蘇鳳芹,陳 衛(wèi),陳秀娟,吳慧煒,孫銘軍,陳海燕
(1.濟(jì)南市人民醫(yī)院藥劑科,山東 濟(jì)南 271199;2.萊蕪職業(yè)技術(shù)學(xué)院醫(yī)學(xué)技術(shù)與護(hù)理系,山東 濟(jì)南 271100;3.廣西衛(wèi)生職業(yè)技術(shù)學(xué)院藥學(xué)系,廣西 南寧 530023)
五苓膠囊由澤瀉、茯苓、豬苓、肉桂、麩炒白術(shù)5 味中藥加工而成,收載于2020 年版《中國(guó)藥典》 一部[1],具有利尿、增強(qiáng)免疫、保護(hù)肝臟、抗腫瘤、抗輻射等作用,可明顯降低高血壓病患者動(dòng)脈血壓及血尿酸水平[2-3],聯(lián)合培哚普利可改善臨床癥狀[4];增強(qiáng)良性前列腺增生癥術(shù)后膀胱逼尿肌收縮力,顯著改善排尿障礙[5],減輕早期糖尿病腎病患者腎小球及腎小管損傷[6];降低前列腺癌患者血清中微小核糖核酸-141 表達(dá)[7];改善抗精神病藥物引起水腫[8]等。但五苓膠囊現(xiàn)行質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)[1,9]僅對(duì)方中肉桂所含桂皮醛進(jìn)行定量控制,而中成藥復(fù)方制劑是多種成分的集合體,按照中醫(yī)配伍君臣佐使理論相互協(xié)調(diào)制約,從而達(dá)到整體臨床療效。因此,本實(shí)驗(yàn)采用一測(cè)多評(píng)法同時(shí)測(cè)定五苓膠囊中豬苓酮B、豬苓酮A、白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ、澤瀉醇F、澤瀉醇A、24-乙酰澤瀉醇A、23-乙酰澤瀉醇B 的含量,以期為提高該制劑質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)、全面評(píng)價(jià)其整體質(zhì)量提供依據(jù)。
1.1 儀器 Waters 2695 型高效液相色譜儀(美國(guó)Waters 公司);Agilent 1200 型高效液相色譜儀(美國(guó)Agilent 公司);FA2004 型電子天平(德國(guó)Sartorius 公司);KQ-500E 型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)。
1.2 試劑與藥物 白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ(批號(hào)111978-201501,純度 99.9%)、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ(批號(hào)111975-201501,純度99.9%)、23-乙酰澤瀉醇B(批號(hào)111846-201705,純度99.7%)對(duì)照品,均購(gòu)自中國(guó)食品藥品檢定研究院;24-乙酰澤瀉醇A(批號(hào)PRF8050342,純度99.7%)、豬苓酮B(批號(hào) PRF8070404,CAS 號(hào) 141360-89-6,純度98.6%)、豬苓 酮A(批號(hào)PRF8081143,純度97.3%)對(duì)照品,均購(gòu)自成都普瑞法科技開發(fā)有限公司;澤瀉醇F 對(duì)照品(批號(hào)CFS201701,純度98.0%),購(gòu)自武漢天植生物技術(shù)有限公司;澤瀉醇A 對(duì)照品(批號(hào)15071422,純度97.9%),購(gòu)自上海同田生物技術(shù)股份有限公司。五苓膠囊(每粒裝0.45 g,批號(hào)190203、190413、190604),購(gòu)自江西品信藥業(yè)有限公司。乙腈為色譜純,購(gòu)自天津市彪仕奇科技發(fā)展有限公司;其余試劑均為分析純。
2.1 溶液制備
2.1.1 對(duì)照品溶液 精密稱取豬苓酮B、豬苓酮A、白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ、澤瀉醇F、澤瀉醇A、24-乙酰澤瀉醇A、23-乙酰澤瀉醇B 對(duì)照品適量,甲醇制成各成分質(zhì)量濃度分別為0.854、0.378、0.536、0.492、0.158、0.344、0.212、1.196 mg/mL 的貯備液,各精密吸取2.5 mL,甲醇定容至50 mL,即得(各成分質(zhì)量濃度分別為42.7、18.9、26.8、24.6、7.9、17.2、10.6、59.8 μg/mL)。
2.1.2 供試品溶液 取膠囊10 粒,傾出內(nèi)容物,研細(xì),取約0.5 g,精密稱定,精密加入25 mL甲醇,稱定質(zhì)量,超聲提取45 min,放冷,甲醇補(bǔ)足減失的質(zhì)量,濾過,即得。
2.1.3 陰性樣品溶液 按2020 年版《中國(guó)藥典》一部五苓膠囊質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)項(xiàng)下的工藝處方,分別制備缺豬苓、缺白術(shù)、缺澤瀉的陰性樣品,按“2.1.2”項(xiàng)下方法制備,即得。
2.2 色譜條件及專屬性試驗(yàn) Agilent Polaris C18-A色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動(dòng)相乙腈(A)-水(B),梯度洗脫(0~9.0 min,25.0%A;9.0~ 17.0 min,25.0%~ 43.0% A;17.0~29.0 min,43.0%~55.0% A;29.0~44.0 min,55.0%~78.0% A;44.0~50.0 min,78.0%~25.0%A);體積流量0.9 mL/min;柱溫25 ℃;檢測(cè)波長(zhǎng)248 nm(0~17.0 min,豬苓酮B、豬苓酮A)[10]、220 nm(17.0~29.0 min,白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ)[11-13]、208 nm(29.0~50.0 min,澤瀉醇F、澤瀉醇A、24-乙酰澤瀉醇A、23-乙酰澤瀉醇B)[14-15];進(jìn)樣量10 μL。精密吸取“2.1.1”至“2.1.3”項(xiàng)下各溶液,在上述色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定,結(jié)果見圖1。由此可知,各成分色譜峰峰形對(duì)稱,分離度均大于1.5,理論塔板數(shù)按各成分色譜峰計(jì)均不低于4 500,陰性無干擾。
圖1 各成分HPLC 色譜圖Fig.1 HPLC chromatograms of various constituents
2.3 方法學(xué)考察
2.3.1 線性關(guān)系考察 精密吸取“2.1.1”項(xiàng)下貯備液0.1、0.2、0.5、1.0、1.5、2.0 mL,甲醇稀釋至20 mL,制成6 個(gè)質(zhì)量濃度,在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定。以對(duì)照品質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X),峰面積為縱坐標(biāo)(Y)進(jìn)行回歸,結(jié)果見表1,可知各成分在各自范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
表1 8 種成分線性關(guān)系Tab.1 Linear relationships of eight constituents
2.3.2 精密度試驗(yàn) 取“2.1.1”項(xiàng)下對(duì)照品溶液,在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定6 次,測(cè)得豬苓酮B、豬苓酮A、白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ、澤瀉醇F、澤瀉醇A、24-乙酰澤瀉醇A、23-乙酰澤瀉醇B 峰面積RSD 分別為0.67%、0.95%、0.79%、0.83%、1.18%、1.01%、1.07%、0.56%,表明儀器精密度良好。
2.3.3 重復(fù)性試驗(yàn) 取同一批膠囊,按“2.1.2”項(xiàng)下方法制備6 份供試品溶液,在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定,測(cè)得豬苓酮B、豬苓酮A、白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ、澤瀉醇F、澤瀉醇A、24-乙酰澤瀉醇A、23-乙酰澤瀉醇B 含量RSD 分別為1.03%、1.36%、1.20%、1.17%、0.84%、1.69%、0.78%、0.99%,表明該方法重復(fù)性良好。
2.3.4 穩(wěn)定性試驗(yàn) 取同一份供試品溶液,于0、2、4、6、12、16 h 在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定,測(cè)得豬苓酮B、豬苓酮A、白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ、澤瀉醇F、澤瀉醇A、24-乙酰澤瀉醇A、23-乙酰澤瀉醇B 峰面積RSD 分別為0.71%、0.92%、0.80%、0.85%、1.19%、0.98%、1.04%、0.59%,表明溶液在16 h 內(nèi)穩(wěn)定性良好。
2.3.5 加樣回收率試驗(yàn) 取各成分含量已知的同一批膠囊細(xì)粉約0.25 g,精密稱定,共9 份,按2020年版《中國(guó)藥典》 四部要求,精密加入對(duì)照品溶液(豬苓酮B 0.496 mg/mL、豬苓酮A 0.212 mg/mL、白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ0.358 mg/mL、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ0.284 mg/mL、澤瀉醇F 0.088 mg/mL、澤瀉醇A 0.192 mg/mL、24-乙酰澤瀉醇A 0.116 mg/mL、23-乙酰澤瀉醇B 0.684 mg/mL)0.5、1.0、1.5 mL各3 份,水平分別約為50%、100%、150%,按“2.1.2”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定,計(jì)算回收率。結(jié)果,豬苓酮B、豬苓酮A、白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ、澤瀉醇F、澤瀉醇A、24-乙酰澤瀉醇A、23-乙酰澤瀉醇B 平均加樣回收率(RSD)分別為100.06%(0.78%)、98.69%(0.91%)、98.93%(1.16%)、99.27%(0.97%)、96.99%(1.25%)、97.92%(1.47%)、97.73%(1.33%)、100.01%(0.65%)。
2.4 相對(duì)校正因子計(jì)算 采用多點(diǎn)校正法,取“2.3.1”項(xiàng)下不同質(zhì)量濃度對(duì)照品溶液,在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定,以白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ為內(nèi)標(biāo),計(jì)算其他7 種成分的相對(duì)校正因子f,公式為f=fk/fs=(CkAs)/(CsAk),其中Ck為其他成分含量,Ak為其他成分峰面積,Cs為內(nèi)標(biāo)含量,As為內(nèi)標(biāo)峰面積,結(jié)果見表2。
表2 各成分相對(duì)校正因子Tab.2 Relative correction factors of various constituents
2.5 耐用性考察
2.5.1 儀器、色譜柱 取“2.1.1”項(xiàng)下對(duì)照品溶液,在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定,考察Waters 2695、Agilent 1200 色譜儀,以及Agilent Polaris C18-A、Topsil C18、Eclipse XDB-C18色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm)對(duì)相對(duì)校正因子的影響,結(jié)果見表3,可知均無明顯影響(RSD<5%)。
表3 不同儀器、色譜柱對(duì)相對(duì)校正因子的影響Tab.3 Effects of different instruments and columns on relative correction factors
2.5.2 柱溫 取“2.1.1”項(xiàng)下對(duì)照品溶液,在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定,考察柱溫20、22、25、28、30 ℃)對(duì)相對(duì)校正因子的影響,結(jié)果見表4,可知均無明顯影響(RSD<5%)。
表4 不同柱溫對(duì)相對(duì)校正因子的影響Tab.4 Effects of different column temperatures on relative correction factors
2.5.3 體積流量 取“2.1.1”項(xiàng)下對(duì)照品溶液,在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定,考察體積流量0.7、0.8、0.9、1.0、1.1 mL/min 對(duì)相對(duì)校正因子的影響,結(jié)果見表5,可知均無明顯影響(RSD<5%)。
表5 不同體積流量對(duì)相對(duì)校正因子的影響Tab.5 Effects of different volumetric flow rates on relative correction factors
2.6 色譜峰定位 取“2.1.1”項(xiàng)下對(duì)照品溶液,在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定,以白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ為基準(zhǔn)峰,采用相對(duì)保留時(shí)間法,在“2.5.1”項(xiàng)儀器、色譜柱下對(duì)色譜峰進(jìn)行定位,結(jié)果見表6,可知均無明顯差異(RSD<5.0%)。
表6 各成分相對(duì)保留時(shí)間Tab.6 Relative retention time of various constituents
2.7 樣品含量測(cè)定 取3 批膠囊,按“2.1.2”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,每批平行3 份,在“2.2”項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣測(cè)定,分別采用一測(cè)多評(píng)法、外標(biāo)法計(jì)算各成分含量,結(jié)果見表7,可知2 種方法無明顯差異[相對(duì)平均偏差(RAD)<5.0%]。
表7 各成分含量測(cè)定結(jié)果(mg/g,n=3)Tab.7 Results of content determination of various constituents(mg/g,n=3)
五苓膠囊中澤瀉功效利水滲濕、泄熱化濁,為君藥;豬苓、茯苓加強(qiáng)利水滲濕之功,合為臣藥;白術(shù)功效健脾益氣、燥濕利水,為佐藥;肉桂功效補(bǔ)火助陽(yáng)、引火歸元,為使藥,諸藥合用,共奏溫陽(yáng)化氣、利濕行水之功。本實(shí)驗(yàn)參考中藥質(zhì)量標(biāo)志物確定原則[16-17],選取澤瀉主要藥效成分澤瀉醇F、澤瀉醇A、24-乙酰澤瀉醇A、23-乙酰澤瀉醇B,豬苓特征成分豬苓酮B、豬苓酮A,白術(shù)代表性成分特征成分白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ作為五苓膠囊指標(biāo)成分進(jìn)行檢測(cè)。
本實(shí)驗(yàn)以豬苓酮B、豬苓酮A、白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ、澤瀉醇F、澤瀉醇A、24-乙酰澤瀉醇A、23-乙酰澤瀉醇B 的綜合提取率為指標(biāo),對(duì)提取溶劑(95%乙醇[10]、甲醇[11,13]、水[12]、50%甲醇)、提取方式(加熱回流提取、超聲提?。?0-15])、提取時(shí)間(30、45、60 min)進(jìn)行考察,最終確定甲醇超聲提取45 min 作為供試品溶液制備方法。
本實(shí)驗(yàn)首次采用一測(cè)多評(píng)法同時(shí)測(cè)定五苓膠囊中豬苓酮B、豬苓酮A、白術(shù)內(nèi)酯Ⅲ、白術(shù)內(nèi)酯Ⅰ、澤瀉醇F、澤瀉醇A、24-乙酰澤瀉醇A、23-乙酰澤瀉醇B 的含量,該方法操作簡(jiǎn)便,結(jié)果準(zhǔn)確,重復(fù)性好,有助于藥品生產(chǎn)企業(yè)和監(jiān)管部門不斷完善該制劑質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn),并為全面評(píng)價(jià)其內(nèi)在質(zhì)量、確保其臨床療效一致性提供依據(jù)。