全 飛,蘭國玉,魏亞情,4,李明美,5,孫樹晴,6,杜昊楠,6
(1. 中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院 橡膠研究所, ???571101; 2. 海南大學(xué) 植物保護(hù)學(xué)院, ???570228;3. 海南儋州熱帶農(nóng)業(yè)生態(tài)系統(tǒng)國家野外科學(xué)觀測研究站, 海南 儋州 571737; 4. 海南大學(xué) 生態(tài)與環(huán)境學(xué)院,???570228; 5. 海南大學(xué) 林學(xué)院, 海口 570228; 6. 海南大學(xué) 熱帶作物學(xué)院, 海口 570228)
橡膠 樹[Hevea brasiliensis(H. B. K.) Muell.-Arg.]原產(chǎn)于巴西亞馬孫地區(qū),19世紀(jì)引入亞洲熱帶地區(qū)[1],橡膠種植面積迅速擴(kuò)大[2-4], 2017年世界橡膠種植面積達(dá)到1 484萬hm2[5]。我國橡膠人工林主要分布在海南和云南西雙版納,約占我國橡膠種植總面積的91.3%[6]。海南島橡膠林的分布約占海南島植被總面積的四分之一[7]。西雙版納是東南亞熱帶北緣重要的典型橡膠產(chǎn)區(qū)[8],西雙版納橡膠林約占西雙版納植被總面積的40%, 2010年西雙版納的橡膠人工林種植面積約50萬hm2[9]。橡膠人工林已成為我國熱帶地區(qū)重要的森林生態(tài)系統(tǒng),對維持熱帶陸地生態(tài)系統(tǒng)的平衡起著重要作用[10]。橡膠樹受多種真菌致病因子的影響[11]。真菌根病以破壞橡膠林根系對土壤的水分和養(yǎng)分的吸收與利用方式對橡膠根系造成危害。此外,真菌根部疾病通常只有在感染擴(kuò)散至根部死亡時才被觀察到,此時多已超過有效治療的程度[12]。
感染橡膠樹根部的真菌病原體為白根?。≧igidoporus microporus)、褐根病(Phellinus noxius)和紅根?。℅anoderma pseudoferreum)[13-14]。在經(jīng)濟(jì)上,白根病是橡膠樹上最重要的病害,在全世界都造成橡膠產(chǎn)量的嚴(yán)重?fù)p失[15]。褐腐病和紅腐病對橡膠林的經(jīng)濟(jì)影響較小,因?yàn)樗鼈兺ǔIL緩慢,對樹木生長和乳膠生產(chǎn)的影響較小[13]。白根病可以感染整個熱帶地區(qū)的橡膠樹,它是影響東南亞橡膠林的主要疾病之一[15-16]。健康樹木接觸到受感染的樹根和木質(zhì)碎屑,感染的根被大量的白色菌絲體覆蓋,最初為褐色,后來為白色,因此,Rigidoporus microporus有白根病的俗稱[16],在感染后期,真菌產(chǎn)生橙褐色子實(shí)體,新鮮時邊緣為亮黃色,而樹干底部周圍的下表面變成紅棕色[15]。在感染階段,橡膠樹的葉子開始變黃,最后這種疾病破壞了樹冠和根系,導(dǎo)致樹木死亡[16]。許多植物病原體感染橡膠樹后無明顯癥狀[17],并且可以在不利的環(huán)境條件下持續(xù)存在[18]。在疾病暴發(fā)之前,這些病原體通?;旧鲜菨撛诘?。然而,這些病原體可以通過基于DNA的方法檢測[19]。因此,基于DNA的方法可以全面了解潛在的植物病原菌群落。1978年,植物病理學(xué)家[20]將植物病原菌劃分為:農(nóng)桿菌屬(Agrobacterium)、棒狀桿菌屬(Corynebacterium)、歐文氏菌屬(Erwinia)、諾卡氏菌屬(Nocardia)和假單胞菌屬(Pseudomonas)等,歸功于DNA測序技術(shù)和分類方法的進(jìn)步,目前植物病原菌已有39個屬[21]。
宏基因組測序技術(shù)較全面的反映了樣本中微生物群落的組成。筆者通過宏基因組測序技術(shù)了解橡膠林土壤、根際、根表的病原微生物,并通過數(shù)據(jù)分析進(jìn)一步了解微生物間的互作關(guān)系,對橡膠林土壤改良、提高橡膠樹抗性和乳膠產(chǎn)量、并為橡膠林的病害預(yù)防及生長管理提供有效信息,對促進(jìn)橡膠林生態(tài)多樣性研究、病蟲害的綜合防控和橡膠產(chǎn)業(yè)的可持續(xù)發(fā)展具有理論和實(shí)踐意義。
1.1 采樣方法在海南(儋州、萬寧和樂東)和西雙版納(景洪、勐侖和勐滿)采集健康橡膠樹的土壤和根系樣本。
理化分析和土壤微生物采樣:采樣前用70%酒精取樣器具需進(jìn)行消毒滅菌處理。去除表面浮土,采樣員戴上無菌手套,以橡膠樹樹干為圓心(半徑為0.5 m),在圓上隨機(jī)取3個點(diǎn),去除表層5 cm的土壤,在5~20 cm土層采集橡膠樹根際周圍土壤200 g,去除可見雜質(zhì),用2 mm篩網(wǎng)過篩處理,然后將3份土壤混合均勻,分別用自封袋裝500 g土壤作為理化分析樣品和取5~10 g土壤裝入無菌離心管中,一并放入保溫盒中帶回實(shí)驗(yàn)室,所有樣品置于干冰寄送至美吉生物公司測序。
根際微生物取樣:采樣前用70%酒精對取樣器具進(jìn)行消毒滅菌處理。用消毒的剪刀在土壤微生物采樣的3個點(diǎn)上分別剪取5~8根直徑2 mm以內(nèi)細(xì)根系,每根根系長約9~12 cm(盡量不要碰傷表皮),每個點(diǎn)在根系周圍1 mm采集橡膠樹根際土壤,把根際土壤抖落在無菌自封袋中,去除植物根、動物殘骸及其他雜質(zhì),過0.85 mm篩,將3份土樣混合均勻,取5~10 g裝入無菌離心管,一并低溫運(yùn)至實(shí)驗(yàn)室,所有樣品置于干冰中,送美吉生物公司測序。
根表微生物取樣:采樣員戴上無菌手套,在根際微生物取樣中剪取的根系置于保溫盒內(nèi)保存,24 h內(nèi)送回實(shí)驗(yàn)室。在實(shí)驗(yàn)室用無菌刷輕輕刷去根系表層附著的土壤,將根系置于無菌離心管中,浸沒于無菌PBS緩沖溶液,在180 r·min-1下清洗20 min;用無菌鑷子取出根系組織,將根系再次置于無菌離心管中加入無菌PBS緩沖溶液,在180 r·min-1下清洗20 min;取出根系組織,將根系再次置于無菌離心管中加入無菌PBS緩沖溶液,超聲波洗滌10 min(超聲波清洗器設(shè)置:160 W,30 s/30 s,10 min)。將3次洗滌液置于無菌離心管中,用12 000 g離心10 min,收集沉淀(根表微生物)并置于-80 ℃冰箱保存。所有根表微生物樣品置于干冰中至美吉生物公司測序。
1.2 土壤理化分析土壤理化和養(yǎng)分測定參考魯如坤[22]的方法。土壤理化性質(zhì)測定了土壤含水率和pH。土壤養(yǎng)分測定主要有土壤有機(jī)質(zhì)、速效氮(氨態(tài)氮和硝態(tài)氮)、速效磷、速效鉀、全氮、全磷、全鉀(表1)。土壤有機(jī)碳測定采用重鉻酸鉀-外加熱法;全氮測定采用靛酚藍(lán)比色法;全磷測定采用鉬銻抗比色法;全鉀采用火焰光度計法;速效鉀采用醋酸銨提取火焰光度計法;速效磷測定采用鹽酸氟化銨法。硝態(tài)氮測定采用氯化鈉提取法,氨態(tài)氮測定采用靛酚藍(lán)比色法。
表1 宏基因組測序土壤樣本養(yǎng)分
1.3 宏基因組測序分析采 用 Illumina Hiseq PE150/250 高通量測序平臺。使用fastp軟件對序列進(jìn)行質(zhì)控,得到clean reads序列,然后利用Megahit軟件進(jìn)行序列組裝,得到的組裝序列通過MetaGene軟件進(jìn)行基因預(yù)測(序列長度≥100 bp),利用CD-HIT軟件和SOAPaligner 軟件進(jìn)行聚類(90% identity、90% coverage)和基因的豐度計算(95% identity),比對NR數(shù)據(jù)庫獲得樣本的物種分類學(xué)注釋信息,通過 NR 庫中的分類學(xué)信息數(shù)據(jù)庫獲得物種注釋結(jié)果,計算物種的豐度,并統(tǒng)計各個樣品在界、門、綱、目、科、屬和種的分類學(xué)水平上物種的豐度,從而構(gòu)建相應(yīng)分類學(xué)水平上的豐度表。比對病原與宿主互作數(shù)據(jù)庫(PHI),對橡膠林土壤、根際及根表進(jìn)行植物病原物種注釋,得到橡膠林土壤、根際及根表植物病原物種信息,并進(jìn)行生物信息學(xué)分析。
1.4 數(shù)據(jù)分析RDA 即冗余分析,是約束化的PCA 分析,從圖中可以直觀地看出樣本分布和環(huán)境因子間的關(guān)系。RDA主要用于分析物種或功能與環(huán)境因子之間關(guān)系,RDA 是基于線性模型。使用R語言vegan包中RDA分析和作圖。主坐標(biāo)分析(PCoA),是一種非約束性的數(shù)據(jù)降維分析方法,研究樣本群落組成的相似性或差異性,PCoA是基于所選距離矩陣進(jìn)行作圖。本研究選用bray_curtis距離算法,通過降維的方式來找出影響樣本群落組成差異的潛在主成分。使用R語言PCoA分析作圖。
2.1 病原微生物組成分析通過宏基因組測序結(jié)果與病原和宿主互作數(shù)據(jù)庫比對注釋,得到植物病原微生物在土壤、根際及根表的組成,病原微生物在門、屬和種水平分別為:4、30和53(表2)。由圖1可知,植物病原微生物在門的水平上屬于:變形菌門(Proteobacteria)、放線菌門(Actinobacteria)和子囊菌門(Ascomycota),其中變形菌門在土壤、根際及根表的平均占比為90.67%,根際樣本占比最大,根表樣本占比最少;放線菌門在土壤、根際及根表的平均占比為7.67%,根表樣本占比最多,根際樣本占比最少;子囊菌門在土壤、根際及根表的平均占比為1.11%,根表樣本占比最多,根際樣本占比最少。
表2 海南與西雙版納橡膠林土壤、根際及根表病原微生物
由圖2可知,病原微生物在屬水平上屬于:假單孢菌屬(Pseudomonas)、勞爾氏菌屬(Ralstonia)、伯克霍爾德氏菌屬(Burkholderia)、鏈霉菌屬(Streptomyces)、農(nóng)桿菌屬(Agrobacterium)、黃單胞菌屬(Xanthomonas)、泛菌屬(Pantoea)、麥角菌屬(Clavibacter)、果膠桿菌屬(Pectobacterium)和木質(zhì)部小菌屬(Xylella)。假單孢菌屬在土壤、根際及根表的占比為61.20%,根際樣本占比最大,根表樣本占比最少;勞爾氏菌屬在土壤、根際及根表的占比為10.70%,根際樣本占比最少,根表樣本占比最大;伯克霍爾德氏菌屬在土壤、根際及根表的占比為6.80%,根際樣本占比最少,根表樣本占比最大;鏈霉菌屬在土壤、根際及根表的占比為6.38%,根際樣本占比最少,根表樣本占比最大;農(nóng)桿菌屬在土壤、根際及根表的占比為4.45%,根際樣本占比最少,根表樣本占比最大。根表樣本中病原菌占比相對平均,而根際樣本中病原菌主要為假單孢菌屬,占比達(dá)到81.44%。在屬水平上主要以子囊菌門為主。
續(xù)表2
由圖3可知,在土壤、根際及根表樣本屬水平上,假單孢菌屬和歐文氏菌屬(Erwinia)有顯著差異(P=0.03),泛菌屬和果膠桿菌屬有極顯著差異(P<0.01)。其中假單孢菌屬在根表樣本中的豐度明顯小于土壤和根際樣本,歐文氏菌屬、泛菌屬和果膠桿菌在根表樣本中的豐度明顯大于土壤和根際樣本。由圖4可知,兩地根際病原微生物在屬水平上無顯著差異。
2.2 病原微生物PCoA分析由圖5可知,PC1軸解釋74.07%,PC2軸解釋10.57%。由圖5和圖6可知,根表樣本離散程度低,說明病原微生物在根表樣本中分布均勻,而土壤和根際樣本則相反。土壤和根際樣本置信橢圓高度重合,說明土壤和根際樣本病原微生物差異更小,根表樣本在PC1軸高度聚類,也說明病原微生物在根表樣本中高度相似,但樂東的根表樣本有一點(diǎn)差異。
2.3 病原微生物與環(huán)境因子相關(guān)性分析基于病原微生物屬水平RDA分析,由圖6可知,RDA1軸解釋25.23%,RDA2軸解釋0.47%,勐侖和勐滿土壤和根際樣本病原微生物組成相似,樂東根表樣本與其他根表樣本有差異。由圖6和表3可知,只有硝態(tài)氮與病原微生物呈顯著正相關(guān)(P<0.05),其他環(huán)境因子與病原微生物無顯著關(guān)系。
表3 病原微生物RDA分析相關(guān)性因子
選取豐度前20的屬水平的病原微生物,箭頭表示方向,紅色的線表示環(huán)境因子,紫色的線表示病原微生物。
通過宏基因組測序結(jié)果與病原和宿主互作數(shù)據(jù)庫比對注釋,得到植物病原微生物在土壤、根際及根表的組成。研究表明[11],橡膠樹受到多種真菌致病因子的影響,而本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,健康土壤中,土壤、根際及根表樣本中均未出現(xiàn)引起橡膠樹根病的真菌,說明健康土壤中有抑制致病菌的有益微生物,這與Weller等[23]研究結(jié)果相似。有研究表明[24],多年生作物不斷地從土壤中吸收養(yǎng)分,導(dǎo)致土壤肥力下降,而土壤養(yǎng)分缺乏會增加植物對感染的敏感性,本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,硝態(tài)氮與病原微生物呈顯著正相關(guān),其他環(huán)境因子與病原微生物無顯著關(guān)系。那么在對橡膠林施肥時,是否可以增加氨態(tài)氮的比例,從而減少病原微生物的種類和豐度。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,植物病原微生物在門的水平上屬于變形菌門、放線菌門和子囊菌門,其中變形菌門在根表樣本占比最少,而放線菌門和子囊菌門在根表樣本占比則最多,表明放線菌門和子囊菌門的病原微生物更適應(yīng)根表環(huán)境,或者說根表環(huán)境吸引放線菌門和子囊菌門的病原微生物定殖,表明不僅有益微生物會被植物根系招募,某些病原微生物也會被植物根系招募。土壤和根際樣本病原微生物組成相似,各根表樣本病原微生物組成相似,表明病原微生物的組成可能與根表環(huán)境有關(guān)。在屬水平上,病原微生物以子囊菌門種類最多,表明子囊菌門的病原微生物在橡膠樹根系中分布廣泛。假單孢菌屬主要分布在土壤和根際,歐文氏菌屬、泛菌屬和果膠桿菌主要分布在根表。兩地根際病原微生物在屬水平上無顯著差異。