邱錦鳴,劉 哲,吳佳佳,薛陳杰,劉雪梅
(淮陰工學(xué)院化學(xué)工程學(xué)院,江蘇 淮安 223003)
貧營養(yǎng)微生物又稱為寡營養(yǎng)微生物,能夠在土壤、湖泊河水、地下水、沙表土等有機(jī)質(zhì)匱乏的環(huán)境中生長[1]。將貧營養(yǎng)微生物從環(huán)境中分離提純出來,用于自來水工藝中低濃度溶解性污染物的去除,這是近年來在給水處理領(lǐng)域形成的一個新思路[2,3]。
研究表明,自來水深度處理工藝中存在自然條件下形成的菌落,其對水質(zhì)提升具有積極作用,但自然形成菌落世代周期長,凈水效率低[4]。通過人工篩選的優(yōu)勢菌群投放可顯著縮短生物掛膜過程,并有針對性地對靶向污染指標(biāo)實(shí)施高效凈化。當(dāng)前中國的集中式飲用水水源地微污染形勢十分嚴(yán)峻,自來水廠對溶解性污染物去除率亟待提高,積極研發(fā)貧營養(yǎng)凈水微生物制劑,將實(shí)驗(yàn)室成果盡快產(chǎn)業(yè)化具有重要而迫切的現(xiàn)實(shí)意義[5,6]。
微囊化技術(shù)可以通過一定的理化手段將益生菌包裹在微小且封閉的膠囊中,不僅能在加工或貯藏過程中提高菌株的有效活菌數(shù),還能在不利環(huán)境中對菌株進(jìn)行保護(hù),提高其抗性[7,8]。由于Ca2+-藻酸鹽凝膠的安全和無毒性質(zhì),是最常用的微囊化壁材[9]。本研究利用淮陰工學(xué)院凈水微生物制劑研發(fā)課題組前期篩選出的兼性貧營養(yǎng)凈水碳源微生物菌株,將多菌株復(fù)配,采用乳化法制備微生物制劑,并研究其在微污染水體中的凈化效果。
復(fù)配兼性貧營養(yǎng)菌株包括變形桿菌(Proteus)、短小芽孢桿菌(Bacillus pumilus)和蠟樣芽孢桿菌(Bacillus cereus),由淮陰工學(xué)院凈水微生物制劑研發(fā)課題組優(yōu)選并經(jīng)16S RNA 進(jìn)行基因測序鑒定;MRS 培養(yǎng)基,宜興市永信生物有限公司;其他試劑均為分析純,由國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司提供。
立式壓力蒸汽滅菌器(LDZX-75KBS 型),上海申安醫(yī)療器械廠;高速冷凍大容量離心機(jī)(ST16R型),賽默飛世爾科技(中國)有限公司;超凈工作臺(SW-CJ-1D 型),蘇州博萊爾凈化設(shè)備有限公司;TOC 測定儀(M5310C 型),蘇伊士水務(wù)技術(shù)(上海)有限公司;紫外分光光度計(jì)(752 型),上海美析儀器有限公司;激光粒度分析儀(MS-2000 型),英國馬爾文儀器有限公司;掃描電鏡(Hitachi 型),日立科學(xué)儀器有限公司。
1.2.1 菌懸液的配制 將保藏在冰箱中的菌種在固體培養(yǎng)基上劃線,于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12 h,挑選單菌落接種于液體培養(yǎng)基中,在振蕩培養(yǎng)箱中37 ℃培養(yǎng)24 h。4 ℃、4 000 r/min 離心15 min 分離菌懸液。菌泥用0.9%生理鹽水懸浮后,4 ℃、4 000 r/min離心15 min,洗滌2 次,用生理鹽水懸浮細(xì)胞,將濃縮菌液濃度調(diào)節(jié)至1010CFU/mL,4 ℃冰箱保存。
1.2.2 乳化法制備微膠囊 采用外源乳化法,將菌懸液、滅菌的海藻酸鈉溶液(30 mg/mL)和含有(2 μL/mL)Tween-80 的植物油按照2∶3∶25(V/V)的比例混合,按200 r/min 對混合液進(jìn)行攪拌,待乳化完全后,加入100 mL 滅菌CaCl2溶液(20 mg/mL),繼續(xù)攪拌20 min。350 r/min 離心5 min,4 ℃條件下收集微膠囊,用滅菌生理鹽水清洗2 次除去殘余的CaCl2。將微膠囊放入-20 ℃冰箱中預(yù)凍2 h 后,置于-40 ℃,5.9 Pa 真空冷凍干燥機(jī)中冷凍干燥24 h,得到微膠囊凍干粉。
1.2.3 微膠囊理化性質(zhì)表征
1)外觀形貌測定。將樣品均勻分散在無水乙醇介質(zhì)中,取少量分散液滴在超薄碳膜上,待乙醇揮發(fā)后,在200 kV 電子加速電壓下進(jìn)行測試。
2)粒徑分析。以去離子水為分散介質(zhì),對微膠囊的粒徑大小及其分布進(jìn)行測試。
3)微膠囊耐酸堿性的測定。錐形瓶中加入100 mL 去離子水,通過加鹽酸和氫氧化鈉調(diào)節(jié)pH從2 到12,分別加入原菌懸液和微膠囊,控制原菌懸液中的菌量,使其與微膠囊中含菌量相同。處理2 h后,測其活菌數(shù)并比較其耐酸堿性能力。
4)微膠囊定儲存穩(wěn)定性試驗(yàn)。根據(jù)經(jīng)典恒溫法的指數(shù)理論,將未微膠囊化的菌種和微膠囊化的菌種置于恒溫57 ℃、相對濕度60%~65%條件下儲存7 d,相當(dāng)于室溫下儲存1 年,測其活菌數(shù)的變化。
5)凈水試驗(yàn)。取淮陰工學(xué)院湖水,用脫脂棉過濾,除去湖水中的懸浮物,得到有機(jī)質(zhì)均一的水作為試驗(yàn)用水,每個錐形瓶中平均分裝200 mL。將原菌懸液2 mL 接種到裝有198 mL 湖水的錐形瓶中,投菌量保持在108~109CFU/mL,同時(shí)稱取1 g 的凍干粉投入到裝有200 mL 湖水的錐形瓶中,于28 ℃條件下靜置培養(yǎng)7 d,測定總有機(jī)碳(TOC)的變化。
微膠囊產(chǎn)品為淡黃色粉末,分散性、流動性較好,易溶于水。由圖1 可知,微膠囊大體呈圓球狀,囊壁較平滑,有凹陷。從破碎的微膠囊中看到內(nèi)部包埋的大量細(xì)菌。造成囊壁凹陷的原因可能是由于分子之間的結(jié)合力不同,導(dǎo)致囊膜薄厚程度呈現(xiàn)差異。不同厚度的囊壁抵抗變形能力不同,從而導(dǎo)致在冷凍干燥過程中,薄壁處出現(xiàn)凹槽,從而造成微膠囊表面凹凸不平。
圖1 不同放大倍數(shù)下微膠囊掃描電子顯微鏡(SEM)觀測
粒徑相關(guān)分析測定結(jié)果(圖2)表明,微膠囊的比表面積(SSA)為326 cm2/g,比表面積較小,表明包埋效果較好。微膠囊的粒徑大小為2.512~954.993 μm;d(0.5)(中位徑)為134.272 μm,表明微膠囊中大于和小于134.272 μm 的顆粒各占50%;顆粒分布主要集中在104.713~239.883 μm。微膠囊粒徑分布較寬的原因可能是乳化過程中,攪拌器周邊不同空間范圍的微粒受到的作用力不同所致[10]。
圖2 微膠囊粒徑分布統(tǒng)計(jì)
分別在不同pH 的體系中投加菌懸液與微膠囊,保持初始含菌量相同(活菌濃度約為2.2×109CFU/g),2 h 后測定各個體系中的活菌數(shù)。由圖3 可知,在菌懸液體系中,中性條件下(pH 6~8)活菌數(shù)最高;隨著酸性或堿性的增強(qiáng),活菌數(shù)均顯著下降。微膠囊的活菌數(shù)受pH 變化影響較小,活菌數(shù)始終高于菌懸液中的最高活菌數(shù)。由此可知,微膠囊化明顯增強(qiáng)了菌株的耐酸堿性。
將微膠囊化的菌株和未微膠囊化的菌種在恒溫57 ℃、相對濕度60%~65%條件下儲存7 d,其活菌數(shù)測定結(jié)果如圖4 所示。在恒溫57 ℃條件下儲存7 d后,未微膠囊化的活菌數(shù)降低較快,當(dāng)儲存到5 d 時(shí)已基本檢測不到活菌數(shù)。微膠囊化的活菌數(shù)降低緩慢,儲存7 d 后活菌數(shù)為8.6×108CFU/g,相當(dāng)于在室溫條件下儲存1 年的活菌數(shù),僅降低了1 個數(shù)量級??梢?,未微膠囊化的細(xì)菌儲存穩(wěn)定性較差,不利于細(xì)菌的保存;將細(xì)菌微膠囊化,可以有效提高細(xì)菌在常溫下的存活率。
圖4 微膠囊的儲存穩(wěn)定性
從圖5 可以看出,菌懸液對水體的TOC 降解速度先快后慢,后期基本趨于緩和,7 d 時(shí)TOC 去除率達(dá)48.82%;微膠囊化的菌種對水體的TOC 降解速度前期比較緩和,中期比較迅速,后期仍然保持較高的去除效率,7 d 時(shí)TOC 去除率達(dá)61.21%。分析原因可能是由于微膠囊化的細(xì)菌前期處于休眠狀態(tài),需要時(shí)間來恢復(fù)活性;待活性恢復(fù)后,逐步向水體釋放,對水體中的TOC 進(jìn)行降解。由于微膠囊化后,菌株具有緩釋作用,因而能夠持續(xù)地發(fā)揮凈水作用,并且能夠耐受營養(yǎng)元素逐步降低的外部環(huán)境,而未微膠囊化的細(xì)菌可能隨著可利用營養(yǎng)物質(zhì)含量的降低而整體代謝活性降低。因此,微膠囊化有利于細(xì)菌在各種復(fù)雜的條件下保持持續(xù)的高效凈水效率。
圖5 TOC 濃度隨時(shí)間的變化
本試驗(yàn)采用外源乳化法制備了貧營養(yǎng)復(fù)合菌微膠囊制劑。結(jié)果表明,該微生物制劑粒徑分布合理,耐酸堿性及穩(wěn)定性較未膠囊化的菌株明顯提高,可在較低的濃度水平下,實(shí)現(xiàn)對水體TOC 的高效降解,具有良好的應(yīng)用前景。