謝雨尋,葉有明*,李龍?jiān)?,曹雪?/p>
(廣西科技師范學(xué)院 食品與生化工程學(xué)院,廣西 來(lái)賓 546199)
茶葉的成分大多具有營(yíng)養(yǎng)特性及功能性,有消炎抑菌、降低血脂、血糖、血壓、抗衰老、抗輻射、防癌等作用[1]。采用茶葉浸提、釀制或配制的保健酒既具有茶的芬芳典雅,也具有酒的深沉渾厚,是集營(yíng)養(yǎng)、保健為一體的多功能飲品。隨著人們保健意識(shí)的增強(qiáng)和社會(huì)觀念的轉(zhuǎn)變,近年來(lái)茶類保健酒受到人們的青睞。
柳州三江地區(qū)是廣西主要的茶葉生產(chǎn)基地,廣西三江縣吉龍農(nóng)業(yè)科技開(kāi)發(fā)有限責(zé)任公司以當(dāng)?shù)氐牟枞~與礦泉水為原料,研制生產(chǎn)了國(guó)內(nèi)首款蒸餾茶酒,目前已形成了一條年產(chǎn)1 000 t茶酒的生產(chǎn)線。在生產(chǎn)茶酒的過(guò)程中,會(huì)產(chǎn)生酒糟等副產(chǎn)品,茶酒糟主要由發(fā)酵后的茶葉組成,其富含茶多酚、茶多糖、茶皂素、茶蛋白、氨基酸、咖啡堿等活性成分,這些物質(zhì)具有抗氧化、抗癌癥、抗菌、減少膽固醇、降血壓等功效。目前這些茶酒糟主要用作農(nóng)家肥,對(duì)環(huán)境有一定的污染,同時(shí)造成了大量資源浪費(fèi)。
茶多酚是一種天然抗氧劑,茶多酚的抗氧化機(jī)理是兒茶素分子結(jié)構(gòu)上的羥基(-OH)起到供氫(H)體的作用,與脂肪酸中的游離基相結(jié)合而中斷脂肪酸氧化的連鎖反應(yīng),抑制氫過(guò)氧化物的形成,起到抗氧化作用[2],其抗氧活性高于一般非酚性或單酚羥基類抗氧劑,主要表現(xiàn)在具有消除人體自由基、抗癌、抗衰老、抑菌消炎、抑制黑色素合成等多種功效,具有很高的利用價(jià)值[3]。
目前,茶多酚的主要提取工藝有溶劑提取、離子沉淀、微波輔助提取、樹(shù)脂吸附分離、超聲波輔助提取、超臨界流體萃取、酶提取等方法[4-6],不同的提取工藝都有各自的優(yōu)勢(shì)特點(diǎn),提取使用的原料主要為茶葉或其加工后的副產(chǎn)物,而從經(jīng)過(guò)發(fā)酵后的茶酒糟中提取茶多酚鮮見(jiàn)文獻(xiàn)報(bào)道。
本研究以廣西三江縣吉龍農(nóng)業(yè)科技有限公司生產(chǎn)茶酒過(guò)程中產(chǎn)生的酒糟為原料,采用水浴振蕩乙醇提取茶多酚,并研究其抗氧化活性。以期為企業(yè)延長(zhǎng)生產(chǎn)線,提高產(chǎn)品附加值,減少酒糟對(duì)環(huán)境的污染,最終實(shí)現(xiàn)茶酒釀造產(chǎn)生的廢渣資料化利用提供理論依據(jù)。
茶酒糟:廣西三江縣吉龍農(nóng)業(yè)科技有限責(zé)任公司;體積分?jǐn)?shù)95%乙醇(分析純):成都金山化學(xué)試劑有限公司;溴化鉀(光譜純):北京蘭博維爾科技有限公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)(分析純):合肥巴斯夫生物科技有限公司;L-抗壞血酸、無(wú)水碳酸鈉(均為分析純):西隴科學(xué)股份有限公司;沒(méi)食子酸(分析純):天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;福林酚試劑:北京蘭博維爾科技有限公司;30%過(guò)氧化氫(分析純):西隴化工股份有限公司;水楊酸(分析純):天津歐博凱化工有限公司。
C3X-GF701-2-BS-1II電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱:上海躍進(jìn)醫(yī)療器械有限公司;800T粉碎機(jī):永康市紅太陽(yáng)機(jī)電有限公司;THZ-82水浴恒溫振蕩器:杭州旌斐儀器科技有限公司;SHZ-D(III)循壞水式多用真空泵:上海力辰邦西儀器科技有限公司;RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器:上海亞榮生化儀器廠;UV-9600紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì):北京北分瑞利分析儀器有限公司;HH-S4數(shù)顯恒溫水浴鍋:金壇市醫(yī)療儀器廠;FR2004B電子分析天平:上海越平科學(xué)儀器有限公司;100-1000有限手動(dòng)可調(diào)移液器:上海力辰邦西儀器科技有限公司;IRAffinity-1S傅里葉紅外光譜儀:島津企業(yè)管理(中國(guó))有限公司。
1.3.1 茶多酚的提取
將茶酒糟放置溫度為60 ℃的恒溫鼓風(fēng)干燥箱,干燥48 h。將干燥好的茶酒糟粉碎,過(guò)40目篩,密封保存?zhèn)溆肹7]。稱取經(jīng)預(yù)處理的茶酒糟粉末1.0 g,固定料液比為1∶30(g∶mL),加入體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇,用保鮮膜封住錐形瓶瓶口(防止乙醇揮發(fā)),在溫度為65 ℃條件下水浴振蕩8 min提取茶多酚。
1.3.2 茶多酚含量的測(cè)定方法
堿性條件下,利用福林酚試劑氧化茶多酚中的-OH基團(tuán),反應(yīng)之后顯示藍(lán)色,在最大吸收波長(zhǎng)765 nm條件下,使用沒(méi)食子酸作校正標(biāo)準(zhǔn),配制質(zhì)量濃度分別為10 μg/mL、20 μg/mL、30 μg/mL、40 μg/mL、50 μg/mL的沒(méi)食子酸工作液。移取不同質(zhì)量濃度沒(méi)食子酸工作液各1 mL于刻度試管內(nèi),分別加入5 mL的10%福林酚試劑,反應(yīng)3~8 min后再分別加入4.0 mL的7.5%Na2CO3溶液,加蒸餾水定容,室溫下靜置反應(yīng)1 h。另移取1 mL蒸餾水按以上相同步驟作為空白對(duì)照,最后在波長(zhǎng)765 nm條件下測(cè)定其吸光度值[8]。
1.3.3 沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制[9]
以各沒(méi)食子酸工作液濃度為X軸,吸光度值為Y軸,繪制沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線,其線性回歸方程為Y=0.167 7+0.004 8X,相關(guān)系數(shù)R2=0.999 0,說(shuō)明在沒(méi)食子酸質(zhì)量濃度10~50 μg/mL范圍內(nèi)其線性關(guān)系良好,可以用于茶多酚提取量的測(cè)定。
1.3.4 茶多酚提取量的測(cè)定
待測(cè)液:移取提取液1 mL至10 mL容量瓶中,蒸餾水定容,搖勻,待測(cè)(若樣液吸光度高于50 μg/mL的沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)液的吸光度值,則應(yīng)重新稀釋待測(cè)液,再次測(cè)定其吸光度值[18]。
移取1.0 mL待測(cè)液于刻度試管,再移取10%福林酚試劑5 mL,室溫下反應(yīng)3~8 min,然后加7.5% Na2CO3溶液4.0 mL,用蒸餾水定容,搖勻。室溫下靜置反應(yīng)1 h。最后在波長(zhǎng)765 nm條件下測(cè)定吸光度值,利用所測(cè)得的標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程,按下式計(jì)算茶多酚的提取量[10]:
式中:W為茶多酚提取量,mg/g;C為提取液中茶多酚質(zhì)量濃度,μg/mL;V為茶多酚待測(cè)液體積,mL;N為提取液稀釋倍數(shù);M為茶酒糟粉末質(zhì)量,g。
1.3.5 茶多酚提取條件優(yōu)化單因素試驗(yàn)[11]
(1)乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)茶多酚提取量的影響
稱取6份經(jīng)預(yù)處理的茶酒糟粉末各1.0 g,固定料液比為1∶30(g∶mL),分別加入體積分?jǐn)?shù)為30%、40%、50%、60%、70%、80%的乙醇,用保鮮膜封住錐形瓶瓶口(防止乙醇揮發(fā)),在溫度為65 ℃條件下水浴振蕩8 min提取茶多酚,研究不同乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)茶多酚提取量的影響。
(2)提取時(shí)間對(duì)茶多酚提取量的影響
稱取6份茶酒糟粉末各1.0 g,固定乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,料液比為1∶30(g∶mL),瓶口密封,在水浴溫度65 ℃條件下分別振蕩2 min、4 min、6 min、8 min、10 min、12 min提取茶多酚,研究不同提取時(shí)間對(duì)茶多酚提取量的影響。
(3)料液比對(duì)茶多酚提取量的影響
稱取6份茶酒糟粉末各為2.50 g、1.67 g、1.25 g、1.00 g、0.83 g、0.71 g,加入25 mL乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇,即料液比分別為1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30、1∶35(g∶mL),用保鮮膜封住瓶口,在溫度65 ℃條件下水浴振蕩10 min提取茶多酚,研究不同料液比對(duì)茶多酚提取量的影響。
(4)提取溫度對(duì)茶多酚提取量的影響
稱取6份茶酒糟粉末各1 g,固定料液比為1∶25(g∶mL)、乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%,瓶口封住,水浴溫度分別為25 ℃、35 ℃、45 ℃、55 ℃、65 ℃、75 ℃,振蕩10 min提取茶多酚,研究不同提取溫度對(duì)茶多酚提取量的影響。
1.3.6 茶多酚提取工藝優(yōu)化正交試驗(yàn)[13-15]
參照單因素試驗(yàn)的結(jié)果,選取乙醇體積分?jǐn)?shù)(A)、提取時(shí)間(B)、料液比(C)、提取溫度(D)為試驗(yàn)因素,采用L16(45)正交表進(jìn)行試驗(yàn),確定提取茶多酚最優(yōu)工藝條件。正交試驗(yàn)因素與水平見(jiàn)表1。
表1 提取工藝優(yōu)化正交試驗(yàn)因素與水平Table 1 Factors and levels of orthogonal tests for extraction process optimization
1.3.7 紅外光譜檢測(cè)實(shí)驗(yàn)[17-19]
(1)茶多酚樣品制備
將茶多酚提取液旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮至黏稠狀,轉(zhuǎn)移至平皿中,60 ℃條件下烘干,得到茶多酚粗制品,研磨成粉末狀,-20 ℃保存[7],用于紅外光譜檢測(cè)。
(2)紅外光譜檢測(cè)方法
將茶多酚粉末按1∶100的質(zhì)量比與溴化鉀混合,研磨均勻后用壓片機(jī)壓制成薄片供測(cè)定,以溴化鉀為背景,設(shè)置光譜范圍為4 000~400 cm-1,光譜分辨率為2 cm-1,掃描次數(shù)為32次[11]。
1.3.8 茶多酚的抗氧化活性研究
(1)茶多酚提取液制備
根據(jù)正交試驗(yàn)得出的最佳提取工藝提取茶多酚,使用循環(huán)水式多用真空泵對(duì)其進(jìn)行抽濾,通過(guò)60 ℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮,使溶液大約減少1/3,將所得溶液放置冰箱保存[16],用于研究茶多酚的抗氧化活性試驗(yàn)。
(2)羥自由基清除率測(cè)定[12]
移取1 mL不同濃度梯度的茶多酚提取液于試管,然后依次向試管分別加入9 mmol/L FeSO4、9 mmol/L水楊酸-乙醇溶液、8.8 mmol/L H2O2各1 mL,在37 ℃水浴條件下反應(yīng)30 min,以蒸餾水為參比在波長(zhǎng)510 nm處測(cè)定其吸光度值,記為Ai。按照以上步驟把1 mL茶多酚提取液換成1 mL蒸餾水,其余步驟相同,作空白對(duì)照,測(cè)定吸光度值,記為Ao。
考慮到色素本身的吸光度值,移取1mL不同濃度梯度的茶多酚提取液至試管,接著依次向試管分別加入9 mmol/L FeSO4和9 mmol/L 水楊酸-乙醇溶液各1 mL,最后不加H2O2啟動(dòng)反應(yīng),而是加1 mL蒸餾水。37 ℃水浴條件下反應(yīng)30 min,以蒸餾水為參比在波長(zhǎng)510 nm處測(cè)定其吸光度值,記為Aj。
以維生素C(vitamin C,VC)作對(duì)照,進(jìn)行相同的實(shí)驗(yàn)。按下式計(jì)算茶多酚對(duì)羥自由基的清除率:
式中:Ao為空白對(duì)照;Ai為樣品組的吸光度值;Aj為樣品本底的吸光度值。
(3)DPPH自由基清除率測(cè)定[12]
向試管加入0.4 mL不同質(zhì)量濃度的茶多酚提取液,分別加入4 mL的0.1 mmol/L DPPH溶液,放到黑暗環(huán)境靜置反應(yīng)30 min,然后用乙醇作為參比,在波長(zhǎng)517 nm條件下測(cè)定其吸光度值,記為Ax。按以上步驟把0.4 mL茶多酚提取液換成0.4 mL的乙醇溶液進(jìn)行試驗(yàn),作為空白對(duì)照,記為Ao。
考慮到色素本身的吸光度值,移取不同質(zhì)量濃度的茶多酚提取液各0.4 mL至試管,分別加入4 mL的乙醇溶液,放到黑暗處?kù)o置30 min,以乙醇作為參比,測(cè)定其吸光度值,記為Ay。
以VC作對(duì)照,進(jìn)行相同的實(shí)驗(yàn)。按下式計(jì)算茶多酚對(duì)DPPH自由基的清除率:
式中:Ao為空白對(duì)照;Ax為樣品組的吸光度值;Ay為樣品本底的吸光度值。
2.1.1 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)茶多酚提取量的影響
乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)茶多酚提取量的影響見(jiàn)圖1。由圖1可知,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)在30%~80%范圍內(nèi),茶多酚提取量先增大后降低;乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%時(shí)茶多酚的提取量為34.32 mg/g,達(dá)到最高值。當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)>60%時(shí),茶多酚提取量呈現(xiàn)下降趨勢(shì)??赡苁且?yàn)檩^高的乙醇體積分?jǐn)?shù)會(huì)引起茶酒糟中的茶多糖、蛋白質(zhì)等物質(zhì)沉淀,從而導(dǎo)致茶多酚沉淀,因此提取液中茶多酚含量降低[7]。所以,通過(guò)單因素試驗(yàn),可以初步確定茶多酚提取的最佳乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%。
圖1 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)茶多酚提取量的影響Fig.1 Effect of ethanol concentration on tea polyphenols extraction
2.1.2 提取時(shí)間對(duì)茶多酚提取量的影響
提取時(shí)間對(duì)茶多酚提取量的影響見(jiàn)圖2。由圖2可知,提取時(shí)間在2~10 min范圍內(nèi)時(shí),茶多酚提取量隨著振蕩時(shí)間的延長(zhǎng)而逐漸增大并達(dá)到最大值35.63 mg/g,說(shuō)明提取時(shí)間的延長(zhǎng)有利于茶多酚的提取,當(dāng)提取時(shí)間超過(guò)10 min,茶多酚提取量下降,是因?yàn)殡S著反應(yīng)時(shí)間延長(zhǎng),茶多酚中的多酚羥基容易被氧化,會(huì)致使其氧化分解,從而茶多酚提取量減少[13]。因此,可以確定最佳提取時(shí)間為10 min。
圖2 提取時(shí)間對(duì)茶多酚提取量的影響Fig.2 Effect of extraction time on tea polyphenols extraction
2.1.3 料液比對(duì)茶多酚提取量的影響
料液比對(duì)茶多酚提取量的影響見(jiàn)圖3。由圖3可知,料液比在1∶10~1∶25(g∶mL)范圍內(nèi),茶多酚提取量隨著料液比減小而逐漸升高,最大值為36.13 mg/g。當(dāng)液料比<1∶25(g∶mL)時(shí),提取量變化幅度小,這是因?yàn)榧?xì)胞內(nèi)外的茶多酚已充分的溶解出來(lái)[7]。因此,初步確定最佳料液比為1∶25(g∶mL)。
圖3 料液比對(duì)茶多酚提取量的影響Fig.3 Effect of liquid ratio on tea polyphenols extraction
2.1.4 提取溫度對(duì)茶多酚提取量的影響
提取溫度對(duì)茶多酚提取量的影響結(jié)果見(jiàn)圖4。由圖4可知,當(dāng)提取溫度范圍在25~75 ℃時(shí),隨著提取溫度升高,茶多酚的提取量呈現(xiàn)不斷升高的趨勢(shì),在75 ℃條件下茶多酚的提取量達(dá)到38.73 mg/g。已知乙醇的沸點(diǎn)為78.4 ℃,因此提取溫度不能>78.4℃,即初步確定提取茶多酚最佳提取溫度為75 ℃。
圖4 提取溫度對(duì)茶多酚提取量的影響Fig.4 Effect of extraction temperature on tea polyphenols extraction
2.2.1 正交試驗(yàn)
以乙醇體積分?jǐn)?shù)(A)、提取時(shí)間(B)、料液比(C)、提取溫度(D)為評(píng)價(jià)指標(biāo),以茶多酚提取量為評(píng)價(jià)因素進(jìn)行正交試驗(yàn),試驗(yàn)因素與水平見(jiàn)表2,方差分析結(jié)果見(jiàn)表3。
表2 提取工藝優(yōu)化正交試驗(yàn)結(jié)果與分析Table 2 Results and analysis of orthogonal tests for extraction process optimization
表3 正交試驗(yàn)結(jié)果方差分析Table 3 Variance analysis of orthogonal tests results
由表2可知,4個(gè)因素對(duì)茶多酚提取量的影響次序依次為D(提取溫度)>A(乙醇體積分?jǐn)?shù))>C(料液比)>B(提取時(shí)間),通過(guò)極差分析結(jié)果可知,茶多酚的最優(yōu)乙醇提取工藝組合為A3B4C4D4,即乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%,提取時(shí)間為12 min,料液比為1∶30(g∶mL),提取溫度為75 ℃。
由表3可知,提取溫度對(duì)茶多酚提取效果有極顯著影響(P<0.01),乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)提取效果影響顯著(P<0.05),提取時(shí)間和料液比兩個(gè)因素對(duì)茶多酚提取效果均不顯著(P>0.05)。
2.2.2 驗(yàn)證試驗(yàn)
在最佳提取工藝條件下重復(fù)3次進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn)提取茶多酚,即乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%,提取時(shí)間12 min,料液比1∶30(g∶mL),提取溫度75 ℃。得到茶多酚提取量分別為41.61 mg/g、42.00 mg/g、40.96 mg/g,平均值為41.52 mg/g,高于正交試驗(yàn)結(jié)果中的最大提取量40.26 mg/g,表明該方法準(zhǔn)確,重復(fù)性好,適用于提取茶酒糟中的茶多酚。
紅外光譜圖(圖5)可以看出,茶多酚樣品在波數(shù)3432cm-1出現(xiàn)吸收峰,是O-H伸縮振動(dòng)區(qū),波數(shù)3 078 cm-1處有吸收峰為不飽和碳上的C-H伸縮振動(dòng)區(qū),在波數(shù)2 864 cm-1上的吸收峰為C-H伸縮振動(dòng)區(qū),波數(shù)1 695 cm-1是羰基的伸縮振動(dòng)區(qū),吸收峰1 424 cm-1、1 294 cm-1和1 187 cm-1為C-O伸縮振動(dòng)區(qū),波數(shù)939.4cm-1、711.7 cm-1是C-H面外彎曲振動(dòng)區(qū)[20-22]。所以推斷出此樣品中含有羰基、羥基等官能團(tuán),和茶多酚的主要官能團(tuán)基本符合。
圖5 茶多酚樣品紅外光譜圖Fig.5 Infrared spectrogram of tea polyphenols samples
2.4.1 茶多酚對(duì)羥自由基的清除效果
茶多酚對(duì)羥自由基的清除效果見(jiàn)圖6。由圖6可知,茶多酚質(zhì)量濃度在1~6 mg/mL范圍內(nèi),隨著茶多酚質(zhì)量濃度的增大,其對(duì)羥自由基的清除率也逐漸升高,達(dá)到91.72%的清除率。當(dāng)質(zhì)量濃度>5 mg/mL時(shí)其清除率趨于平緩。與VC作對(duì)照,在0.2~6 mg/mL范圍內(nèi),VC對(duì)羥自由基的清除率呈現(xiàn)一直上升的趨勢(shì)[23],當(dāng)VC質(zhì)量濃度為0.8 mg/mL時(shí),其對(duì)羥自由基清除率達(dá)到99.23%。
圖6 茶多酚對(duì)羥自由基的清除效果Fig.6 Scavenging effect of tea polyphenols on hydroxyl radical
通過(guò)計(jì)算得出茶多酚的半抑制濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50)值為2.74 mg/mL,VC的IC50值為0.35 mg/mL。表明茶多酚對(duì)羥自由基的清除效果不如VC,但也表現(xiàn)出較強(qiáng)的抗氧化活性[24]。
2.4.2 茶多酚對(duì)DPPH自由基的清除效果
茶多酚對(duì)DPPH自由基的清除效果見(jiàn)圖7。由圖7可知,在50~300 μg/mL的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),隨著茶多酚質(zhì)量濃度的升高,其對(duì)DPPH自由基的清除效果逐漸變好[25],當(dāng)茶多酚質(zhì)量濃度>300 μg/mL時(shí),其清除率趨于穩(wěn)定,達(dá)到93.7%。與VC作對(duì)照,在50~200 μg/mL范圍內(nèi),VC對(duì)DPPH自由基的清除率呈現(xiàn)一直上升的趨勢(shì),VC質(zhì)量濃度為180 μg/mL,其對(duì)羥自由基清除率達(dá)到95.8%。
圖7 茶多酚對(duì)DPPH自由基的清除效果Fig.7 Scavenging effect of tea polyphenols on DPPH free radicals
計(jì)值算得出茶多酚和VC的IC50值分別為151.59 μg/mL、117.23 μg/mL,表明從茶酒糟中提取的茶多酚對(duì)DPPH自由基清除效果弱于VC,但茶多酚仍表現(xiàn)出較強(qiáng)的抗氧化性。
該研究從茶酒糟提取茶多酚,通過(guò)單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)優(yōu)化,得到最佳提取工藝為乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,提取時(shí)間12 min,料液比1∶30(g∶mL),提取溫度75 ℃。在此最佳提取工藝條件下,茶多酚的提取量為41.52 mg/g。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,對(duì)茶酒糟進(jìn)行水浴振蕩乙醇提取茶多酚方法合理可行。對(duì)從茶酒糟中提取的茶多酚進(jìn)行抗氧化性研究中,茶多酚對(duì)羥自由基和DPPH自由基均具有較強(qiáng)的清除效果,表明其是一種很好的天然抗氧化劑。對(duì)茶多酚樣品進(jìn)行紅外光譜分析得出樣品中含有茶多酚主要的官能團(tuán)。
本研究對(duì)從茶酒糟中提取茶多酚及其抗氧化活性研究雖然取得了一定的成果,但仍存在一些不足之處,需要進(jìn)一步研究。對(duì)提取得到的茶多酚進(jìn)行純化試驗(yàn)研究,得到純度更高的茶多酚制品。本試驗(yàn)研究茶多酚提取液對(duì)自由基的清除效果,今后可研究提取液應(yīng)用于果蔬、肉類的抗氧化。