高孝,高潔,劉曉宇,王中選,劉慶濤,桑亞新*
(1.河北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,河北 保定 071000;2.安徽工程大學(xué)生物與食品工程學(xué)院,安徽 蕪湖 241000)
氨基甲酸乙酯(ethyl carbamate,EC)是一種廣泛存在于發(fā)酵食品和酒精飲料[1-3]中屬于2A類的致癌物質(zhì)[4],并且在食品的發(fā)酵及貯藏過程中均可由其前體物質(zhì)所產(chǎn)生的一種有害物質(zhì)[5-6]。目前,人們常常通過優(yōu)化食品的發(fā)酵工藝[7-8]、對(duì)釀酒酵母進(jìn)行基因改造[9-11]以及微生物酶法(包括脲酶[12-14]、氨基甲酸乙酯水解酶[15-17])實(shí)現(xiàn)對(duì)氨基甲酸乙酯的控制,由于微生物酶法可直接作用于底物,對(duì)底物的降解效率高并且不會(huì)對(duì)環(huán)境造成影響,從而使其在降解EC方面具有很好的優(yōu)勢(shì)[18-19]。脲酶可以通過水解EC的前體物質(zhì)尿素從而實(shí)現(xiàn)對(duì)終產(chǎn)物EC含量的控制[20],但是EC一旦生成將很難在食品中消除[21],而氨基甲酸乙酯水解酶(urethanase,UH)可以直接作用于EC使其水解為無害的物質(zhì),因此其在實(shí)際的應(yīng)用過程中具有良好的前景[22]。
2006 年,Akutsu-Shigeno等[21]從馬紅球菌(Rhod-ococcus equistrain TB-60)中發(fā)現(xiàn)了可以降解EC的蛋白質(zhì),并克隆了該蛋白的基因序列(GenBank:DD320008.1),成功實(shí)現(xiàn)了其在E.coli中的異源表達(dá)。卜攀攀等[23]在2013年從小鼠的胃部獲得了一株具有UH活性的肺炎克雷伯氏菌(Klebsiella pneumoniae),驗(yàn)證該菌所產(chǎn)的EC水解酶對(duì)于氯化鈉具有較好的耐受性。隨后李京京等[24]在2014年從小鼠腸道篩選得到一株賴氨酸芽孢桿菌,證明其具有對(duì)EC進(jìn)行降解的功能,并對(duì)所產(chǎn)的EC水解酶進(jìn)行分離純化,通過N端測(cè)序獲得了該EC水解酶的基因序列(GanBank:KU353448.1),隨后在大腸桿菌及枯草芽孢桿菌中均實(shí)現(xiàn)了該酶的活性表達(dá),但該酶的耐酸性以及耐乙醇性較差。2019年,Masakik等[25]在Candida parapsilosis中獲得了具有編碼EC水解酶的基因序列(GanBank:LC511748.1),并實(shí)現(xiàn)了該基因在釀酒酵母中的表達(dá),且該酶對(duì)乙醇具有一定耐受性。
本研究根據(jù)來源于長(zhǎng)孢洛德酵母菌屬的UH蛋白序列,并依據(jù)大腸桿菌系統(tǒng)的密碼子偏好性來合成該UH蛋白的目的基因,轉(zhuǎn)化到E.coli BL21(DE3)中進(jìn)行異源表達(dá),將得到的粗酶液進(jìn)行細(xì)胞破碎后經(jīng)鎳柱親和層析純化,研究重組酶的酶學(xué)性質(zhì)[26],以期為在實(shí)際應(yīng)用中降解氨基甲酸乙酯提供理論依據(jù)。
1.1.1 菌株與質(zhì)粒
E.coli BL21(DE3)(過表達(dá)目的基因的宿主菌)、誘導(dǎo)型表達(dá)質(zhì)粒pET-30a(+):由河北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院微生物實(shí)驗(yàn)室保存;含有氨基甲酸乙酯水解酶基因的E.coli DH5α:金唯智生物科技(蘇州)有限公司。
1.1.2 試劑
質(zhì)粒小提試劑盒:全式金生物技術(shù)(北京)有限公司;蛋白胨、酵母粉:英國(guó)Oxiod公司;氨基甲酸甲酯、氨基甲酸乙酯、丁基氨基甲酸酯、乙酰胺、丁酰胺、丙烯酰胺、甲基丙烯酰胺、煙酰胺:上海麥克林生化科技有限公司。以上化學(xué)試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。
SCIENTZ-IID型超聲波細(xì)胞粉碎機(jī):寧波新芝生物科技股份有限公司;Thermo Cel I恒溫金屬浴:杭州博日科技股份有限公司;BG-Power600型電泳儀:上海貝晶生物技術(shù)有限公司;1500酶標(biāo)儀:賽默飛爾科技公司;TGL-16M臺(tái)式高速冷凍離心機(jī):湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室儀器開發(fā)有限公司;Tanon-4600SF凝膠成像系統(tǒng):北京原平皓生物科技有限公司;DK-8D電熱恒溫水槽:上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司。
1.3.1 表達(dá)載體的構(gòu)建
參照NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中來源于Lodderomyces elongisporus的UH的氨基酸序列(XP_001524600.1),在序列的5’端和3’端分別添加限制性內(nèi)切酶NdeⅠ和XhoⅠ的酶切位點(diǎn),在不改變氨基酸序列的前提下根據(jù)大腸桿菌密碼子偏好性對(duì)序列進(jìn)行優(yōu)化后合成目的基因,隨后連接至pET-30a(+)載體上,命名為pET-30a(+)-UH,并轉(zhuǎn)化至克隆菌株E.coli DH5α中。
1.3.2 重組大腸桿菌的誘導(dǎo)表達(dá)
參照質(zhì)粒小提試劑盒提取克隆菌株中的表達(dá)載體,將其轉(zhuǎn)化至E.coli BL21感受態(tài)細(xì)胞中,隨后涂布于含50 μg/mL卡那霉素的LB固體平板37℃過夜培養(yǎng)后,挑取重組菌接入LB液體培養(yǎng)基中過夜活化后,以1%的接種量將菌液接種至LB液體培養(yǎng)基中37℃培養(yǎng),至OD600值約為0.6~0.8時(shí),加入終濃度為0.1mmol/L的異丙基-β-D-硫代半乳糖苷溶液,在30℃條件下繼續(xù)誘導(dǎo)培養(yǎng)。
1.3.3 氨基甲酸乙酯水解酶的分離純化
將表達(dá)后的菌液以12 000 r/min離心10 min后收集發(fā)酵誘導(dǎo)的細(xì)胞,用磷酸鹽緩沖液洗滌菌體后放于冰水浴上超聲破碎,將破碎液于4℃、12 000 r/min離心30 min,收集上清液即為所需的粗酶液。使用鎳柱親和層析法純化重組氨基甲酸乙酯水解酶,使用截留分子量為3.3 kDa的透析袋透析,隨后經(jīng)過截留分子量為10 kDa的超濾離心管離心后進(jìn)行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰氨凝膠電泳(sodium dodecyl sulphate polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE) 檢測(cè)分析,以確定洗脫蛋白是否為目的蛋白及其純化程度。
1.3.4 重組氨基甲酸乙酯水解酶酶活的測(cè)定
根據(jù)Berthelot反應(yīng)顯色法,在波長(zhǎng)625 nm下測(cè)定吸光值計(jì)算酶活。在0.2 mL含200 mmol/L氨基甲酸乙酯的磷酸鹽緩沖液(對(duì)照組為磷酸鹽緩沖液)中加入0.2 mL經(jīng)過適當(dāng)稀釋的酶液,在37℃恒溫水浴箱中反應(yīng)20 min后,立即加入0.2 mL終止劑終止反應(yīng),混勻后依次加入0.2 mL顯色劑Ⅰ、0.2 mL顯色劑Ⅱ,搖勻,37℃水浴繼續(xù)保持10 min。酶活定義:在37℃、pH7.4條件下每分鐘分解底物EC產(chǎn)生1 μmol NH4+所需酶量為1個(gè)酶活力單位。
1.3.5 氨基甲酸乙酯水解酶酶學(xué)性質(zhì)分析
1.3.5.1 最適反應(yīng)溫度和溫度穩(wěn)定性
將純化后的酶液與底物分別在 20、25、30、37、40、45、50、55、60℃條件下測(cè)定酶活力,以測(cè)得的最高活力為100%,計(jì)算出其余溫度下的相對(duì)酶活,確定該酶的最適反應(yīng)溫度。將純化后的酶液分別于20、30、37、40、45、50℃條件下恒溫放置1 h后測(cè)定殘余酶活,以反應(yīng)所測(cè)的最高酶活力為100%,探討酶的熱穩(wěn)定性。
1.3.5.2 最適反應(yīng)pH值及pH值穩(wěn)定性
將等量的純酶液置于不同 pH 值(4、5、6、7、8、9)的緩沖液中,于37℃反應(yīng)測(cè)定酶活力,考察該酶在不同pH值條件下的酶活力,確定該酶的最適pH值。將等量的酶液分別與不同 pH 值(4、5、6、7、8、9)的緩沖液在4℃放置4 h后,測(cè)定殘余的酶活力,考察酶在不同pH值下的穩(wěn)定性。
1.3.5.3 酶的乙醇耐受性以及NaCl耐受性
將純化的酶液加入含底物不同體積分?jǐn)?shù)(0%~30%)的乙醇溶液中,于37℃反應(yīng)后測(cè)定酶的活力,觀察不同體積分?jǐn)?shù)乙醇溶液對(duì)酶活力的影響。將酶液加入含底物不同質(zhì)量濃度(0%~20%)的NaCl溶液中,反應(yīng)結(jié)束后測(cè)定酶的殘余酶活力,觀察酶對(duì)NaCl的耐受性。
1.3.5.4 底物特異性
在最適的條件下,將酶液分別與不同底物(氨基甲酸甲酯、氨基甲酸乙酯、丁基氨基甲酸酯、乙酰胺、丁酰胺、丙烯酰胺、甲基丙烯酰胺、煙酰胺)反應(yīng)測(cè)定酶活力,以酶對(duì)氨基甲酸乙酯的酶活為100%,換算得到酶對(duì)其他底物的降解活性。
1.3.5.5 金屬離子與化學(xué)試劑對(duì)酶活力的影響
將酶液與終濃度為1 mmol/L的不同金屬離子(Cu2+、Mg2+、Ba2+、Mn2+、Zn2+、Ca2+、Fe2+、Co2+、Fe3+) 以及終濃度為0.1 mmol/L(0.1%)的化學(xué)試劑混合,于37℃保溫5 min后加入底物測(cè)定酶的殘余酶活力,研究金屬離子與化學(xué)試劑對(duì)酶活力的影響。
1.3.5.6 酶的反應(yīng)動(dòng)力學(xué)性質(zhì)
將純化后的酶液與不同終濃度(5mmol/L~50mmol/L)的氨基甲酸乙酯底物作用,在37℃磷酸鹽緩沖液中測(cè)定酶反應(yīng)的初速度,用Lineweaver-Burk雙倒數(shù)作圖法求出酶對(duì)底物的Km值和Vmax值。
本文采用pET-30a(+)質(zhì)粒作為克隆及表達(dá)載體,克隆菌株為E.coli strain DH5α,因此挑取單菌落進(jìn)行過夜培養(yǎng)后,提取質(zhì)粒后用限制性內(nèi)切酶NdeⅠ和XhoⅠ進(jìn)行酶切處理,對(duì)目的基因的大小進(jìn)行驗(yàn)證。取雙酶切之后的反應(yīng)產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果如圖1所示。
圖1 重組質(zhì)粒雙酶切產(chǎn)物電泳圖Fig.1 The electropherogram of recombinant plasmid double digestion product
如圖1所示,1號(hào)泳道代表未經(jīng)雙酶切處理的重組質(zhì)粒,2號(hào)泳道代表經(jīng)過內(nèi)切酶NdeⅠ和XhoⅠ處理的重組質(zhì)粒,因此顯示共有兩條帶,其中第一條為線性pET-30a(+)質(zhì)粒,大小為5 231 bp,另外一條為目的基因,大小為1 703 bp,表明目的基因與載體質(zhì)粒連接成功,可以進(jìn)行后續(xù)的轉(zhuǎn)化表達(dá)。
對(duì)重組菌誘導(dǎo)后的表達(dá)蛋白進(jìn)行超聲破碎,經(jīng)SDS-PAGE進(jìn)行蛋白條帶檢測(cè),結(jié)果見圖2。
圖2 重組氨基甲酸乙酯水解酶分離純化過程SDS-PAGE分析Fig.2 SDS-PAGE analysis in the purification process of recombinant urethanase
從圖2可以看出,在70 kDa附近有明顯的目的條帶,粗酶液經(jīng)親和層析柱純化后得到目的蛋白條帶,粗酶液的比活力為4.52 U/mg,純化后的酶比活力達(dá)到9.86 U/mg,是純化前的2.18倍。
不同溫度和pH值下的重組氨基甲酸乙酯水解酶酶活力結(jié)果如圖3所示。
圖3 溫度和pH值對(duì)重組氨基甲酸乙酯水解酶的影響Fig.3 Effects of temperature and pH on the activity of recombinant urethanase
由圖3A可知,重組水解酶的酶活隨著溫度的逐漸升高呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),重組酶在20℃~40℃范圍內(nèi)相對(duì)活性在50%以上,最適反應(yīng)溫度為30℃;由圖3B可知,重組酶在40℃以下處理1 h后,仍能保持70%以上的酶活力,高于40℃后,酶活力幾乎完全喪失,結(jié)果表明,重組酶在20℃~40℃的情況下具有良好的反應(yīng)活性以及熱穩(wěn)定性。
由圖3C可知,在pH4~9條件下,隨著pH值的升高,酶活力呈先上升后下降的趨勢(shì)。在pH7時(shí),酶活力最高,為UH的最適反應(yīng)pH值,最適pH值范圍為6~8,相對(duì)活力在50%以上。將該酶分別在pH值為4~9條件下,4℃放置4 h后測(cè)定酶活力,如圖3D所示,當(dāng)酶在pH值為6~8時(shí),酶活力基本穩(wěn)定,能維持50%以上的酶活力,當(dāng)pH值低于6或大于8時(shí),酶活力迅速下降。該結(jié)果表明,重組酶在中性范圍內(nèi)具有較好的反應(yīng)活性以及穩(wěn)定性。
乙醇體積分?jǐn)?shù)和NaCl質(zhì)量濃度對(duì)氨基甲酸乙酯水解酶的影響見圖4。
圖4 乙醇體積分?jǐn)?shù)和NaCl質(zhì)量濃度對(duì)氨基甲酸乙酯水解酶的影響Fig.4 Effects of ethanol volume fraction and NaCl concentration on the activity of urethanase
由圖4A可知,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)為10%時(shí),UH的相對(duì)酶活在30%左右,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)大于20%時(shí),殘余酶活力不到原來的10%。由圖4B可知,當(dāng)NaCl質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2.5%時(shí),UH的酶活力只有初始酶活力的20%。結(jié)果表明,與已報(bào)道過的氨基甲酸乙酯水解酶[15-17]相比,UH對(duì)低質(zhì)量分?jǐn)?shù)的NaCl以及低體積分?jǐn)?shù)乙醇具有一定耐受性。
不同的金屬離子與化學(xué)試劑對(duì)氨基甲酸乙酯水解酶的酶活影響見圖5。
圖5 金屬離子和化學(xué)試劑對(duì)重組氨基甲酸乙酯水解酶酶活的影響Fig.5 Effects of metal ions and chemicals on the activity of recombinant urethanase
由圖5A可知,除了Mg2+外其它金屬離子對(duì)UH的酶活都有不同程度的抑制作用,其中Cu2+、Zn2+、Fe3+使酶活力降至原來的10%以下,其中Cu2+幾乎能完全抑制酶活。此結(jié)果與Patel等[27]研究得到的Cu2+可加快氧化自身半胱氨酸分子,從而使得二硫鍵或亞磺酸在分子內(nèi)或分子間形成,最終導(dǎo)致酶活力受到嚴(yán)重抑制結(jié)果一致。由圖5B可知,在不同種表面活性劑和抑制劑存在的情況下,酶活力依然在80%以上,且在表面活性劑吐溫-20、吐溫-80以及曲拉通X-100存在時(shí),酶活力均在95%以上,表明其對(duì)酶活力影響較小。
氨基甲酸乙酯水解酶的底物特異性分析結(jié)果如表1所示。
表1 氨基甲酸乙酯水解酶的底物特異性Table 1 Substrate specificity of urethanase%
由表1可知,將UH對(duì)氨基甲酸乙酯的降解活性設(shè)為100%,可以看出酶對(duì)氨基甲酸酯類化合物以及酰胺類化合物均具有降解活性,對(duì)一些L-氨基酸類物質(zhì)以及尿素?zé)o降解活性,與Kazuo等[24]研究氨基甲酸乙酯水解酶對(duì)于氨基酸和尿素?zé)o降解活性的結(jié)果相符,UH對(duì)于2A級(jí)的致癌物丙烯酰胺同樣具有較高的水解活性,說明在降解丙烯酰胺方面具有良好的應(yīng)用前景[28]。水解酶對(duì)于氨基甲酸甲酯、氨基甲酸丁酯的降解相對(duì)酶活分別為110.05%、7.02%,表明隨著底物碳原子數(shù)的增加,水解酶的水解能力逐漸降低[23]。
以氨基甲酸乙酯為底物,通過測(cè)定重組酶在不同底物濃度下的酶活,計(jì)算出初始反應(yīng)速率,根據(jù)Lineweaver-Burk雙倒數(shù)法作圖后計(jì)算得到UH的酶促反應(yīng)參數(shù)Km值為6.64mmol/L,Vmax值為8.24μmol/min。與來源于肺炎克雷伯氏菌[23]和變幻青霉[29]的氨基甲酸乙酯水解酶的Km分別為74 mmol/L和27.2 mmol/L相比,本研究中UH的Km值相對(duì)更低,表明該酶與底物的親和力更大。
根據(jù)大腸桿菌系統(tǒng)對(duì)密碼子的偏好性,將來源于Lodderomyces elongisporus菌屬的氨基甲酸乙酯水解酶的氨基酸序列進(jìn)行密碼子優(yōu)化后合成其目的基因,并轉(zhuǎn)化至E.coli BL21感受態(tài)細(xì)胞中進(jìn)行異源表達(dá)后得到分子量大小約為70 kDa左右的重組蛋白,將蛋白粗酶液進(jìn)行超聲破碎后經(jīng)鎳柱進(jìn)行純化后,水解酶的比活力達(dá)到了9.86 U/mg,是純化前的2.18倍。最適反應(yīng)溫度為30℃,在最適反應(yīng)溫度及以下,酶的穩(wěn)定性較好;最適pH值為7.0,在pH6.0~8.0時(shí)酶的活性以及穩(wěn)定性較好。UH對(duì)低質(zhì)量分?jǐn)?shù)的NaCl溶液以及低體積分?jǐn)?shù)的乙醇溶液具有一定耐受性,并且在乙醇體積分?jǐn)?shù)低于12%時(shí),酶活力可以保持在50%以上。不同種類的金屬離子對(duì)酶活均有不同程度的抑制作用,尤其是Cu2+、Fe3+存在的情況下,酶活力幾乎喪失。酶對(duì)氨基甲酸酯類化合物、酰胺類化合物有較強(qiáng)的降解能力,但是對(duì)于一些L-氨基酸類物質(zhì)以及尿素沒有活性,表明其屬于一種酰胺類的酶。以氨基甲酸乙酯作為反應(yīng)底物時(shí),氨基甲酸乙酯水解酶的酶促反應(yīng)參數(shù)Km值為 6.64 mmol/L,Vmax值為 8.24 μmol/min。本研究通過對(duì)蛋白的目的基因進(jìn)行合成后表達(dá),驗(yàn)證其具有氨基甲酸乙酯水解酶的活性,使UH的來源得到了豐富,同時(shí)為后續(xù)實(shí)際應(yīng)用提供了很好的參考價(jià)值。