)化為碳化合物[46],維持土壤中碳含量水平的穩(wěn)定,同時土壤養(yǎng)分中的碳氮含量也顯著影響芽單胞菌的豐度。表明稻作梯田較高的土壤有機(jī)碳水平和碳氮養(yǎng)分的相對平衡,為土壤細(xì)菌提供了充足的碳氮養(yǎng)分供應(yīng),促進(jìn)微生物的生長,提高土壤微生物多樣性[47-48]。

3.2 龍脊稻作梯田細(xì)菌功能類群與土壤因子的關(guān)系

土壤細(xì)菌是土壤微生物中群落關(guān)系與功能最復(fù)雜多樣的生物,土壤環(huán)境微小變化可使土壤細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)和功能發(fā)生顯著變化,同時這種變化能夠反作用于環(huán)境[37]。反硝化過程會將NO-3還原成N2,不僅會造成氮損失,還會產(chǎn)生具有溫室效應(yīng)的中間產(chǎn)物N2O[49]。在本研究中,AN 與反硝化功能類群的豐度呈顯著負(fù)相關(guān),C/N 與反硝化功能類群的豐度呈正相關(guān),說明提高氮素的可利用性可以降低由反硝化造成的氮損失[50],可能是由于細(xì)菌將獲得的氮素快速合成為新陳代謝所需要的酶,提高自身的生存競爭力。屬水平和優(yōu)勢OTUs中的羅思河小桿菌和慢生根瘤菌都可參與反硝化過程,前者能在低pH 時進(jìn)行反硝化作用,后者在稻田中對N2O 釋放有貢獻(xiàn)[51],因此可通過適當(dāng)提高土壤pH 來抑制反硝化功能類群的豐度,減少溫室氣體的產(chǎn)生。另外,ALS 與硫呼吸類細(xì)菌、硫酸鹽呼吸類細(xì)菌和硫化合物呼吸類細(xì)菌功能類群豐度呈顯著正相關(guān),這三類功能菌在OTUs 水平上包括了屬于硫酸鹽還原菌類的脫硫弧菌屬、脫硫桿菌屬、互營桿菌屬和硫還原菌屬等。由于微生物在驅(qū)動硫化合物的氧化還原過程中也與其他元素(碳、氮和磷等)循環(huán)耦合[52],因此海拔可能和土壤碳氮磷等養(yǎng)分共同影響土壤細(xì)菌硫循環(huán)功能類群的豐度。

烴類物質(zhì)在土壤中的積累,會改變土壤有機(jī)質(zhì)的組成和結(jié)構(gòu)[53],而農(nóng)藥污染是烴類物質(zhì)進(jìn)入土壤的重要來源[54]。在本研究中,環(huán)境因子C/N 和pH 均與烴類降解類功能菌顯著正相關(guān),表明土壤中C/N 和pH升高能夠提高烴類降解功能菌的豐度。微生物降解烴類物質(zhì)效率高、對環(huán)境友好,是修復(fù)烴類污染的最佳選擇[53]。本研究中,烴類降解功能類群中的優(yōu)勢屬鞘氨醇單胞菌屬,對芳香族化合物具有極強(qiáng)的降解能力[55-56]。羅思河小桿菌屬對難降解的氯化芳族化合物(如林丹)和各種芳族化合物也具有潛在降解能力[57-58]。假單胞菌屬對農(nóng)藥、石油烴類都具有良好的降解效果[53]。因此提高土壤有機(jī)碳的含量,可以提高C/N,為細(xì)菌提供更多的可利用碳源,提高烴類降解功能類群豐度,從而降低農(nóng)藥的殘留。龍脊梯田土壤pH 偏酸性,較低的pH 不利于烴類降解功能菌類群豐度的提高,因此,通過改良土壤等方法提高土壤pH可以提高烴類降解功能菌類群的豐度和多樣性,加快農(nóng)藥降解速率。

4 結(jié)論

(1)龍脊稻作梯田土壤細(xì)菌群落的優(yōu)勢門為變形菌門和綠彎菌門,優(yōu)勢屬為鞘氨醇單胞菌屬和羅思河小桿菌屬,土壤pH、碳氮比、海拔和堿解氮是顯著影響土壤細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)的環(huán)境因子。

(2)龍脊稻作梯田土壤細(xì)菌的功能類群有51 個,受環(huán)境因子影響的主要功能類群為反硝化類、硫呼吸類和烴降解類功能類群,主要的環(huán)境因子為pH、碳氮比、海拔和堿解氮。

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