劉文孫士平王丹韓淼淼劉永亮李勇管明*

1山東第一醫(yī)科大學(xué)附屬淄博市中心醫(yī)院耳鼻咽喉頭頸外科（淄博255036）

2浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬杭州市第一人民醫(yī)院耳鼻咽喉頭頸外科(杭州310006)

氨基糖苷(Aminoglycoside，AG)抗生素治療常用于治療需氧革蘭氏陰性細(xì)菌感染[1]。AG也是導(dǎo)致聽(tīng)力損失和前庭系統(tǒng)功能障礙的第一種耳毒性物質(zhì)[2-4]。已有研究表明，活性氧(Reactive oxygen species,ROS)在AG耳毒性中起一定作用，AG可在內(nèi)耳內(nèi)產(chǎn)生類ROS自由基(包括氧自由基和氮自由基)。因此，它促進(jìn)線粒體通透性孔的開(kāi)放，繼而導(dǎo)致毛細(xì)胞（Hair cells,HCs）和神經(jīng)元的永久性損傷，最終導(dǎo)致哺乳動(dòng)物不可逆的損傷[1,3,5-7]。然而，由于可獲得的內(nèi)耳耳蝸有限以及藥物對(duì)動(dòng)物模型的副作用，藥物耳毒性的細(xì)胞和分子機(jī)制的研究一直受到阻礙[8-12]。House耳研所建立和鑒定了HEI-OC-1細(xì)胞(House Ear Institute Organ of Corti 1cells），這些細(xì)胞表達(dá)許多耳蝸毛細(xì)胞的標(biāo)志物，包括calbin‐din、calmodulin、math1、myosin7a、prestin 9[13-16]。目前，HEI-OC-1細(xì)胞系因其簡(jiǎn)單易行而被廣泛應(yīng)用于許多聽(tīng)覺(jué)研究中[17-21]。然而，在聽(tīng)覺(jué)研究中，HEI-OC-1細(xì)胞系是否提供了一種細(xì)胞模型系統(tǒng)來(lái)篩選新的藥理藥物潛在的耳毒性或保護(hù)耳朵的特性，仍有待于進(jìn)一步的研究。本研究以新霉素為毒劑誘導(dǎo)HEI-OC-1細(xì)胞死亡，探討新霉素對(duì)HEI-OC-1細(xì)胞的損傷機(jī)制。根據(jù)我們的結(jié)果，新霉素以濃度和時(shí)間依賴的方式誘導(dǎo)HEI-OC1細(xì)胞死亡。此外，氧化應(yīng)激參與了HEI-OC-1細(xì)胞的凋亡和壞死，新霉素作用后，HEI-OC-1細(xì)胞的抗氧化-促氧化平衡被破壞，促進(jìn)線粒體ROS積累，誘導(dǎo)線粒體膜電位(mitochondrial transmembrane po‐tential,MMP)丟失，進(jìn)而誘導(dǎo)HEI-OC-1細(xì)胞死亡。這種機(jī)制與新霉素在體內(nèi)的損傷耳蝸毛細(xì)胞的機(jī)制相似。因此，我們認(rèn)為HEI-OC1細(xì)胞系可以提供一種細(xì)胞模型系統(tǒng)來(lái)研究新霉素等耳毒性藥物對(duì)耳蝸毛細(xì)胞的損傷機(jī)制。

1 材料與方法

1.1 細(xì)胞培養(yǎng)

加州大學(xué)洛杉磯分校大衛(wèi)·格芬醫(yī)學(xué)院聽(tīng)覺(jué)細(xì)胞生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室的費(fèi)德里科·卡內(nèi)奇博士親切地贈(zèng)送了HEI-OC-1細(xì)胞系。HEI-OC-1細(xì)胞系在用于實(shí)驗(yàn)之前進(jìn)行了RT-PCR和免疫組織化學(xué)檢測(cè)，細(xì)胞株仍表達(dá)多種HCs標(biāo)記，如Myosin7a和Myo‐sin6a。HEI-OC-1細(xì)胞5在含10%胎牛血清和100 IU/ml青霉素的 DMEM(Sigma-Aldrich，St.Louis，USA)中37°C和5%CO2條件下培養(yǎng)。

1.2 細(xì)胞活力測(cè)定

采用細(xì)胞計(jì)數(shù)試劑盒CCK-8(碧云天，中國(guó)）評(píng)估細(xì)胞活力。在96孔板上用新霉素1～ 20 mM處理HEI-OC-1細(xì)胞1～ 24 h，每孔加入CCK-8溶液(10μl)，37℃孵育0.5 h，在450 nm BIO-RAD 450 nm波長(zhǎng)處測(cè)定光密度值。

1.3 免疫熒光

采用 TMRE(Sigma-Aldrich,St.Louis,USA)和Mito-Sox Red(Life Technologies,Waltham,USA)分別測(cè)量MMP和ROS。將HEI-OC-1細(xì)胞暴露于10 mM新霉素中24 h，然后在新霉素和無(wú)血清培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng)24 h，然后丟棄培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)液，用PBS洗滌樣品，并在37°C添加TMRE或Mito-Sox Red的DMEM中孵育10 min，染色后，細(xì)胞在預(yù)溫的PBS中洗滌，用共聚焦顯微鏡(LSM700；Zeiss,Heidenheim,Germany)拍照。TUNEL試劑盒(Roche,Indianapolis,IN,USA)檢測(cè)凋亡細(xì)胞，完成分組實(shí)驗(yàn)后，HEI-OC-1貼壁細(xì)胞，4%PFA室溫固定1 h，封閉液室溫封閉1 h?，F(xiàn)配TUNEL反應(yīng)體系：取出100μl label solution作為陰性對(duì)照（2個(gè)），將enzyme solution 50 μl加入剩下的450 μl label solution中混勻。配好的反應(yīng)液加入到四孔板中，50 μl/孔，37℃孵育1h。去除反應(yīng)液，PBST洗，加入DAPI染色，室溫20-30 min。PBST洗。封片后熒光顯微鏡觀察拍片，100-200倍，5個(gè)視野計(jì)數(shù)統(tǒng)計(jì)。

1.4 實(shí)時(shí)定量PCR(qRT-PCR)

用Trizol試劑（碧云天，中國(guó)）提取定量實(shí)時(shí)PCR(qRT-PCR)總 RNA，用 Revertaid First Strand cDNA合成試劑盒(Thermo Fisher Scientific,Waltham,USA)反轉(zhuǎn)錄制備cDNA。然后，用Bios‐systems CFX96實(shí) 時(shí) PCR 儀(Bio-RAD，Hercules，USA)和 SYBR Green(Roche,Basel,Switzerland)進(jìn)行qRT-PCR。表1顯示引物序列。qPCR條件如下：95°C下20 s；95°C下15 s，62°C下1 min，40個(gè)循環(huán)，然后在72°C下延伸20 s，mRNA表達(dá)水平歸一化到GAPDH的水平。

表1 PCR引物序列。Table 1 PCR sequences used in the experiments

1.5 流式細(xì)胞儀分析

用Annexin V-FITC和碘化丙啶(PI)(BD,San Jose,USA)分析細(xì)胞凋亡。將HEI-OC-1細(xì)胞胰酶消化，用冷PBS洗滌兩次，再以1×106個(gè)/ml的濃度懸浮在1倍結(jié)合緩沖液中，然后加入5μl Annexin V-FITC和5 μl PI，與100μl細(xì)胞輕輕混合，然后在黑暗中RT孵育15 min。隨后，向試管中加入400μl 1倍結(jié)合緩沖液。為進(jìn)行TMRE和Mito-Sox分析，將HEI-OC-1細(xì)胞胰酶消化，收集，在含TMRE或Mito-Sox的預(yù)溫(37°C)溶液中懸浮10 min，并用PBS洗滌。隨后，用流式細(xì)胞儀(FACSCanto，BD，San Jose，USA)對(duì)樣本進(jìn)行分析。

1.6 HEI-OC-1細(xì)胞對(duì)新霉素作用濃度敏感檢測(cè)

將HEI-OC-1細(xì)胞接種于48孔板中，分別加入0 mM、1 mM、2 mM、5 mM、10 mM和20 mM的新霉素作用24 h，每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔，用光鏡進(jìn)行塑料貼壁細(xì)胞計(jì)數(shù)。將HEI-OC-1細(xì)胞接種于96孔板中，分別加入0 mM、1 mM、2 mM、5 mM、10 mM和20 mM的新霉素作用24 h，每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔，采用CCK-8評(píng)估細(xì)胞活力。

1.7 HEI-OC-1細(xì)胞對(duì)新霉素作用時(shí)間敏感檢測(cè)

將HEI-OC-1細(xì)胞接種于96孔板中，分別加入10 mM和20 mM的新霉素誘導(dǎo)HEI-OC-1細(xì)胞死亡，誘導(dǎo)時(shí)間0 h、4 h、8 h、12 h、24 h，每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔，采用CCK-8評(píng)估細(xì)胞活力。

1.8 新霉素?fù)p傷后凋亡細(xì)胞和壞死細(xì)胞百分比測(cè)定

將HEI-OC-1細(xì)胞接種于6孔板中，加入0 mM、10 mM新霉素作用24 h每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔。用Annexin V-FITC和PI分析細(xì)胞凋亡和壞死。將HEI-OC-1細(xì)胞接種于48孔板蓋玻片中，加入0 mM、10 mM新霉素作用24 h，每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔，用TUNEL染色檢測(cè)新霉素?fù)p傷后HEI-OC-1細(xì)胞的凋亡情況。

1.9 經(jīng)新霉素處理后HEI-OC-1細(xì)胞的MMP和ROS檢測(cè)

將HEI-OC-1細(xì)胞接種于48孔板蓋玻片中，加入0 mM、10 mM新霉素作用24 h，每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔，采用TMRE和Mito-Sox Red分別測(cè)量MMP和ROS。

1.10 新霉素?fù)p傷后，HEI-OC-1細(xì)胞的抗氧化-促氧化檢測(cè)

將HEI-OC-1細(xì)胞接種于6孔板中，加入0 mM、10 mM新霉素作用24 h，每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔，采用qRT-PCR定量分析促氧化因子Alox15和抗氧化因子Gsr和Sod1。

1.11 統(tǒng)計(jì)分析

所有數(shù)據(jù)均以均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示，統(tǒng)計(jì)分析采用Microsoft Excel和GraphPad Prism 6。對(duì)于每個(gè)實(shí)驗(yàn)，n代表重復(fù)次數(shù)。兩組間比較采用twotailed,unpaired Student’st檢驗(yàn)，多組間比較采用單因素方差分析和Dunnett多重比較檢驗(yàn)。P<0.05認(rèn)為具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 HEI-OC-1細(xì)胞對(duì)新霉素作用濃度敏感

為探討HEI-OC-1細(xì)胞對(duì)新霉素的敏感性，將HEI-OC-1細(xì)胞以遞增劑量的新霉素作用24 h后，用光鏡和CCK-8試劑進(jìn)行塑料貼壁細(xì)胞計(jì)數(shù)，測(cè)定細(xì)胞存活率。結(jié)果發(fā)現(xiàn)，當(dāng)新霉素劑量超過(guò)5 mM時(shí)，HEI-OC-1細(xì)胞的可塑性貼壁率迅速下降(圖 1A，B)。此外，CCK-8 檢測(cè)結(jié)果還表明，HEIOC-1細(xì)胞對(duì)新霉素劑量敏感。隨著新霉素劑量的增加，細(xì)胞存活率顯著降低，1 mM、2 mM、5 mM、10 mM和20 mM處理24 h后，存活率分別為82.7±5.1%、77.2±3.1%、71.9±5.1%、56.3±7.3% 和47.2±5.8%(圖1C)。新霉素在10 mM-20 mM作用24 h后，HEI-OC-1細(xì)胞出現(xiàn)50%死亡率(圖1B，C)。

2.2 HEI-OC-1細(xì)胞對(duì)新霉素作用時(shí)間敏感

選用10 mM和20 mM的新霉素誘導(dǎo)HEI-OC-1細(xì)胞死亡，誘導(dǎo)時(shí)間0～ 24 h。CCK-8檢測(cè)結(jié)果顯示，HEI-OC-1細(xì)胞對(duì)新霉素作用時(shí)間敏感。10 mM新霉素作用4 h、8 h、12 h、24 h后，細(xì)胞存活率分別為 88.0±9.8%、84.8±4.5%、76.9±7.3%、56.3±7.3%。在20 mM新霉素處理4 h、8 h、12 h和24 h后，細(xì)胞存活率分別為77.8±5.0%、65.7±7.1%、50.8±8.8%、65.7%±7.1%、50.8±8.8%、65.7%±7.1%、50.8±8.8%和56.3%±7.3%(圖1D)。

圖1 HEI-OC-1細(xì)胞存活率隨新霉素作用濃度和時(shí)間的增加而降低。(A)光鏡下細(xì)胞計(jì)數(shù)顯示，5 mM以上的新霉素處理后，可塑貼壁的HEI-OC-1細(xì)胞明顯減少。(B)5mM、10mM、20 mM新霉素作用24h后，HEI-OC-1細(xì)胞存活率分別為72±3.5%、61.1±5.1%、40.8±3.9%，CCK-8檢測(cè)結(jié)果顯示，隨著新霉素劑量的增加，細(xì)胞存活率下降。新霉素在10mM-20 mM作用24 h后，HEI-OC-1細(xì)胞出現(xiàn)50%死亡率。(C)CCK-8實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示，HEI-OC-1細(xì)胞的存活率隨新霉素作用濃度的增加而降低。1 mM、2 mM、5 mM、10 mM和20 mM作用24 h后，CCK-8實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示細(xì)胞存活率分別為82.7±5.1%、77.2±3.1%、71.9±5.1%、56.3±7.3%和47.2±5.8%。新霉素在10mM-20 mM作用24 h后，HEIOC-1細(xì)胞出現(xiàn)50%死亡率。(D)CCK-8實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示，HEI-OC-1細(xì)胞的存活率隨新霉素作用時(shí)間的延長(zhǎng)而降低。10 mM新霉素作用4 h、8 h、12 h和24 h后，HEI-OC-1細(xì)胞的存活率分別為88.0±9.8%、84.8±4.5%、76.9±7.3%和56.3±7.3%，20 mM新霉素作用4 h、8 h、8 h和24 h后，細(xì)胞存活率分別為77.8±5.0%、65.7±7.1%、50.8±8.8%和47.2±5.8%。*P<0.05。比例尺=100μm.Fig.1 The survival rate of HEI-OC-1 cells decreased as the neomycin treatment dose and time increased.(A)Cell count‐ing under light microscope showed that the plastic adherent HEI-OC-1 cells significantly decreased after neomycin treat‐ment at a dose of over 5 mM.(B)The survival rates of HEIOC-1 cells were 72±3.5%,61.1±5.1%and 40.8±3.9%,respec‐tively,after neomycin treatments at 5 mM,10 mM and 20 mM for 24 h.And neomycin treatments at 10-20 mM for 24 h led to CD50 of HEI-OC-1 cells.(C)Results of CCK-8 assay showed that the survival rate of HEI-OC-1 cell decreased with the increase in neomycin dose.That the survival rates of HEI-OC-1 cells were 82.7±5.1%,77.2±3.1%,71.9±5.1%,56.3±7.3%and 47.2±5.8%,respectively,after neomycin treat‐ments at 1 mM,2 mM,5 mM,10 mM and 20 mM for 24 h.And neomycin treatments at 10-20 mM for 24 h led to CD50 of HEI-OC-1 cells.(D)Results of CCK-8 assay showed that the survival rate of HEI-OC-1 cells decreased as the neomy‐cin treatment time increased.The statistical chart showed that the survival rates of HEI-OC-1 cells were 88.0±9.8%,84.8±4.5%,76.9±7.3%and 56.3±7.3%,respectively,after 10 mM neomycin treatments for 4 h,8 h,12 h and 24 h.Additionally,the survival rates of HEI-OC-1 cells were 77.8±5.0%,65.7±7.1%,50.8±8.8%and 47.2±5.8%,respectively,after 20 mM neomycin treatments for 4 h,8 h,12 h and 24 h.Data are shown as mean±S.D.*P<0.05.Scale bars=100 μm.

2.3 新霉素?fù)p傷后凋亡細(xì)胞和壞死細(xì)胞百分比增加

不同的有害刺激可通過(guò)壞死、凋亡或兩者兼而有之的方式誘導(dǎo)死亡。為了解新霉素誘導(dǎo)HEIOC-1細(xì)胞死亡的確切途徑，我們用10 mM新霉素作用于HEI-OC-1細(xì)胞24 h，流式細(xì)胞儀Annexin-V/PI分析顯示，與未損傷對(duì)照組相比，新霉素處理后凋亡和壞死細(xì)胞百分率顯著增加(圖2A-D)。為了驗(yàn)證這一發(fā)現(xiàn)，進(jìn)一步用TUNEL染色檢測(cè)新霉素?fù)p傷后HEI-OC-1細(xì)胞的凋亡情況。結(jié)果，新霉素處理組的TUNEL陽(yáng)性細(xì)胞百分率明顯高于未損傷對(duì)照組(圖2E，圖4F)。以上結(jié)果表明，新霉素?fù)p傷可導(dǎo)致HEI-OC-1細(xì)胞凋亡和壞死。

圖2 新霉素處理后凋亡和壞死的HEI-OC-1細(xì)胞百分比增加。(A-D)流式細(xì)胞儀分析顯示，10 mM新霉素作用24 h后，凋亡細(xì)胞和壞死細(xì)胞的百分率均明顯高于未損傷對(duì)照組。(E和F)TUNEL染色顯示，10 mM新霉素作用24 h后，TUNEL陽(yáng)性凋亡細(xì)胞百分率明顯高于未損傷對(duì)照組。*P<0.05。比例尺=20μm。Fig.2 The percentages of apoptotic and necrotic HEI-OC-1 cells increased after neomycin treatment.(A-D)Flow cyto‐metric analysis indicated that the percentages of both apoptot‐ic and necrotic cells significantly increased after 10 mM neo‐mycin treatment for 24 h relative to the undamaged controls.(E and F)TUNEL staining demonstrated that the percentage of TUNEL-positive apoptotic cells significantly increased af‐ter 10 mM neomycin treatment for 24 h relative to the undam‐aged controls.Data are shown as mean±S.D.*P<0.05.Scale bars=20 μm.

2.4 經(jīng)新霉素處理后，HEI-OC-1細(xì)胞的MMP降低

線粒體是負(fù)責(zé)氧化應(yīng)激反應(yīng)的主要細(xì)胞器，而MMP的減少是線粒體功能障礙的主要特征本研究利用TMRE試劑盒定量檢測(cè)HEI-OC-1細(xì)胞MMP的變化。免疫熒光結(jié)果顯示，與未損傷對(duì)照組相比，10 mM新霉素處理24 h后，TMRE強(qiáng)度降低，同時(shí)流式細(xì)胞儀分析證實(shí)，新霉素處理組的MMP明顯低于未損傷對(duì)照組(圖3A-C)。以上結(jié)果表明，新霉素可降低HEI-OC-1細(xì)胞的線粒體膜電位。

圖3 新霉素處理后HEI-OC-1細(xì)胞的MMP降低。(A)免疫熒光結(jié)果顯示，10 mM新霉素處理組與未損傷對(duì)照組相比，MMP明顯降低。(B和C)流式細(xì)胞儀分析證實(shí)，10 mM新霉素作用24 h后，與未損傷對(duì)照組相比，MMP明顯降低。*P<0.05。比例尺=20μm。Fig.3 The MMP decreased in HEI-OC-1 cells after neomy‐cin treatment.(A)The immunofluorescence results showed that the MMP significantly decreased in 10 mM neomycin treatment groups compared with the undamaged controls.(B and C)Flow cytometric analysis confirmed that the MMP sig‐nificantly decreased after 10 mM neomycin treatment for 24 h compared with the undamaged controls.Data are shown as mean±S.D.*P<0.05.Scale bars=20 μm.

2.5 經(jīng)新霉素處理后，HEI-OC-1細(xì)胞ROS水平升高

活性氧促進(jìn)線粒體通透性孔道開(kāi)放，導(dǎo)致線粒體膜電位丟失。用氧化還原熒光載體Mito-Sox Red選擇性檢測(cè)線粒體超氧化物歧化酶(SOD)，檢測(cè)10 mM新霉素作用24 h后HEI-OC-1細(xì)胞線粒體ROS水平的變化，免疫熒光分析顯示，10 mM新霉素作用24 h后，HEI-OC-1細(xì)胞線粒體ROS水平較未損傷對(duì)照組明顯升高(圖4A，B)，流式細(xì)胞儀檢測(cè)結(jié)果證實(shí)，與未損傷對(duì)照組相比，新霉素處理組細(xì)胞內(nèi)ROS水平顯著升高(圖4C，D)。這些結(jié)果表明，新霉素可促進(jìn)HEI-OC-1細(xì)胞中ROS的積聚，進(jìn)而導(dǎo)致HEI-OC-1細(xì)胞中MMP的丟失。

2.6 新霉素?fù)p傷后，HEI-OC-1細(xì)胞的抗氧化-促氧化平衡被破壞

抗氧化-促氧化平衡在細(xì)胞氧化還原動(dòng)態(tài)平衡中起著重要作用，其失衡可能導(dǎo)致活性氧的積累。在此，我們用qPCR方法分析了6個(gè)氧化還原相關(guān)基因的mRNA表達(dá)水平。結(jié)果，與未損傷的對(duì)照組相比，新霉素處理組的促氧化因子Alox15和抗氧化因子Gsr和Sod1的表達(dá)水平均上調(diào)(圖4E)。

圖4 新霉素處理后HEI-OC-1細(xì)胞內(nèi)ROS水平升高，抗氧化因子和促氧化因子的正常表達(dá)水平受到干擾。(A和B)免疫熒光分析顯示，10 mM新霉素作用24 h后，細(xì)胞內(nèi)ROS水平較未損傷對(duì)照組升高。流式細(xì)胞術(shù)(C和D)結(jié)果證實(shí)，10 mM新霉素處理組與未損傷對(duì)照組相比，MMP升高。(E)RT-qPCR分析結(jié)果顯示，10 mM新霉素處理組與未損傷對(duì)照組相比，促氧化因子Alox15表達(dá)上調(diào)。同時(shí)，10 mM新霉素作用24 h后，Gsr、Sod1等抗氧化因子也明顯上調(diào)。*P<0.05。比例尺=20μm。Fig.4 The ROS level increased in HEI-OC-1 cells after neo‐mycin treatment,and the normal expression levels of both an‐ti-oxidative factors and prooxidantive factors were disrupted after neomycin treatment.(A and B)Immunofluorescence analysis demonstrated that the ROS level increased after 10 mM neomycin treatment for 24 h compared with the undam‐aged controls.(C and D)Results of flow cytometry verified that the MMP increased in 10 mM neomycin treatment groups compared with the undamaged controls.(E)Results of RT-qP‐CR analysis showed that the pro-oxidative factor Alox15 was up-regulated in the 10 mM neomycin treatment groups com‐pared with the undamaged controls.Meanwhile,the anti-oxi‐dative factors such as Gsr and Sod1 were also up-regulated af‐ter 10 mM neomycin treatment for 24 h.Data are shown as mean±S.D.*P<0.05.Scale bars=20 μm.

3 討論

HEI-OC-1細(xì)胞株已被用于研究藥物的耳毒性和耳保護(hù)的作用和確切機(jī)制[15,16,22,23]。然而，HEIOC-1細(xì)胞系能否提供模擬體內(nèi)藥物處理后耳蝸毛細(xì)胞病理生理變化的細(xì)胞模型體系，還有待進(jìn)一步研究。本研究以新霉素作為耳毒性藥物誘導(dǎo)HEIOC-1細(xì)胞死亡，以闡明新霉素對(duì)HEI-OC-1細(xì)胞的藥物耳毒性及其損傷機(jī)制，并與體內(nèi)耳蝸毛細(xì)胞的損傷機(jī)制進(jìn)行比較。我們的研究表明，新霉素以濃度和時(shí)間依賴的方式誘導(dǎo)HEI-OC1細(xì)胞死亡。新霉素(1～ 20 mM)作用于HEI-OC-1細(xì)胞24 h后，細(xì)胞存活率明顯下降。此外，10 mM、20 mM新霉素作用于HEI-OC-1細(xì)胞1～ 24 h后，細(xì)胞存活率也逐漸下降。研究發(fā)現(xiàn)10 mM新霉素作用24 h后，HEI-OC-1細(xì)胞死亡約50%～ 60%。我們選擇這種條件來(lái)研究新霉素對(duì)HEI-OC-1細(xì)胞的損傷作用及其機(jī)制。

新霉素主要通過(guò)在內(nèi)耳產(chǎn)生ROS誘導(dǎo)毛細(xì)胞死亡[2,3,24-26]。在新霉素作用下，ROS的積累觸發(fā)線粒體去極化，從而進(jìn)一步導(dǎo)致MMP的丟失[27-28]。本研究還表明，新霉素可提高HEI-OC-1細(xì)胞線粒體ROS水平，降低MMP，提示新霉素通過(guò)氧化應(yīng)激誘導(dǎo)HEI-OC-1細(xì)胞死亡，與體內(nèi)機(jī)制相似。在生理?xiàng)l件下，由于ROS的產(chǎn)生和清除之間的平衡，ROS水平被維持在一定的范圍內(nèi)，這種平衡是在眾多相互協(xié)調(diào)的基因的作用下保持的[12]。一旦這種平衡被打破，細(xì)胞內(nèi)的ROS水平就會(huì)增加[29,30]。本研究還發(fā)現(xiàn)，與未損傷對(duì)照組相比，新霉素處理組的促氧化因子和抗氧化因子如Alox15、Gsr和Sod1的表達(dá)均增加，這種干擾也可能是導(dǎo)致ROS水平升高的原因之一。

綜上所述，我們的結(jié)果表明，新霉素以濃度和時(shí)間依賴的方式誘導(dǎo)HEI-OC-1細(xì)胞死亡，氧化應(yīng)激參與了HEI-OC-1細(xì)胞的凋亡和壞死。新霉素?fù)p傷后，HEI-OC-1細(xì)胞的抗氧化-促氧化平衡被破壞，促進(jìn)線粒體ROS積累，誘導(dǎo)MMP丟失，進(jìn)而誘導(dǎo)HEI-OC-1細(xì)胞死亡。這種機(jī)制與新霉素在體內(nèi)的損傷機(jī)制相似。因此，我們認(rèn)為HEI-OC1細(xì)胞系可以提供一種細(xì)胞模型系統(tǒng)來(lái)研究新霉素等耳毒性藥物對(duì)耳蝸毛細(xì)胞的損傷機(jī)制。