賈紹華,金詩鵬,孫萌遙,丁海鑫,楊 波,葉 超
(哈爾濱商業(yè)大學 藥學院(藥物工程技術研究中心),黑龍江 哈爾濱 150076)
上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)是胚胎發(fā)育、細胞纖維化及腫瘤轉(zhuǎn)移過程中的重要環(huán)節(jié)[1]。在EMT過程中,下調(diào)E-鈣黏蛋白(E-cadherin)和過量表達間波形蛋白(vimentin)能導致細胞之間的黏附性降低,細胞的運動能力增強,同時為侵襲提供了必要條件。藥物可通過調(diào)節(jié)多種信號通路抑制EMT過程,進一步影響腫瘤的遷移和侵襲,從而發(fā)揮抗腫瘤作用。芒柄花素(formononetin,F(xiàn)MN)是從黃芪、甘草、葛根的根中分離出的異黃酮類化合物,具有抗腫瘤、抗菌、解痙攣等多種藥理活性[2-3]。據(jù)報道,芒柄花素可抑制卵巢癌、結直腸癌、鼻咽癌等多種腫瘤細胞增殖、遷移和侵襲,誘導細胞凋亡,其抗腫瘤作用可能與調(diào)控磷脂酰肌醇3激酶/蛋白激酶B(PI3K/Akt)、絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)和Janus激酶/信號轉(zhuǎn)導和轉(zhuǎn)錄激活因子(JAK-STAT)信號通路有關[4-6]。本文以腫瘤細胞轉(zhuǎn)移過程EMT為切入點,在確定芒柄花素對人乳腺癌MCF-7細胞增殖、遷移、黏附和侵襲能力有抑制作用的基礎上,研究芒柄花素對EMT過程中E-cadherin和vimentin,以及轉(zhuǎn)化生長因子β(TGF-β)信號通路的TGF-β1、基質(zhì)金屬蛋白激酶2/9(MMP-2/9)及MAPK信號通路的磷酸化細胞外調(diào)節(jié)激酶1/2(p-ERK1/2)、磷酸化p38蛋白(pp38)表達的影響,揭示芒柄花素抑制腫瘤遷移和侵襲的作用機制,為更好地開發(fā)和利用芒柄花素抗腫瘤作用提供科學依據(jù)。
ECO-170P-230 CO2培養(yǎng)箱(美國NBS公司);iMark酶標儀(美國Bio-Rad公司);CKX-41-32型倒置顯微鏡(日本Olympus公司);Image Quant LAS 500凝膠成像系統(tǒng)(美國GE公司)。
芒柄花素(批號:MUST-20041602,質(zhì)量分數(shù)>99.03 %,成都曼思特);胎牛血清(批號:1910050,浙江天杭);RPMI 1640溶液(批號:MA0215),CCK-8(批號:MA0218-5-aprolf,大連美侖);牛血清白蛋白(BSA,批號:EZ2811E172,廣州賽國);纖連蛋白(FN,批號:F8180,北京索寶來);RIPA裂解液(批號:P0013C,碧云天);Matrigel(批號:0097011,美國BD公司);鹽酸表阿霉素(批號:17110102,哈爾濱三聯(lián)藥業(yè)股份有限公司);鼠抗GAPDH抗體,鼠抗E-cadherin抗體,鼠抗p38抗體,鼠抗p-p38抗體(碧云天);兔抗MMP-2抗體,兔抗MMP-9抗體,兔抗TGF-β1抗體(博奧森);鼠抗vimentin抗體,鼠抗ERK抗體,鼠抗p-ERK抗體(沈陽萬類)。
人乳腺癌MCF-7細胞株,由哈爾濱商業(yè)大學藥學院(藥物工程技術研究中心)提供。
取處于對數(shù)生長期的MCF-7細胞,調(diào)節(jié)細胞濃度至3×104個細胞/ml,按每孔200 μl接種于96孔板中,放入37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h后,給藥組分別加入濃度為6,12,24,48,96 μmol/L的芒柄花素。陽性對照組加鹽酸表阿霉素,陰性對照組加入等量的空白培養(yǎng)液。繼續(xù)培養(yǎng)2 d。各組均設置6個重復組。48 h后,向每個孔中加入CCK-8。反應3 h后,計算細胞生長抑制率和半數(shù)抑制濃度(IC50)。抑制率(%)=[(對照孔吸光度-試驗孔吸光度)/(對照孔吸光度-空白孔吸光度)]×100。
取處于對數(shù)生長期的MCF-7細胞并調(diào)節(jié)細胞密度至6×105個細胞/ml,取1.6 ml細胞懸液接種于6孔板中,混勻,置于37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,取出6孔板,顯微鏡下觀察,待細胞完全貼壁后在單層細胞上劃痕致傷,吸出培養(yǎng)液,每孔用PBS清洗2次。分為5組,陽性對照組各孔加鹽酸表阿霉素溶液1.6 ml,使其終濃度為0.50 μmol/L,陰性對照組加空白培養(yǎng)液1.6 ml,實驗組各孔分別加芒柄花素溶液1.6 ml,使其終濃度為18.75,37.50,75.00 μmol/l,拍照記錄后移入培養(yǎng)箱,24 h后取出6孔板再次拍照,計算傷口愈合率。傷口愈合率(%)=(遷移前劃痕面積-遷移后劃痕面積)/遷移前劃痕面積×100。
調(diào)整細胞密度為2.5×105個細胞/ml,取1.6 ml細胞懸液接種于6孔板中,放入37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。24 h后,陽性對照組各孔加鹽酸表阿霉素溶液1.6 ml,使其終濃度為0.50 μmol/L,陰性對照組加空白培養(yǎng)液1.6 ml,實驗組各孔分別加芒柄花素溶液1.6 ml,使其終濃度為18.75,37.50,75.00 μmol/L。稀釋Matrigel膠,將稀釋后的Matrigel膠鋪在96孔板里,每孔35 μl。置于37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱24 h。取出6孔板,胰蛋白酶消化后離心,除去含血清的培養(yǎng)基,用RP1640溶液稀釋,將細胞密度調(diào)整為2.5×105個細胞/ml。取96孔板,用2 % BSA封閉30 min,按每孔150 μl接種于96孔板中,置于37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1 h,取出,用PBS輕輕洗一次,加入噻唑藍(MTT),4 h后每孔加入DMSO,測OD值,計算黏附率。黏附率(%)=實驗組吸光度/對照組吸光度×100。
調(diào)整細胞密度為2.5×105個細胞/ml,取1.6 ml細胞懸液接種于6孔板中,放入37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。24 h后,陽性對照組各孔加鹽酸表阿霉素溶液1.6 ml,使其終濃度為0.50 μmol/L,陰性對照組加空白培養(yǎng)液1.6 ml,實驗組各孔分別加芒柄花素溶液1.6 ml,使其終濃度為18.75,37.50,75.00 μmol/L。Matrigel膠用無酚紅RPMI1640按1:6稀釋,然后鋪在Tranwell上室,每孔60 μl。置于37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h。取出Tranwell小 室,將配制好的FN均勻涂在小室下室,置于超凈臺中干燥30 min,再在下室加入0.1 %BSA 200 μl,置培養(yǎng)箱孵育30 min。取出6孔板,加胰蛋白酶消化細胞,1500 r/min離心5 min,除去含血清的培養(yǎng)基,用無酚紅RP1640稀釋,將細胞調(diào)整為2.5×105個細胞/ml,從培養(yǎng)箱中取出Transwell小室并置于超凈臺中,向下室加入含10 %胎牛血清的培養(yǎng)基,上室吸去培養(yǎng)基,并加入細胞懸浮液200 μl,置于37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱中24 h。最后,棄去上室細胞液,將上室、下室的細胞固定染色,取棉簽將上室未侵襲過去的細胞擦去,顯微鏡下觀察、拍照,計算侵襲率。侵襲率(%)=實驗組的細胞數(shù)/對照組細胞數(shù)×100。
收集經(jīng)18.75 μmol/L、37.50 μmol/L和75.00 μmol/L芒柄花素作用48 h后的MCF-7細胞,經(jīng)RIPA裂解液法提取細胞總蛋白。檢測TGF-β1、E-cadherin、vimentin、MMP-2、MMP-9、ERK1/2、p-ERK1/2、P38、p-p38蛋白的表達量變化,以β-actin為內(nèi)參,12 %聚丙烯酰胺凝膠電泳,轉(zhuǎn)至硝酸纖維素(NC)膜上,室溫下脫脂奶粉封閉2 h,加入相應的一抗抗體,4 ℃孵育過夜,Tris-HCl緩沖鹽溶液洗滌后加入二抗,室溫孵育2 h。洗滌后增強型化學發(fā)光(ECL)顯色,Image Quant LAS 500凝膠成像儀分析。
采用SPSS 21.0軟件對實驗數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計學處理,各組實驗數(shù)據(jù)均值采用均數(shù)±標準差表示,采用單因素方差分析比較均值,以P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。
與對照組比較,隨芒柄花素給藥濃度的上升,對細胞增殖的抑制率逐漸增加,說明不同劑量的芒柄花素處理MCF-7細胞48 h,對MCF-7細胞的增殖有較好的抑制作用,且作用呈劑量依賴性。芒柄花素的IC50值為(74.61±0.03)μmol/L,根據(jù)IC50值確定后期給藥濃度分別為18.75,37.50,75.00 μmol/L。見表1。
表1 芒柄花素對MCF-7細胞增殖的影響(n=6)
細胞遷移實驗結果表明,不同濃度的芒柄花素處理MCF-7細胞48 h后,與陰性對照組比較,細胞遷移面積隨芒柄花素給藥劑量的增加而降低,各組的遷移率分別為:陰性對照組63.987 %±0.019 %,陽性對照組29.490 %±0.004 %,芒柄花素低劑量組56.537 %±0.008 %,中劑量組29.253 %±0.004 %,高劑量組14.880 %±0.001 %,芒柄花素各劑量給藥組的MCF-7細胞遷移能力顯著下降(P<0.01),且作用呈劑量依賴性,提示芒柄花素具有抑制MCF-7細胞遷移的作用。見圖1。
圖1 芒柄花素對MCF-7細胞遷移的影響(4×10)
細胞黏附實驗結果表明,不同濃度的芒柄花素處理MCF-7細胞48 h后,與陰性對照組相比,細胞黏附率隨給藥劑量的增加而下降,各組的黏附率分別為:陽性對照組60.251 %±0.054 %、芒柄花素低劑量組99.320 %±0.130 %、中劑量組59.370 %±0.118 %、高劑量組34.443 %±0.038 %。芒柄花素中劑量和高劑量給藥組的MCF-7細胞黏附能力顯著下降(P<0.01),且作用呈劑量依賴性,提示芒柄花素具有抑制MCF-7細胞黏附的作用。見表2。
表2 芒柄花素對人乳腺癌MCF-7細胞黏附能力的影響(n=3)
細胞侵襲實驗的結果表明,不同濃度的芒柄花素處理MCF-7細胞48 h后,各組的侵襲率分別為:陽性對照組21.250 %±0.007 %,芒柄花素低劑量組47.458 %±0.006 %,中劑量組35.156 %±0.017 %,高劑量組14.881 %±0.001 %,細胞侵襲率隨芒柄花素給藥濃度的上升而下降(P<0.01),且作用呈劑量依賴性,提示芒柄花素有抑制MCF-7細胞侵襲的作用。見圖2。
圖2 芒柄花素對MCF-7細胞遷移能力的影響(10×10)
Western Blot結果表明,與對照組相比,隨著芒柄花素給藥劑量的增加,E-cadherin蛋白的表達量顯著上升,TGF-β1、vimentin、MMP-2、MMP-9、p-p38、p-ERK蛋白表達量下降,表明芒柄花素可上調(diào)E-cadherin蛋白表達,下調(diào)vimentin蛋白及TGF-β信號通路的TGF-β1、MMP-2、MMP-9表達和MAPK信號通路的p-ERK1/2、p-p38的表達水平,提示芒柄花素可能通過影響EMT相關蛋白的表達抑制MCF-7細胞的侵襲、遷移和黏附能力。見圖3。
圖3 芒柄花素對MCF-7細胞TGF-β1、E-cadherin、vimentin、MMP-2、MMP-9、ERK1/2、p-ERK1/2、P38、p-p38蛋白表達的影響
E-cadherin是鈣黏素家族中一個重要的細胞黏附因子,正常情況下E-cadherin的細胞質(zhì)區(qū)結構域與一些鏈蛋白結合,這些鏈蛋白可連E-cadherin和肌動蛋白的骨架,當這些鏈蛋白發(fā)生突變或缺失的時候,就會導致其黏附性下降,進而促進腫瘤細胞的轉(zhuǎn)移和侵襲,因此E-cadherin被認為是一種“侵襲抑制因子”[7]。Vimentin是細胞間絲蛋白家族成員,能構成細胞骨架,還被認為是EMT過程中的重要組成部分,vimentin表達的上調(diào)也與腫瘤的遷移、侵襲和轉(zhuǎn)移關系密切[8]。TGF-β是一種與惡性腫瘤相關的細胞因子,在腫瘤發(fā)生的早期TGF-β能誘導腫瘤細胞發(fā)生凋亡,但在晚期階段能促進EMT進程,促進腫瘤遷移、黏附和侵襲[9]。本研究結果顯示,隨著芒柄花素給藥劑量的上升,E-cadherin的表達升高,vimentin、TGF-β的表達降低,提示芒柄花素對人乳腺癌MCF-7的轉(zhuǎn)移和侵襲有抑制作用。
癌細胞轉(zhuǎn)移過程中的一個重要步驟是通過蛋白酶,如MMP對細胞外基質(zhì)(ECM)的降解。MMP是一個含鋅內(nèi)肽酶家族,其中MMP-2和MMP-9在侵襲性乳腺癌中高表達,并與臨床預后較差有關,抑制MMP-2和MMP-9的表達是預防腫瘤轉(zhuǎn)移的關鍵步驟[10]。本研究結果表明,芒柄花素可呈劑量依賴性降低MMP-2和MMP-9蛋白的表達,提示芒柄花素可通過降低MMP-2和MMP-9的表達來抑制MCF-7細胞的侵襲轉(zhuǎn)移。
MAPK通路是腫瘤轉(zhuǎn)移、侵襲信號轉(zhuǎn)導途徑中研究最多的激酶通路,其中p38通路、ERK通路是兩條重要的通路[11-12],且MAPK通路中內(nèi)源性p38的活性與乳腺癌細胞的轉(zhuǎn)移和侵襲密切相關。ERK1/2是腫瘤形成的一個重要蛋白,p-ERK1/2參與腫瘤細胞的轉(zhuǎn)移和侵襲[13-14]。p-ERK1/2異常活化與乳腺癌轉(zhuǎn)移和侵襲有關,其可能通過促進血管生成及降解基底膜發(fā)揮促進乳腺癌進展的作用。本研究結果顯示,芒柄花素可通過抑制MAPK信號通路的p-ERK1/2、p-p38的表達,協(xié)同抑制腫瘤的遷移、黏附和侵襲。
綜上,芒柄花素可通過抑制EMT過程及TGF-β通路和MAPK通路中相關蛋白的表達來抑制人乳腺癌MCF-7細胞的遷移、侵襲過程,但其作用機制尚不清晰,仍需進一步的深入研究。