吳曉青，趙曉燕，周方園，范素素，張廣志，謝雪迎，周紅姿，張新建

（齊魯工業(yè)大學（山東省科學院）生態(tài)研究所／山東省應用微生物重點實驗室，山東 濟南 250103）

設施作物生產(chǎn)過程中，利用基質(zhì)進行育苗已成為作物種苗生產(chǎn)的主要方式，育苗基質(zhì)材料質(zhì)地輕，保水、保肥、透氣性好，是種苗工廠化生產(chǎn)的基礎物質(zhì)，優(yōu)良的基質(zhì)可充當“植物根系營養(yǎng)庫”，決定了栽培植物的營養(yǎng)供給及生長發(fā)育狀況［1］。前人研究表明，利用微生物可改善根際礦質(zhì)元素有效性、調(diào)節(jié)根際次生代謝物、增強作物抗逆性等［2］；將定向篩選的具有生防促生等功能的微生物加入傳統(tǒng)基質(zhì)具有提質(zhì)增產(chǎn)效果，是作物通過與有益微生物互作進行的主動調(diào)節(jié)。例如在基質(zhì)中添加芽孢桿菌等微生物對辣椒、番茄等蔬菜作物具有壯苗效果［3］。外添微生物主要來源有商品化的生防菌及菌肥產(chǎn)品［4］、實驗室篩選的高效生防促生菌株制劑［5］、廢棄物發(fā)酵菌肥等［6］。外添微生物的選擇往往僅考察功能性菌株單方面作用，忽略了植物對其定殖微生物的主動選擇效應。近年來研究發(fā)現(xiàn)，植物表面及內(nèi)部富集的微生物比宿主植物編碼了更多的基因，通過協(xié)作和競爭形成穩(wěn)定的群落結(jié)構(gòu)，對作物抗逆及生長發(fā)育至關重要［7，8］。根際是植物與微生物互作的重要場所，植物根際微生物對于維持植物健康發(fā)揮著重要作用［9，10］，其中細菌占菌群種類的大多數(shù)。目前一種完善農(nóng)業(yè)生態(tài)系統(tǒng)的新策略，即利用植物自身的有益微生物特征菌群，分離構(gòu)建植物體的微生態(tài)穩(wěn)定性，從而達到抗逆增產(chǎn)提質(zhì)的目的［9］，受到廣泛關注。為了驗證在種苗基質(zhì)培養(yǎng)中添加作物自身根際細菌的促生效應，本研究對辣椒根際高豐度細菌進行分離鑒定，篩選具有生防及促生活性的菌株，并將其回接至基質(zhì)培養(yǎng)的同品種辣椒苗，驗證根際細菌的促生作用，為研發(fā)功能性生物基質(zhì)奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 樣品采集和處理

辣椒根系樣品于2020年采自濟南市設施蔬菜溫室，辣椒品種為赤峰欣育（甜椒）。隨機采集幼苗期、初花期和結(jié)果期各6棵辣椒植株新鮮根系，收集離地面5～15 cm的根系組織，置于50 mL滅菌Falcon離心管（BD公司，美國）中，用無菌水清洗至無肉眼可見的土壤顆粒。隨后將根系轉(zhuǎn)移至新的50 mL Falcon離心管，加入滅菌的1×PBS（phosphate buffered saline，pH＝7）30 mL，室溫下180 r／min振蕩15 min。PBS重復清洗3次。將清洗后的根系取出并置于滅菌濾紙上吸干表面PBS，切分成約2 mm小段并混合。稱取1 g根系組織轉(zhuǎn)移至50 mL離心管（Corning，美國），無菌環(huán)境中加入10 mL（10 mmol／L）滅菌MgCl2溶液重懸，然后用無菌搗杵研磨直至均質(zhì)［11］。獲得的根系均質(zhì)液一部分用于16SrDNA測序分析菌群結(jié)構(gòu)，一部分用于平板培養(yǎng)。

1.2 16SrDNA測序

對辣椒不同生長期根系均質(zhì)液分別進行DNA提取，PCR擴增純化后構(gòu)建小片段文庫，在Illumina NovaSeq平臺（北京諾禾致源科技股份有限公司）進行雙末端測序。測序原始數(shù)據(jù)經(jīng)過拼接、過濾，得到有效數(shù)據(jù)。然后基于有效數(shù)據(jù)進行OTU（operational taxonomic units）聚類和物種分類分析。根據(jù)OTU聚類結(jié)果，對每個OTU的代表序列做物種注釋，獲得對應的物種信息和基于物種的豐度分布情況。對每時期的6個樣本的物種豐度取并集加和，然后選取每時期在屬水平上相對豐度排名前30（Top30）的菌種生成物種相對豐度柱形累加圖，對各時期菌種種類比較分析形成韋恩圖。

1.3 辣椒根際細菌的分離和鑒定

將各時期根系均質(zhì)液混合均勻，用無菌水在無菌試管中梯度稀釋為10－2、10－3、10－4、10－5、10－6、10－7和10－8，從各梯度中吸取100μL均勻涂布在TSA（trypton soy agar，Solarbio，中國）平板上，于30℃微生物培養(yǎng)箱內(nèi)倒置培養(yǎng)1～3 d，觀察菌落生長情況。根據(jù)菌落形態(tài)特征，將差異菌落在新TSA平板上劃線獲得單菌落，重復3次，根據(jù)形態(tài)特征對細菌進行分類。

用10μL移液槍頭蘸取單菌落于10μL有滅菌水的96孔PCR板（Axygen，美國）中，反復吸打混勻，加入16.6μL Buffer 1（25 mmol／L NaOH＋0.2 mmol／L EDTA－Na2，pH＝12），吸打混勻，覆膜后在PCR儀（Eppendorf，德國）上95℃運行30 min。離心取上清，加入16.6μL Buffer 2（Tris－HCl，pH＝7.46），吸打混勻，獲得裂解液作為模板進行PCR擴增［11］。采用細菌16S rDNA通用引物27 F（5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′）和1492 R（5′-TACGGCTACCTTGTTACGACTT-3′）進行PCR擴增。PCR反應體系（30μL）：裂解液3 μL，10×Taqbuffer（含Mg2＋）3μL，dNTP（100 mmol／L）2.4μL，引物27F（10μmol／L）0.3μL，引物1492R（10μmol／L）0.3μL，TaqTMHS（Takara，日本）0.15μL，ddH2O 20.85μL。PCR擴增程序：95℃5 min；94℃40 s，52℃30 s，72℃90 s，35個循環(huán)；72℃10 min。PCR產(chǎn)物送生工生物工程（上海）股份有限公司青島測序部測序，測序結(jié)果在GenBank中比對并鑒定種屬。使用Mega X鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)進化樹，設定Bootstrap值為500。

1.4 根際細菌的生防及促生指標檢測

1.4.1 對病原菌的拮抗試驗 測試用病原菌菌株為本實驗室保存的9株可侵染辣椒的病原真菌，分別為藜生鏈格孢（Alternaria chenopodiicola）、多主棒孢霉（Corynespora cassiicola）、角擔菌（Ceratobasidiumsp.）、極細枝孢霉（Cladosporium tenuissimum）、灰霉菌（Botrytis cinerea）、木賊鐮孢菌（Fusarium equiseti）、變紅鐮孢 菌（F.incarna-tum）、黃色鐮孢菌（F.culmorum）和輪枝鐮孢菌（F.verticillioides）。

病原菌在PDA（索萊寶，中國）平板上28℃活化3次；辣椒根際細菌在TSA平板上30℃活化3次，轉(zhuǎn)移至TSB（索萊寶，中國）培養(yǎng)液中振蕩培養(yǎng)至OD600＝0.5待用。用5 mm打孔器打取病原菌菌落邊緣菌餅，接種于9 cm PDA平板中軸線距離邊緣5 mm處，在中軸線相對位置打5 mm孔并加入根際細菌菌液50μL，28℃暗培養(yǎng)，對照為不接種根際細菌的病原菌單獨培養(yǎng)平板，其余條件一致。對于生長速度均衡的病原菌（灰霉菌、變紅鐮孢菌和角擔菌），測量抑菌圈半徑時間為對照病原菌菌餅沿中軸線長到平板邊緣時，抑制率Ⅰ（%）＝（1－對峙病原菌半徑／對照病原菌半徑）×100。對于生長速度不均衡的病原菌（木賊鐮孢菌、黃色鐮孢菌、輪枝鐮孢菌、藜生鏈格孢、多主棒孢霉和極細枝孢霉），在接種第3天和第6天分別測量病原菌沿中軸線的半徑，并計算兩次測量半徑的差值。抑制率Ⅱ（%）＝（1－對峙半徑差／對照半徑差）×100。篩選抑制率Ⅰ≥20%（且抑菌圈半徑≥1 cm）或抑制率Ⅱ≥50%的菌株，作為待測活性菌株。

1.4.2 解磷活性、鐵載體和IAA活性的檢測 解磷活性檢測培養(yǎng)基參考Nautiyal［12］。NBRIP培養(yǎng)基（L）：葡萄糖10 g，Ca3（PO4）25 g，MgCl2·6H2O 5 g，MgSO4·7H2O 0.25 g，KCl 0.2 g，（NH4）2SO40.1 g，瓊脂15 g。pH值為7.5～8.0。

鐵載體活性檢測培養(yǎng)基參考Schywn等［13］。CAS培養(yǎng)基（L）：CAS 60.5 mg，CTAB 72.9 mg，1 mmol／L FeCl3·6H2O 10 mL，0.1 mol／L磷酸緩沖液（NaCl 0.125 g、NH4Cl 0.25 g、NaH2PO4·2H2O0.6 g、Na2HPO4·12H2O 2.5 g、KH2PO40.08 g、H2O 1000 mL）50 mL，H2O 940 mL，瓊脂15 g。pH＝6.8。

挑取根際細菌單菌落，在TSB培養(yǎng)液中振蕩培養(yǎng)至OD600＝0.5，吸取10μL菌液點接至NBRIP培養(yǎng)基或CAS培養(yǎng)基上，每個菌株3次重復，30℃黑暗培養(yǎng)96 h，觀察培養(yǎng)基變化。具有解磷活性的菌株應在NBRIP培養(yǎng)基上產(chǎn)生透明圈，具有鐵載體的菌株應在CAS培養(yǎng)基上出現(xiàn)橙紅色暈圈。

IAA活性檢測：將根際細菌單菌落接種于TSB培養(yǎng)液中振蕩培養(yǎng)至OD600＝0.8。取50μL菌液點接在金氏B培養(yǎng)基（青島高科園海博生物技術有限公司）上，30℃黑暗培養(yǎng)96 h，取4 mL Salkowski顯色劑（0.5 mol／L FeCl3與35%HClO4按體積比1∶50配制）滴加到培養(yǎng)基上，25℃避光反應60 min，觀察菌落周圍是否有粉紅色暈圈。每個菌株3次重復。

1.5 辣椒根際細菌回接辣椒的基質(zhì)盆栽試驗

將辣椒種子用傳統(tǒng)溫湯浸種法催芽：首先將種子置于55℃水中，保持水溫攪動15 min，室溫浸泡6 h，分散置于裝有濕濾紙的平皿上，28℃黑暗條件催芽。催芽時浸泡在1×104cfu／mL的每種待測菌懸液中作為單菌處理，將所有待測菌混合成1×105cfu／mL濃度作混菌處理（MIX），無菌水浸泡作為對照處理（CK），每處理共24個種子，平均種植于3個育苗缽內(nèi)（為3個平行重復）。種子露白后，種植于商品育苗基質(zhì)（湘正農(nóng)科，通用型，基質(zhì)成分為泥炭、脫鹽椰糠、蛭石和珍珠巖，有機質(zhì)22.21%，pH值為5.5～7.0，出廠前滅菌處理）。不施任何肥料，在26℃、長日照條件下正常管理2周后，回接組每缽再補接1×106cfu／mL單株或混合菌液3 mL，對照組無菌水處理。待大部分植株展開4片真葉時進行取樣統(tǒng)計。測量每株最大葉片的葉長和葉寬；將整苗脫離育苗缽并小心洗脫根系外附著物，立即鋪平用掃描儀掃描成像，用Image J 1.51軟件測量掃描圖片中的根長；吸干植株表面水分后，分別稱量根系和地上部重量。

1.6 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析

采用Microsoft Excel進行數(shù)據(jù)處理。利用SPSS 21.0軟件進行差異顯著性分析（P＜0.05）；SigmaPlot 12.5制作柱狀圖；BioEdit軟件繪制系統(tǒng)發(fā)育進化樹。

2 結(jié)果與分析

2.1 辣椒根際細菌的菌群分析及特征群落的分離鑒定

通過16S rDNA測序分析，根據(jù)物種注釋結(jié)果（取條帶數(shù)大于等于5），辣椒幼苗期根際細菌有171個屬、初花期有199個屬、結(jié)果期有156個屬。辣椒3個生長時期屬水平上豐度Top30的菌群結(jié)構(gòu)和豐度有差異。幼苗期豐度最高的3個屬為黃桿菌屬（Flavobacterium）、鏈霉菌屬（Streptomyces）和纖維弧菌屬（Cellvibrio）；初花期為根瘤菌屬（Rhizobium）、假單胞菌屬（Pseudomonas）和鏈霉菌屬；結(jié)果期為泛菌屬（Pantoea）、假單胞菌屬和食酸菌屬（Acidovorax）（圖1A）。在相對豐度Top30的屬中，3個時期均出現(xiàn)的屬有14個（圖1B），分別為黃桿菌屬、鏈霉菌屬、纖維弧菌屬、假單胞菌屬、根瘤菌屬、列契瓦尼爾氏菌屬（Lechevalieria）、Roseateles、德沃斯氏菌屬（Devosia）、食酸菌屬、Tahibacter、鞘脂菌屬（Sphingobium）、芽孢桿菌屬（Bacillus）、類芽孢桿菌屬（Paenibacillus）和氣單胞菌屬（Aeromonas），將該14個屬作為辣椒品種的特征群落。

在辣椒整個生長期，利用TSA培養(yǎng)基分離獲得的辣椒根際細菌共102株，經(jīng)形態(tài)和16SrDNA測序鑒定屬于15屬102個種。與16SrDNA測序結(jié)果比對可知，分離得到的細菌中屬于高通量分析中辣椒特征群落的有7個屬共82株菌（圖1C），包括食酸菌屬（1株）、芽孢桿菌屬（45株）、黃桿菌屬（5株）、假單胞菌屬（17株）、類芽孢桿菌屬（2株）、根瘤菌屬（10株）和鏈霉菌屬（2株）。將上述分離得到的82株根際細菌進行活性分析。其余分離得到的菌株包括布哈加瓦氏菌（Bhargavaea）、成對桿菌屬（Dyadobacter）、假芽孢桿菌（Fictibacillus）、賴氨酸芽孢桿菌（Lysinibacillus）、森林土源芽孢桿菌（Solibacillus）、微桿菌屬（Microbacterium）、申氏菌（Shinella）和寡養(yǎng)單胞菌（Stenotrophomonas）共8個屬20株細菌，其豐度均未達到各時期的Top30，本研究后續(xù)不采用。

圖1 辣椒根際細菌的16SrDNA測序分析和分離結(jié)果

2.2 辣椒根際拮抗病原菌及促生活性的篩選

對分離獲得的82株根際細菌進行平板抑菌試驗，獲得病原菌藜生鏈格孢的拮抗菌［副地衣芽孢桿菌（B.paralicheniformis）W17等］21株；病原菌灰霉菌的拮抗菌［多粘類芽孢桿菌（P.polymyxa）W33、貝 萊 斯芽 孢桿菌（B.velezensis）W19－2等］17株；病原菌多主棒孢霉的拮抗菌［多粘類芽孢桿菌W33、枯草芽孢桿菌（B.subtilis）W3－B9等］18株；病原菌角擔菌的拮抗菌［枯草芽孢桿菌W3－B9等］10株；病原菌極細枝孢霉的拮抗菌［枯草芽孢桿菌W3－B9、解淀粉芽孢桿菌（B.amyloliquefaciens）W2－1等］25株；病原菌木賊鐮孢菌的拮抗菌（解淀粉芽孢桿菌W3－F9、多粘類芽孢桿菌W33等）27株；病原菌變紅鐮孢菌的拮抗菌（多粘類芽孢桿菌W33、枯草芽孢桿菌W3－B9等）18株；病原菌黃色鐮孢菌的拮抗菌（多粘類芽孢桿菌W33、枯草芽孢桿菌W3－B9等）24株；病原菌輪枝鐮孢菌的拮抗菌［解淀粉芽孢桿菌W2－1、普沙根瘤菌（R.pusense）W4－C11等］36株。抑菌譜較廣的拮抗菌有9株，其中多粘類芽孢桿菌W33、解淀粉芽孢桿菌W3－C2、解淀粉芽孢桿菌W2－1和貝萊斯芽孢桿菌W19－2可拮抗9種病原菌，解淀粉芽孢桿菌W2－2、枯草芽孢桿菌W3－B9、枯草芽孢桿菌W3－F8、解淀粉芽孢桿菌W3－F9、普沙根瘤菌W4－C11可拮抗8種病原菌。

對分離獲得的82株根際細菌進行鐵載體活性、解磷能力和IAA活性檢測，結(jié)果表明，能溶解Ca3（PO4）2的菌株共31株，其中阿氏芽孢桿菌（B.aryabhattai）W3，香茅醇假單胞菌（Ps.citronellolis）W31－1、W31－2，銅綠假單胞菌（Ps.aeruginosa）W34，Ps.mendocinaW35、假單胞菌W36－1、W36－5、W36－6，普沙根瘤菌W37－1、W37－2和根瘤菌W38－1產(chǎn)生的透明圈徑（透明圈半徑減去菌落半徑）＞1.5 cm。具有鐵載體活性的菌株共15株，包括假單胞菌W36－1、W36－2、W36－3、W36－4、W36－5、W36－6、W36－7，阿氏芽孢桿菌W3，香茅醇假單胞菌W31－1、W31－2，銅綠假單胞菌W34，Ps.mendocinaW35，根瘤菌W38－2和鏈霉菌W42－1、W42－2。具有IAA活性的菌株共9株，包括多粘類芽孢桿菌W33，解淀粉芽孢桿菌W3－B9、W3－C2，枯草芽孢桿菌W3－B9，阿氏芽孢桿菌W3，普沙根瘤菌W37－1、W37－2和根瘤菌W38－1、W38－2。

綜合上述生防及促生活性檢測結(jié)果，以同時兼具抑菌和促生活性為標準，最終選擇多粘類芽孢桿菌W33，普沙根瘤菌W37－1、W37－2，根瘤菌W38－1、W38－2，香茅醇假單胞菌W31－1、W31－2，貝萊斯芽孢桿菌W19－2，阿氏芽孢桿菌W3，Ps.mendocinaW35，假單胞菌W36－6，枯草芽孢桿菌W3－B9，解淀粉芽孢桿菌W3－C2、W3－F9、W2－1共15株細菌進行促生作用盆栽試驗（圖2）。

圖2 從辣椒根際篩選的15株細菌的防病促生活性特征圖

2.3 根際細菌回接辣椒的盆栽試驗

結(jié)果（圖3A、B）表明，根際細菌對辣椒地上部及根鮮重均有提高作用，其中多粘類芽孢桿菌W33對地上部和根鮮重均有顯著提高作用（P＜0.05），地上部鮮重較對照提高48.52%，根鮮重提高151.61%。另外，普沙根瘤菌W37－1和W37－2、根瘤菌W38－1和W38－2、解淀粉芽孢桿菌W3－C2、阿氏芽孢桿菌W3、枯草芽孢桿菌W3－B9、香茅醇假單胞菌W31－2只顯著提高了根鮮重（P＜0.05），較對照分別提 高73.19%、126.12%、93.69%、89.32%、109.29%、95.63%、76.10%和75.54%。混合菌可顯著提高地上部和根鮮重（P＜0.05），較對照分別提高40.52%、125.95%。根冠比反映了根系與地上部關系，一般認為，根冠比越高，植株生長越好。由圖3C可知，根際細菌W38－2、W3－C2、W37－2和W33對根冠比有顯著改善作用（P＜0.05），較對照分別提高98.05%、93.78%、86.35%和68.74%；混合菌顯著提高根冠比60.74%。

對根長和葉片大?。ㄈ~長×葉寬）進行測量，結(jié)果（圖3D、E）表明，除了W35和W31－1與對照無顯著差異，其余根際細菌都顯著增加了根長（P＜0.05），增幅為22.85%～43.95%?；旌暇部娠@著促進根長（P＜0.05），增幅為35.79%。與對照相比，根際細菌W36－6和混合菌對葉片大小增加作用明顯，而W3－C2、W3－B9、W31－1和W35等菌株抑制葉片生長，但所有菌株的作用均不顯著（P＜0.05）。

綜上，15株根際細菌對辣椒生長均有不同程度的促進作用，其中多粘類芽孢桿菌W33的增重效果最顯著，還可顯著促進根的生長，對根冠比也有顯著的調(diào)節(jié)作用。而菌株混合接種不僅具有顯著的增重、調(diào)節(jié)根冠比、促根生長的效果，還在一定程度上增加了葉面積（圖3F），在各促生指標上都表現(xiàn)突出。

圖3 15株辣椒根際細菌及混合菌回接辣椒對其生長的影響

3 討論與結(jié)論

本研究分析了辣椒幼苗期、初花期和結(jié)果期的根際細菌群落結(jié)構(gòu)，3個生長期的相對豐度均在Top30的屬有14個，分別為黃桿菌屬、鏈霉菌屬、纖維弧菌屬、假單胞菌屬、根瘤菌屬、列契瓦尼爾氏菌屬、Roseateles、德沃斯氏菌屬、食酸菌屬、Tahibacter、鞘脂菌屬、芽孢桿菌屬、類芽孢桿菌屬和氣單胞菌屬。其中7個屬可通過TSA培養(yǎng)獲得，包括食酸菌屬、芽孢桿菌屬、黃桿菌屬、假單胞菌屬、類芽孢桿菌屬、根瘤菌屬和鏈霉菌屬。除了食酸菌屬通常為植物病原菌以外［14］，其它多為具有植物促生潛力的菌屬。例如，芽孢桿菌屬中的解淀粉芽孢桿菌［15］等、黃桿菌屬中的黃桿菌［16］、假單胞菌屬中的Ps.plecoglossicida［17］等、根瘤菌屬中的普沙根瘤菌［18］等和鏈霉菌屬中的變異鏈霉菌（S.variabilis）［19］等均被報道為植物根際促生菌（PGPR）。

對分離的屬于辣椒特征群落7個屬的82株細菌進行抑菌及促生試驗。抑菌性測定選用可侵染辣椒的9種真菌病原菌，其中藜生鏈格孢可引起辣椒黑斑病［20］，多主棒孢霉引起辣椒棒孢葉斑?。?1］，角擔菌引起絲核菌病害［22］，極細枝孢霉引起枝孢菌病害［23］，灰霉菌引起灰霉?。?4］，木賊鐮孢菌、變紅鐮孢菌、黃色鐮孢菌和輪枝鐮孢菌引起辣椒腐爛病。辣椒根際細菌中，多粘類芽孢桿菌W33、解淀粉芽孢桿菌W3－C2、解淀粉芽孢桿菌W2－1和貝萊斯芽孢桿菌W19－2對上述9種病原菌均有抑制作用。其中多粘類芽孢桿菌對多主棒孢霉、角擔菌、極細枝孢霉和木賊鐮孢的抑菌性，解淀粉芽孢桿菌對多主棒孢霉、角擔菌、極細枝孢霉、木賊鐮孢菌、變紅鐮孢菌和黃色鐮孢菌的抑菌性和貝萊斯芽孢桿菌對多主棒孢霉、角擔菌、極細枝孢霉、木賊鐮孢菌和變紅鐮孢菌的抑菌性鮮有報道。對82株細菌的解磷、鐵載體和IAA活性的測定結(jié)果表明，同時具有3種促生活性的菌株為阿氏芽孢桿菌W3，另外解淀粉芽孢桿菌W3－C2和W3－F9、普沙根瘤菌W37－1和W37－2、根瘤菌W38－1同時具有解磷和IAA活性；Ps.mendocinaW35、香茅醇假單胞菌W31－1和W31－2、假單胞菌W36－6同時具有鐵載體和解磷活性；根瘤菌W38－2同時具有鐵載體和IAA活性。

基質(zhì)盆栽試驗中，除了假單胞菌屬的菌株Ps.mendocinaW35和香茅醇假單胞菌W31－1對辣椒根長影響不顯著，其它菌株均有顯著的促進作用。大部分根際細菌對地上部分的促生效果不顯著，僅多粘類芽孢桿菌W33顯著增加了地上部鮮重；所有菌株對葉片大小的影響未達顯著水平；根瘤菌屬、芽孢桿菌屬、類芽孢桿菌屬都有菌株顯著增加根冠比，而假單胞菌屬的菌株對根冠比無顯著影響。本研究中對辣椒具有較好促生作用的菌株有多粘類芽孢桿菌W33和解淀粉芽孢桿菌W3－C2等。張楊等［25］從‘蘇椒5號’中篩選的高產(chǎn)IAA和ACC脫氨酶的枯草芽孢桿菌NJAU－G10可顯著促進基質(zhì)栽培辣椒的生長。推測在促生作用上，具有IAA活性是重要的指標。另外，混合菌接種的促生效果整體優(yōu)于單菌接種，但在實際應用中多菌株發(fā)酵的難度顯然高于單菌株發(fā)酵，下一步需進行發(fā)酵條件的優(yōu)化。本研究驗證了辣椒根際細菌對基質(zhì)栽培辣椒的促生作用，為研發(fā)功能性生物基質(zhì)奠定了基礎。