凌霄雁 林 栩 鄭心彤 黃海庭 古賢君 梁 釗 覃 卿 杜秀日 唐志明 王 晨 韋美理
(右江民族醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院,百色533000)
足細(xì)胞已成為治療腎臟疾病的直接靶點(diǎn),幾乎腎小球疾病都涉及足突(foot procfesses,F(xiàn)Ps)回縮消失、足細(xì)胞脫落或凋亡等足細(xì)胞損傷,最終引起蛋白尿、腎小球硬化[1]。而足細(xì)胞的正常結(jié)構(gòu)和功能是由許多足細(xì)胞基因及其產(chǎn)物相互作用來維持的,例如裂孔隔膜相關(guān)蛋白nephrin、podocin、CD2AP和synaptopodin,它們?cè)诜€(wěn)定腎小球?yàn)V過系統(tǒng)中共同發(fā)揮作用。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn)足細(xì)胞基因的突變、缺乏會(huì)引起或加劇足細(xì)胞損傷,但是至今其中的分子病理生理機(jī)制尚未完全闡明[2-3]。
miRNA已被證明對(duì)足細(xì)胞的穩(wěn)態(tài)至關(guān)重要,它是一種能靶向調(diào)節(jié)特定基因的非編碼小RNA,足細(xì)胞中miRNA的兩種必需酶Dicer或Drosha特異性損失則導(dǎo)致小鼠FPs消失、足細(xì)胞凋亡,出現(xiàn)明顯的蛋白尿并迅速發(fā)展為腎衰竭[4]。TGF-β1作為常用于誘導(dǎo)腎細(xì)胞損傷的因子,前期課題組已在TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞損傷模型中發(fā)現(xiàn)miR-155表達(dá)增加,其表達(dá)水平可能與CD2AP、synapto?podin具有相關(guān)性,然而miR-155是否參與TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞損傷,其中關(guān)系如何未明確,本實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步深入研究miR-155與足細(xì)胞蛋白的調(diào)控關(guān)系,為miR-155在足細(xì)胞損傷中的作用提供理論和實(shí)驗(yàn)依據(jù)[5]。
1.1 材料 腎小球足細(xì)胞株(MPC5,上海復(fù)旦大學(xué)細(xì)胞中心);RPMI1640培養(yǎng)基(美國Gibco公司);胎牛血清(以色列BI-04-002-1A);胰蛋白酶(美國Gibco公司);miR-155-5p模擬物(miR-155 mimics)、miR-155-5p抑制劑(miR-155 inhibitor)、miR-155 NC陰性對(duì)照(廣州RiboBio公司);脂質(zhì)體2000轉(zhuǎn)染試劑(美國Invitrogen公司);Opti-MEM無血清培養(yǎng)基(美國Gibco公司);重組人TGF-β1(美國PeproTech公司);RT-PCR試劑盒(日本TaKaRa公司);Mir-X miRNA FirstStrand Synthesis Kit(美國Clontech公司);PCR引物由生工生物工程(上海)股份有限公司設(shè)計(jì)并合成(引物序列見表1);Podocin、CD2AP、synaptopodin、GAPDH兔抗小鼠一抗和HRP標(biāo)記的羊抗兔二抗(美國Proteintech公司);磷酸酶抑制劑混合物、蛋白酶抑制劑混合物(北京康為世紀(jì)公司);BCA蛋白定量試劑盒(中國碧云天公司);蛋白質(zhì)提取試劑盒、ECL發(fā)光顯影液(美國Millipore公司);4%多聚甲醛(上海Absin公司),Alexa Fluor 594熒光素標(biāo)記兔抗IgG(美國CST公司);熒光定量PCR儀(瑞士Roche公司);凝膠成像系統(tǒng)(上海天能公司);免疫熒光顯微鏡(日本Olympus公司)。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 培養(yǎng)方法參考本課題組的前期研究[5]。在含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液,于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),細(xì)胞長滿至80%~90%時(shí)用胰蛋白酶消化傳代,放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。用細(xì)胞免疫熒光染色鑒定足細(xì)胞是否分化成熟。
1.2.2 細(xì)胞轉(zhuǎn)染與藥物處理 以0.4×105~1×105個(gè)細(xì)胞種于6孔板中,待各組細(xì)胞融合至50%~70%后分別將Cy3 miR-155 NC、miR-155 mimics/mimics NC、miR-155 inihibitor/inhibitor NC及Lipo?fectamineTM2000加入Opti-MEM無血清培養(yǎng)基中混勻,靜置5 min,然后相對(duì)應(yīng)混合,輕輕吹打混勻,室溫靜置20 min后加入6孔板細(xì)胞中,在培養(yǎng)箱孵育4~6 h。①用免疫熒光倒置顯微鏡隨機(jī)取3個(gè)高倍鏡視野,觀察Cy3 miR-155 NC紅色熒光的細(xì)胞數(shù)占總細(xì)胞數(shù)的百分比(轉(zhuǎn)染細(xì)胞率=熒光表達(dá)細(xì)胞數(shù)/總細(xì)胞數(shù)×100%),取其平均值作為轉(zhuǎn)染效率。②6孔板細(xì)胞中加入TGF-β1干預(yù),終濃度為12 ng/ml,繼續(xù)培養(yǎng)進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
表1 熒光定量PCR引物序列Tab.1 Primers of RT-PCR
1.2.3 細(xì)胞分組 ①檢測(cè)正常組、TGF-β1組miR-155及蛋白CD2AP表達(dá)量;②分為miR-155 mimics+TGF-β1組、miR-155 mimics NC+TGF-β1組和miR-155 inhibitor+TGF-β1組、miR-155 inhibitor NC+TGF-β1組,在轉(zhuǎn)染(0 h、24 h、48 h、72 h)收集細(xì)胞檢測(cè)miR-155表達(dá)量;③分為正常組、TGF-β1組、TGF-β1+mimics組、TGF-β1+mimics NC組、TGF-β1+inhibitor組、TGF-β1+inhibitor NC組,給予TGF-β1干預(yù)48~72 h收集細(xì)胞進(jìn)行檢測(cè)。
1.2.4 RT-PCR檢測(cè)足細(xì)胞miRNA-155、Podo?cin、CD2AP、Synaptopodin mRNA的表達(dá) 按1.2.3進(jìn)行干預(yù)后,用TRIzol提取各實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞的總RNA,用紫外分光光度計(jì)進(jìn)行總RNA的濃度和純度檢測(cè),按照TaKaRa試劑盒說明書進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄和qRT-PCR,以GAPDH作為內(nèi)參,miRNA內(nèi)參為U6,反應(yīng)條件:變性95℃30 s,反應(yīng)95℃5 s,延伸60℃30 s,共40個(gè)循環(huán),以2-ΔΔCt法計(jì)算相對(duì)表達(dá)量。
1.2.5 Western blot檢測(cè)足細(xì)胞Podocin、CD2AP、Synaptopodin蛋白的表達(dá) 各組細(xì)胞按1.2.3進(jìn)行干預(yù)后用RIPA裂解液充分裂解細(xì)胞,提取各組細(xì)胞總蛋白,并用BCA法測(cè)定蛋白濃度。將蛋白質(zhì)樣品與蛋白質(zhì)上樣緩沖液混勻,100℃下反應(yīng)3~5 min充分變性,冷卻至室溫,取30~50μg蛋白樣品進(jìn)行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳,300 mA恒流濕轉(zhuǎn)至PVDF膜,封閉液室溫封閉1 h,加一抗(Podocin 1∶400,CD2AP 1∶1 000,synaptopodin 1:1 000,GAPDH 1∶10 000),4℃孵育搖勻過夜。TBST洗膜3次,加入HRP標(biāo)記的二抗(1∶5 000)室溫孵育2 h。TBST洗膜3次,用化學(xué)發(fā)光液進(jìn)行顯影,凝膠成像系統(tǒng)采集圖像,Image J軟件分析蛋白條帶灰度值。
1.2.6 細(xì)胞免疫熒光法 用PBS洗細(xì)胞3次,4%多聚甲醛室溫下固定15 min,PBS洗3次,0.3%Tri?tonX-100室溫破膜10 min,PBS洗3次,山羊血清室溫封閉1 h,加入一抗(CD2AP,1∶100),4℃搖床過夜,PBS洗3次,加入熒光二抗(1∶500)室溫避光孵育1 h,滴加DAPI復(fù)染5 min后防熒光淬滅劑封片,免疫熒光顯微鏡下觀察、攝片,Image Pro Plus圖像分析軟件分析熒光強(qiáng)度。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS20.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,符合正態(tài)性分布的資料以±s表示,兩組間比較采用t檢驗(yàn);多組間比較用單因素方差分析(Oneway ANOVA),兩兩比較用LSD-t檢驗(yàn);轉(zhuǎn)染后miR-155表達(dá)隨時(shí)間變化的比較采用兩因素重復(fù)測(cè)量方差分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 足細(xì)胞分化鑒定 應(yīng)用細(xì)胞免疫熒光染色檢測(cè)足細(xì)胞特異性蛋白CD2AP,熒光顯微鏡觀察顯示染色明顯,CD2AP分布于胞漿、細(xì)胞周邊、次級(jí)突起(圖1),此為分化足細(xì)胞CD2AP的分布的特征。用于實(shí)驗(yàn)的細(xì)胞均為分化成熟的足細(xì)胞。
圖1 CD2AP在足細(xì)胞中的表達(dá)和分布(×200)Fig.1 Expression and distribution of CD2AP in podocytes(×200)
圖2 miR-155和CD2AP在TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞中的表達(dá)Fig.2 Expressions of miR-155 and CD2APin podocyte in?duced by TGF-β1
2.2 TGF-β1誘導(dǎo)足細(xì)胞miR-155和蛋白CD2AP表達(dá)改變 用TGF-β1處理足細(xì)胞72 h后提取細(xì)胞,與正常組相比,TGF-β1處理可使足細(xì)胞中miR-155的表達(dá)顯著升高,CD2AP的蛋白表達(dá)水平顯著降低(P<0.05,圖2)。這與本課題組前期實(shí)驗(yàn)TGF-β1誘導(dǎo)足細(xì)胞損傷結(jié)果一致[5]。
2.3 miR-155轉(zhuǎn)染足細(xì)胞后不同時(shí)間的miR-155表達(dá)變化 轉(zhuǎn)染成功指示劑Cy3 miR-155 NC轉(zhuǎn)染入足細(xì)胞,24 h后用倒置熒光顯微鏡觀察轉(zhuǎn)染熒光情況,紅色熒光明顯分布于細(xì)胞內(nèi),轉(zhuǎn)染效率為90%左右(圖3A)。轉(zhuǎn)染miR-155 mimics或miR-155 in?hibitor 0 h、24 h、48 h、72 h,用RT-PCR檢測(cè)miR-155的表達(dá)。重復(fù)測(cè)量方差分析結(jié)果顯示:對(duì)照組NC+TGF-β1的0 h和24 h miR-155表達(dá)水平無明顯差異(P>0.05);mimics+TGF-β1組24 h和0 h相比,miR-155表達(dá)水平增加(P<0.05);inhibitor+TGF-β1組24 h和0 h相比,miR-155表達(dá)水平差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。轉(zhuǎn)染24 h、48 h、72 h:①不同的時(shí)間點(diǎn)miR-155表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);②不同組間miR-155表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);③不同轉(zhuǎn)染組和觀察時(shí)間之間存在交互作用(P<0.05)。miR-155 mimics+TGF-β1組在轉(zhuǎn)染48 h、72 h后miR-155表達(dá)水平上升(P<0.05),NC+TGF-β 1組轉(zhuǎn)染48 h、72 h后miR-155水平稍上調(diào)(P<0.05),但mimics+TGF-β1組與mimics NC+TGF-β1組比,miR-155表達(dá)水平增加(P<0.05),而miR-155 inhibitor+TGF-β1組在轉(zhuǎn)染miR-155 inhibitor 48、72 h后miR-155表達(dá)水平下降(P<0.05),inhibitor NC+TGF-β1組miR-155的表達(dá)水平上調(diào)(P<0.05),inhibitor+TGF-β1組與inhibitor NC+TGF-β1組比,miR-155表達(dá)水平降低(P<0.05),miR-155 inhibitor可能抑制了TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞miR-155水平的表達(dá)(圖3)。以上說明miR-155可能參與了TGF-β1對(duì)足細(xì)胞的作用。
圖3 miR-155在足細(xì)胞中的轉(zhuǎn)染效果Fig.3 Transfection effects of miR-155 in podocytes
2.4 轉(zhuǎn)染miR-155 mimics和miR-155 inhibitor后TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞miR-155表達(dá)水平的變化 各組與正常組比,miR-155的表達(dá)量差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),與TGF-β1組相比,miR-155 mimics的轉(zhuǎn)染顯著上調(diào)miR-155的表達(dá)量(P<0.05),而轉(zhuǎn)染miR-155 inhibitor后miR-155表達(dá)下調(diào),差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),TGF-β1+mimics NC、TGF-β 1+inhibitor NC組與TGF-β1處理組相比miR-155的表達(dá)水平無明顯變化(表2)。結(jié)果進(jìn)一步表明,miR-155 mimics可上調(diào)TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞miR-155表達(dá),miR-155 inhibitor則抑制TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞miR-155表達(dá)。
表2 miR-155 mimics/miR-155 inhibitor轉(zhuǎn)染后miR-155表達(dá)水平的變化(xˉ±s,n=3)Tab.2 Changes in miR-155 expression level after miR-155 mimics/miR-155 inhibitor transfection(xˉ±s,n=3)
表3 miR-155表達(dá)水平對(duì)TGF-β1誘導(dǎo)足細(xì)胞損傷中podocin/CD2AP/synaptopodin mRNA表達(dá)的影響(±s)Tab.3 Effects of miR-155 expression level on expression of podocin/CD2AP/synaptopodin mRNA in TGF-β1 induced podocyte injury(±s)
表3 miR-155表達(dá)水平對(duì)TGF-β1誘導(dǎo)足細(xì)胞損傷中podocin/CD2AP/synaptopodin mRNA表達(dá)的影響(±s)Tab.3 Effects of miR-155 expression level on expression of podocin/CD2AP/synaptopodin mRNA in TGF-β1 induced podocyte injury(±s)
Note:Compared with normal group,1)P<0.05;compared with TGF-β1 group,2)P<0.05.
Groups Normal TGF-β1 TGF-β1+miR-155 mimics TGF-β1+mimics NC TGF-β1+miR-155 inhibitor TGF-β1+inhibitor NC Podocin mRNA 1.000±0.000 0.817±0.0311)0.127±0.0041)2)0.847±0.040 1)1.133±0.049 2)0.838±0.017 1)CD2APmRNA 1.000±0.000 0.786±0.0531)0.597±0.0371)2)0.790±0.0591)1.003±0.0682)0.771±0.060 1)Synaptopodin mRNA 1.000±0.000 0.679±0.0391)0.443±0.0491)2)0.686±0.0321)0.943±0.0282)0.647±0.0391)
2.5 miR-155轉(zhuǎn)染后對(duì)TGF-β1損傷足細(xì)胞podo?cin、synaptopodin、CD2APmRNA表達(dá)的影響 與正常對(duì)照組相比,TGF-β1組足細(xì)胞中podocin、CD2AP、synaptopodin mRNA的表達(dá)下調(diào),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),與TGF-β1組相比,TGF-β1+miR-155mimics組中podocin、CD2AP、synaptopodin mRNA的表達(dá)明顯下調(diào),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),而TGF-β1+miR-155 inhibitor組中podocin、CD2AP、syn?aptopodin mRNA的表達(dá)升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),TGF-β1+miR-mimics NC、TGF-β1+miR-155inhibitor NC組與TGF-β1處理組相比無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(表3)。結(jié)果表明,miR-155 mimics可促進(jìn)TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞podocin、CD2AP、synaptopodin表達(dá)下降,miR-155 inhibitor可逆轉(zhuǎn)TGF-β1對(duì)足細(xì)胞蛋白的損傷作用。
圖4 miR-155高表達(dá)對(duì)podocin、CD2AP、synaptopodin蛋白表達(dá)的影響Fig.4 Effects of miR-155 overexpression on expressions of podocin,CD2APand synaptopodin protein
圖5 miR-155低表達(dá)對(duì)podocin、CD2AP、synaptopodin蛋白表達(dá)的影響Fig.5 Effects of miR-155 low expression on expressions of podocin,CD2APand synaptopodin proteins
2.6 miR-155轉(zhuǎn)染后對(duì)TGF-β1損傷足細(xì)胞podo?cin、CD2AP、synaptopodin蛋白表達(dá)的影響 West?ern blot結(jié)果顯示,miR-155 mimics或miR-155 inhibi?tor轉(zhuǎn)染足細(xì)胞后,各組細(xì)胞之間podocin、CD2AP、synaptopodin蛋白水平的差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),miR-155 mimics高表達(dá)可促進(jìn)podocin、syn?aptopodin、CD2AP蛋白表達(dá)下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,圖4),而miR-155 inhibitor則下調(diào)足細(xì)胞miR-155水平,進(jìn)而抑制3種蛋白的水平降低(P<0.05,圖5),TGF-β1+miR-155 mimics NC、TGF-β1+miR-155inhibitor NC組與TGF-β1組相比無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。結(jié)果進(jìn)一步表明,miR-155的表達(dá)變化可影響TGF-β1誘導(dǎo) 的 足 細(xì) 胞podocin、synaptopodin、CD2AP蛋白損傷。
2.7 miR-155轉(zhuǎn)染后免疫熒光染色觀察蛋白CD2AP表達(dá)與分布 CD2AP蛋白的表達(dá)與Western blot、RT-PCR結(jié)果一致。分化成熟的正常足細(xì)胞,CD2AP蛋白主要分布胞漿、周邊、次級(jí)突起(例如白色實(shí)心箭頭);TGF-β1處理的細(xì)胞,CD2AP蛋白熒光減弱,部分向核周分布(例如空心粗箭頭);miR-155 mimics轉(zhuǎn)染足細(xì)胞后CD2AP蛋白熒光比TGF-β1組較弱,且主要向核周分布(例如空心粗箭頭);miR-155 inhibitor抑制TGF-β1引起的CD2AP蛋白改變。見圖6。
圖6 各組細(xì)胞CD2AP蛋白的分布與表達(dá)(×400)Fig.6 Expression of CD2AP protein in each group(×400)
隨著蛋白質(zhì)組學(xué)、生物信息學(xué)、分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,越來越多的足細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)、基因和功能被鑒定,足細(xì)胞與足細(xì)胞之間相互交叉作用,又通過足突附著于腎小球基底膜(glomerular base?ment membrane,GBM)[6]。由足細(xì)胞頂膜、裂孔隔膜(slit diaphragm,SD)、FPs、GBM組成了具有濾過功能的沙漏結(jié)構(gòu),其中的基因蛋白發(fā)生變化可引起足細(xì)胞結(jié)構(gòu)功能改變,最終導(dǎo)致腎小球?yàn)V過功能下降和腎臟疾病,因此被認(rèn)為是足細(xì)胞損傷的標(biāo)志蛋白[7-8]。SD蛋白CD2AP缺乏的小鼠中活性氧增多,進(jìn)而促使足細(xì)胞凋亡,抑制SHIP2使活性氧下降也不能阻止CD2AP缺乏引起的足細(xì)胞凋亡,而CD2AP過表達(dá)可減少足細(xì)胞凋亡[2]。其他的SD蛋白nephrin、podocin,突觸蛋白synaptopodin的突變和缺少都會(huì)引起足細(xì)胞的損傷,這與課題組實(shí)驗(yàn)結(jié)果相一致,在TGF-β1干預(yù)的足細(xì)胞中,CD2AP與podocin、synaptopodin表達(dá)均降低[9]。研究還發(fā)現(xiàn),與免疫炎癥密切相關(guān)的miR-155對(duì)足細(xì)胞蛋白CD2AP、podocin、synaptopodin具有靶向作用,miR-155高表達(dá)可負(fù)性調(diào)節(jié)podocin、synapto?podin、CD2AP的表達(dá),miR-155低表達(dá)可使podo?cin、synaptopodin、CD2AP表達(dá)上調(diào)。
越來越多證據(jù)表明,miRNA在腎臟發(fā)育和腎臟生理穩(wěn)態(tài)中起著重要的作用,很多腎臟疾病存在miRNA的失調(diào)[4]。近年來,miR-155在腎臟疾病中的作用不斷被發(fā)現(xiàn),糖尿病腎病患者血液、尿液中miR-155的表達(dá)發(fā)生改變,miR-155還可能參與調(diào)節(jié)肥胖相關(guān)腎病腎臟組織和內(nèi)皮細(xì)胞、狼瘡腎炎系膜細(xì)胞的損傷[10-13]。但是,目前miR-155對(duì)足細(xì)胞損傷的調(diào)控尚不清楚。有文獻(xiàn)表明腎上皮細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、基底膜、外基質(zhì)和系膜細(xì)胞之間存在串?dāng)_,miRNA旁分泌和自分泌介導(dǎo)腎小球細(xì)胞,例如miR-143可能是足細(xì)胞和腎小球內(nèi)皮細(xì)胞損傷串?dāng)_的介質(zhì),miR-378a-3p可抑制基底膜中細(xì)胞外基質(zhì)蛋白nephronectin(NPNT)的表達(dá)水平,引起足細(xì)胞podocin表達(dá)下降[14-16]。因此,miR-155是否參與調(diào)節(jié)足細(xì)胞的損傷,且串?dāng)_其他腎細(xì)胞的損傷,對(duì)腎臟疾病而言具有一定研究?jī)r(jià)值。
miRNA是基因表達(dá)的中心協(xié)調(diào)器,可同時(shí)調(diào)節(jié)多個(gè)功能相關(guān)的靶基因,有的研究認(rèn)為miRNA主要是在翻譯水平調(diào)節(jié)靶蛋白,對(duì)mRNA的影響可能不大。成功轉(zhuǎn)染miR-155 mimics或miR-155 inhibitor后,在不同時(shí)間點(diǎn)觀察了TGF-β1損傷足細(xì)胞模型中miR-155表達(dá)水平的變化及相應(yīng)足細(xì)胞蛋白的表達(dá),miR-155的表達(dá)在48、72 h后明顯上調(diào)或下調(diào),隨后,在轉(zhuǎn)染48 h~72 h提取細(xì)胞,分別用RT-PCR和Western blot檢測(cè)CD2AP、podocin、synaptopodin的mRNA和蛋白表達(dá)變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn),miR-155 mimics可使TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞miR-155表達(dá)增加,同時(shí)促進(jìn)足細(xì)胞CD2AP、podo?cin、synaptopodin mRNA的下調(diào),3種蛋白的蛋白表達(dá)量也一致下降,而miR-155 inhibitor可以與TGFβ1誘導(dǎo)足細(xì)胞增加的miR-155競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合,下調(diào)TGF-β1引起的miR-155表達(dá),從而抑制miR-155對(duì)足細(xì)胞的作用,CD2AP、podocin、synaptopodin的mRNA和蛋白表達(dá)均上調(diào),這說明miR-155可能同時(shí)靶向了足細(xì)胞的3種蛋白,從而參與調(diào)節(jié)TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞損傷。有研究表明,CD2AP、podocin和nephrin可通過磷酸肌醇3-OH激酶連接,被認(rèn)為是SD復(fù)合物[17]。CD2AP作為銜接蛋白通過其羧基端與骨架蛋白結(jié)合,將nephrin、podocin、syn?aptopodin與細(xì)胞骨架肌動(dòng)蛋白連接起來,從而在功能上相互作用,影響CD2AP在足細(xì)胞中的定位和表達(dá)則破壞SD的穩(wěn)定性和細(xì)胞骨架[18-19]。用免疫熒光觀察CD2AP蛋白的表達(dá)與Western blot和PCR結(jié)果一致,其分布也發(fā)生了相應(yīng)改變,再次證明了miR-155對(duì)足細(xì)胞蛋白的作用。
綜上所述,miR-155的表達(dá)變化影響TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞損傷,在蛋白和mRNA層面都是有作用的,轉(zhuǎn)染inhibitor可抑制miR-155對(duì)CD2AP、podocin和synaptopodin的靶向作用,改善足細(xì)胞的損傷。因此,miR-155有很大的潛力成為足細(xì)胞損傷新的藥物靶標(biāo),本課題組也提出假設(shè),miR-155可以靶向足細(xì)胞、系膜細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、基底膜等腎細(xì)胞之間的串?dāng)_,緩解腎臟疾病,但具體的信號(hào)通路機(jī)制需要進(jìn)一步深入研究。