胡勁召,張璇,王永強(qiáng),徐佳敏,盧洪斌,葉長(zhǎng)兵,劉曉暉,陳中兵,盧少勇*
1.海南熱帶海洋學(xué)院
2.湖泊水污染治理與生態(tài)修復(fù)技術(shù)國(guó)家工程實(shí)驗(yàn)室, 中國(guó)環(huán)境科學(xué)研究院
3.玉溪師范學(xué)院化學(xué)生物與環(huán)境學(xué)院
4.捷克生命科學(xué)大學(xué)環(huán)境科學(xué)學(xué)院
磺胺類(lèi)抗生素(sulfonamides,SAs)是我國(guó)生產(chǎn)、銷(xiāo)售和使用量最大的抗生素之一,具有抗菌譜廣、穩(wěn)定性高、親水性較強(qiáng)的特性,能干擾和抑制細(xì)菌的生長(zhǎng)與繁殖[1-2]?;前奉?lèi)抗生素在自然水體表層水中檢出濃度在ng/L~μg/L量級(jí),在污泥、沉積物及土壤中檢出濃度在μg/kg~mg/kg量級(jí)[3]。水環(huán)境中的SAs主要來(lái)源于畜禽養(yǎng)殖廢水、生活污水和污水處理廠出水。阮?lèi)傡车萚4]在養(yǎng)殖水體沉積物中發(fā)現(xiàn)磺胺甲噻二唑、磺胺二甲氧嘧啶的檢出率較高,濃度為1.5~30.1 μg/kg。Samaraweera等[5]對(duì)位于科倫坡和??ǘ磐叩?個(gè)市政污水處理廠連續(xù)7 d和24 h進(jìn)出水樣品中17種常見(jiàn)抗生素進(jìn)行監(jiān)測(cè),發(fā)現(xiàn)所有出水樣品中均可檢測(cè)到磺胺甲惡唑(sulfamethoxazole,SMX)、甲氧芐氨嘧啶(trimethoprim)、諾氟沙星(norfloxacin)、氧氟沙星(ofloxacin)和環(huán)丙沙星(ciprofloxacin),在污水處理過(guò)程中抗生素僅被部分去除。由于抗生素不斷進(jìn)入水環(huán)境,對(duì)水生動(dòng)植物和人類(lèi)健康構(gòu)成極大威脅[6-7]。
人工濕地(constructed wetlands,CWs)常被用于去除水中常規(guī)污染物,同時(shí)作為二級(jí)污水處理系統(tǒng)對(duì)包括抗生素在內(nèi)的新污染物可以起到良好的凈化效果[8-10]。人工濕地內(nèi)植物的吸收和富集與微生物的生物降解對(duì)污染物的去除起到重要作用。人工濕地植物作為濕地生物過(guò)程中的主體,是濕地生態(tài)系統(tǒng)的重要組成部分,在濕地運(yùn)行中起著非常重要的作用[11]。Liang等[12]研究發(fā)現(xiàn),水生植物蘆葦、香蒲、香根草和美人蕉對(duì)人工濕地中的SMX去除率約為73%。楊月琴等[13]研究不同水生植物對(duì)布洛芬和羅紅霉素的去除效果,發(fā)現(xiàn)美人蕉對(duì)布洛芬的去除率最高(69.74%),花葉蘆竹對(duì)羅紅霉素的去除率最高(94.06%)。植物通過(guò)光合作用將氧氣運(yùn)輸?shù)街参锔担瑸槲⑸锾峁┝己玫纳姝h(huán)境,促進(jìn)微生物對(duì)水體中污染物的降解。然而,人工濕地植物在處理含抗生素廢水的過(guò)程中會(huì)受到抗生素的長(zhǎng)期脅迫,由于抗生素濃度和植物本身的耐受程度不同,植物的響應(yīng)機(jī)制也存在差異[7]。Liu等[14]研究了不同濃度鹽酸環(huán)丙沙星、鹽酸土霉素和磺胺甲嘧啶對(duì)蘆葦?shù)臐撛谟绊懀l(fā)現(xiàn)抗生素濃度大于10 g/L時(shí)對(duì)根活性和葉綠素有毒性作用,而濃度為0.1~10 g/L時(shí)對(duì)植物根系活力和葉片葉綠素有促進(jìn)作用。Liu等[15]研究發(fā)現(xiàn),模擬廢水中紅霉素濃度為0.06 mg/L時(shí),羊角月牙藻(Pseudokirchneriella subcapitata)的生物量開(kāi)始下降。此外,抗生素可能通過(guò)影響根際微生物群落的結(jié)構(gòu)和功能間接影響植物發(fā)育。有研究表明,抗生素脅迫可以減少微生物多樣性,抑制與硫和氮循環(huán)相關(guān)的功能細(xì)菌群[16]。Zhang等[17]研究發(fā)現(xiàn),四環(huán)素濃度為1 μg/L時(shí),可以顯著改變序批式活性污泥反應(yīng)器(SBR)中微生物群落結(jié)構(gòu),Shannon-Weiner指數(shù)和Simpson指數(shù)達(dá)到最大值。Button等[18]研究發(fā)現(xiàn),SMX進(jìn)入濕地系統(tǒng)后微生物群落優(yōu)勢(shì)菌群相對(duì)豐度減少,微生物活性受到了抑制。
目前針對(duì)高濃度抗生素脅迫下植物與根際微生物聯(lián)合修復(fù)中植物理化指標(biāo)及根際微生物群落的響應(yīng)特征研究仍然不足。筆者以人工濕地中分布較廣泛的5種挺水植物為研究對(duì)象,探究濕地典型挺水植物與根際微生物聯(lián)合修復(fù)對(duì)不同濃度SMX的去除效果,選擇根系較發(fā)達(dá)的唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草,對(duì)其根系活力、活性氧與抗氧化系統(tǒng)在不同濃度SMX脅迫以及溫度變化下的響應(yīng)差異進(jìn)行評(píng)價(jià)和分析,同時(shí)探究根際微生物群落結(jié)構(gòu)組成與功能的變化,以期為植物與根際微生物聯(lián)合修復(fù)技術(shù)在水污染處理中的應(yīng)用提供理論依據(jù)。
供試水生植物唐菖蒲(A)、風(fēng)車(chē)草(B)、燈心草(C)、水蔥(D)和水芹(E),購(gòu)自江蘇宿遷飛達(dá)花卉園藝公司。選取SMX為目標(biāo)抗生素,其純度為98%,購(gòu)自上海百舜生物科技有限公司。Hoagland營(yíng)養(yǎng)液為格林凱爾公司生產(chǎn)。
用去離子水洗凈植物根系,將植物根部表面附著的沉積物去除,用1/5 Hoagland營(yíng)養(yǎng)液水培60 d至植物生長(zhǎng)穩(wěn)定。選取生理表型一致的植株作為試驗(yàn)對(duì)象,在營(yíng)養(yǎng)液中加入 0、1、10、30、50、100 mg/L不同濃度梯度的SMX進(jìn)行處理,以0 mg/L為對(duì)照,不同處理中水生植物的種植密度為16株/m2,設(shè)置3個(gè)平行,每5 d更換1次營(yíng)養(yǎng)液,運(yùn)行周期為60 d。試驗(yàn)于2019年在山東農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝實(shí)驗(yàn)站進(jìn)行,自然光照,培養(yǎng)溫度為20~25 ℃,濕度為60%~80%。試驗(yàn)的前30 d,對(duì)不同濃度SMX在5種植物與根際微生物聯(lián)合修復(fù)中的去除效果進(jìn)行測(cè)定與分析。依據(jù)SMX的去除效果,對(duì)2組去除效果較好的植物,采集其葉片及根部進(jìn)行植物活性氧、抗氧化系統(tǒng)的測(cè)定;并在人工模擬氣候室中,調(diào)節(jié)溫度分別為4、8、12、24 ℃,測(cè)定溫度脅迫下2種植物活性氧、抗氧化系統(tǒng)的變化;對(duì)2種植物在0 mg/L(CK)、1 mg/L(S1)、50 mg/L(S50)營(yíng)養(yǎng)液培養(yǎng)下的根際微生物進(jìn)行采集,進(jìn)行微生物群落多樣性分析。
1.3.1 色譜條件
使用液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜LC-30AD+LCMS-8060(Shimadzu,日本)測(cè)定抗生素濃度。色譜柱為InertSustainTM Bio-C18(2.1×100 mm,1.9 μm),流動(dòng)相A相為0.1%甲酸,B相為乙腈,流速為0.4 mL/min;柱溫為 40 ℃,進(jìn)樣量為 2 μL,洗脫方式為梯度洗脫。梯度洗脫程序:0~1.0 min,90% A相,10% B 相,流速 0.40 mL/min;1.0~8.0 min,5% A 相,95% B 相 , 流 速 0.40 mL/min;8.0~ 10.0 min,5%A 相,95% B 相,流速 0.40 mL/min;10.0~10.10 min,90% A相,10% B相,流速0.40 mL/min。
1.3.2 色譜條件
離子源為ESI,加熱模塊溫度為400 ℃,霧化氣流速為3.0 L/min;干燥氣流速為10.0 L/min,加熱氣流速為 10.0 L/min;掃描模式為多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(multiple-reaction monitoring,MRM),接口溫度為 300℃,駐留時(shí)間為17 ms;DL溫度為250 ℃。
1.3.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線與檢測(cè)限
抗生素檢測(cè)采用內(nèi)標(biāo)法定量,內(nèi)標(biāo)物質(zhì)為磺胺甲惡唑-d4(SMX-d4)。各抗生素的標(biāo)準(zhǔn)曲線為f(x)=383 987x+589 143,相關(guān)系數(shù)(R2)為0.996 8。檢出限為 0.03 μg/L,定量限為 0.10 μg/L,精密度為 4.12%,回收率為96.33%。樣品抗生素檢出限與定量限按照信噪比3倍與10倍設(shè)定,分別進(jìn)行了場(chǎng)地空白、方法空白和平行樣試驗(yàn),用于控制背景值影響及交叉影響。
1.4.1 根系活力的測(cè)定
根系活力采用TTC法[19]測(cè)定。稱(chēng)取混合根系樣品0.5 g 放入遮光處理的試管中,加入0.4% TTC溶液和磷酸緩沖液等量混合液10 mL,使根充分浸沒(méi),在37 ℃水浴鍋中保溫3 h后加入2 mL硫酸,對(duì)照為先加硫酸再加根系。將根取出,吸干水分后與3~4 mL乙酸乙酯一起磨碎,將紅色提取液移入試管中,并將殘?jiān)礈旄蓛?,使最終體積為10 mL,在485 nm下比色。
1.4.2 抗氧化系統(tǒng)的測(cè)定
稱(chēng)取0.5 g新鮮葉片,加入2 mL磷酸緩沖液(0.05 mol/L,pH為7.8),冰浴研磨,轉(zhuǎn)移至離心管中,再以2 mL的緩沖液清洗研缽,4 ℃下10 000 r/min離心20 min后,取上清液冷藏保存。依據(jù)湯葉濤等[20]的研究方法測(cè)定丙二醛(MDA)、過(guò)氧化氫(H2O2)和超氧陰離子(O2-)濃度。超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化物酶(POD)和過(guò)氧化氫酶(CAT)的活性測(cè)定與Liu等[21]的方法相同。
1.5.1 DNA提取
參考de Bulgarelli等[22]的方法,隨機(jī)取植物根部(5 g)浸沒(méi)于無(wú)菌PBS溶液中,180 r/min孵育10 min后取出,此過(guò)程重復(fù)3次,將3次洗滌液匯總后過(guò)0.22 μm濾膜,收集濾膜備測(cè)植物根部微生物菌群。備測(cè)濾膜置于-80 ℃超低溫冰箱,避光保存。
1.5.2 微生物多樣性檢測(cè)與分析
根據(jù) E.Z.N.A.? soil DNA kit (Omega Bio-tek,Norcross, GA, 美國(guó))說(shuō)明書(shū)進(jìn)行DNA 抽提,使用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA的提取質(zhì)量,使用NanoDrop 2000 UV-vis spectrophotometer (Thermo Scientific, Wilmington,美國(guó))測(cè)定DNA濃度和純度。利用高通量測(cè)序技術(shù)對(duì)系統(tǒng)內(nèi)的不同微生物聚集形態(tài)進(jìn)行分析,引物由上海生工生物工程股份有限公司制備,PCR 反應(yīng):預(yù)變性,95 ℃,3 min;變性,95 ℃,30 s;退火,56 ℃,30 s;延伸,72 ℃,40 s 變性至延伸步驟,重復(fù)35次。序列F:TCCTACGGGAG GCAGCAGT; 序 列R:GGACTACCAGGGTATCTA ATCCTGTT。在97%的相似水平下對(duì)所有序列進(jìn)行OTUs (operational taxonomic units)劃分并與RDP(Ribosomal Database Project)數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì),基于此進(jìn)行物種組成、Alpha多樣性及群落結(jié)構(gòu)分析。
所有數(shù)據(jù)均采用Excel 2016軟件進(jìn)行預(yù)處理,并用Origin 2017軟件進(jìn)行繪圖;采用Alpha多樣性分析評(píng)價(jià)微生物群落的豐富度和多樣性,利用PICRUSt功能預(yù)測(cè)軟件進(jìn)行微生物群落代謝功能預(yù)測(cè)。使用單因素方差法分析不同植物對(duì)相同濃度SMX的去除率以及同一植物在不同濃度SMX脅迫下生理指標(biāo)間的差異性,其中當(dāng)P<0.05時(shí)認(rèn)為具有顯著性差異。
5種植物水培30 d后對(duì)不同初始濃度的SMX(1~100 mg/L )的去除率如圖1所示。由圖1可見(jiàn),當(dāng)SMX濃度為1和10 mg/L 時(shí),對(duì)SMX去除率最高的是水芹(65.39%、52.97%),其次是風(fēng)車(chē)草(61.47%、48.56%)。SMX濃度為30~100 mg/L時(shí),對(duì)SMX去除率最高的為風(fēng)車(chē)草(35.87%~43.22%),其次是唐菖蒲(27.45%~35.21%)。值得注意的是,水蔥、水芹對(duì)SMX的去除率隨著時(shí)間的推移而顯著下降。SMX濃度較低時(shí),抗生素對(duì)植物的脅迫作用較弱,此時(shí)植物根部通過(guò)主動(dòng)吸收和物理吸附去除SMX,而高濃度SMX可能對(duì)這2種植物的根系產(chǎn)生較強(qiáng)影響。SMX的去除分為2個(gè)階段:前期大量SMX被吸附于植物根部;隨著抑制作用增強(qiáng),根系活力受到影響,無(wú)法吸收根表富集的SMX,使得SMX從根部重新釋放于水中。周品成等[23]研究發(fā)現(xiàn),隨著水培液中抗生素濃度的增加,高濃度(大于100 μg/L)的抗生素會(huì)抑制植物生長(zhǎng),使植株株高和葉綠素濃度顯著小于對(duì)照處理;Liu等[14]發(fā)現(xiàn)較高濃度(大于10 μg/L)環(huán)丙沙星、土霉素和磺胺嘧啶對(duì)蘆葦根活力及葉片葉綠素合成有抑制作用,而較低濃度(0.1~1.0 μg/L)抗生素則有促進(jìn)作用。5種人工濕地植物中,唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草對(duì)1~100 mg/L的SMX的平均去除率分別為27.45%~45.32%和35.87%~61.48%。唐菖蒲為根莖型植物,耐污能力較強(qiáng),而風(fēng)車(chē)草為須根型植物,根系發(fā)達(dá),能夠更好地適應(yīng)和耐受抗生素環(huán)境,生物代謝活性高,這可能是2種植物具有較強(qiáng)SMX去除性能的重要原因。研究表明,人工濕地植物對(duì)抗生素環(huán)境的耐受性很可能取決于其根系發(fā)達(dá)程度,根系越發(fā)達(dá),分泌的根系分泌物就越多,從而更好地緩解抗生素的脅迫和改善周?chē)母H環(huán)境,降低外界環(huán)境毒性[22]。
2.2.1 根系活力
根系活力大小可以反映根系代謝強(qiáng)度大小。由圖2可見(jiàn),SMX濃度為1和10 mg/L時(shí),2種植物的根系活力均高于SMX濃度為0 mg/L時(shí),說(shuō)明植物根系對(duì)SMX脅迫有一定的抵抗能力,可通過(guò)提高代謝作用來(lái)緩解SMX對(duì)自身的傷害。鮑陳燕等[24]研究發(fā)現(xiàn),在土霉素、恩諾沙星濃度為50~100 μg/L時(shí),水芹根系活力并未受到抑制,反而進(jìn)一步促進(jìn)了水芹根系的生長(zhǎng)。但張?zhí)飕摰萚25]研究發(fā)現(xiàn),磺胺二甲基嘧啶濃度達(dá)到10 mg/L、環(huán)丙沙星濃度達(dá)到5 mg/L時(shí),均能抑制小麥的根系活力,且隨著抗生素濃度的升高小麥根系氧化還原力降低,根系活力逐漸減弱。本研究中,SMX濃度高于30 mg/L時(shí),2種植物的根系活力顯著下降(均低于SMX濃度為0 mg/L時(shí)),且SMX濃度越大,根系活力受抑制程度越強(qiáng),進(jìn)而影響植物固氮能力,并且原生質(zhì)形成和葉酸合成也會(huì)受到抑制,從而影響谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶和一系列抗氧化系統(tǒng)酶的合成表達(dá)[26]??梢?jiàn),抗生素濃度一旦超過(guò)臨界濃度,就會(huì)抑制植物根系活力,影響根系養(yǎng)分的吸收。這與廖德潤(rùn)等[27]的研究結(jié)果類(lèi)似,其研究表明,低濃度的抗生素對(duì)空心菜植株的生長(zhǎng)具有刺激效應(yīng),而高濃度條件則表現(xiàn)出抑制效應(yīng)。
圖 1 5種植物水培30 d后對(duì)不同初始濃度SMX的去除率Fig.1 Removal rates of SMX with different initial concentrations of five plants after 30 days of hydroponic cultivation
圖 2 不同SMX濃度下唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草根系活力變化Fig.2 Changes of root activity of Gladiolus hybridus and Cyperus alternifolius in the presence of different initial concentrations of SMX
2.2.2 活性氧與抗氧化系統(tǒng)指標(biāo)
植物細(xì)胞在代謝過(guò)程中,會(huì)通過(guò)光還原反應(yīng)、梅勒反應(yīng)及光呼吸等過(guò)程產(chǎn)生一系列活性氧自由基(ROS),如超氧陰離子(O2-)、過(guò)氧化氫(H2O2)、丙二醛(MDA)等[28]。ROS常被稱(chēng)為植物體內(nèi)的毒副作物,當(dāng)ROS積累到超過(guò)植物抗氧化清除能力的程度時(shí),可造成膜脂過(guò)氧化及蛋白質(zhì)、DNA損傷。MDA是膜脂過(guò)氧化作用的終產(chǎn)物,也是表征膜系統(tǒng)受害程度的重要指標(biāo)。本研究中,唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草體內(nèi)ROS、H2O2和MDA隨SMX濃度上升而不斷增加(圖3)。當(dāng)SMX濃度超過(guò)10 mg/L時(shí),與0 mg/L相比,唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草體內(nèi)MDA濃度最高增加1.66和1.45倍。Nie等[29]觀察到究乳糖酸紅霉素、鹽酸環(huán)丙沙星和SMX脅迫下羊角月牙藻(Pseudokirchneriella subcapitata)發(fā)生脂質(zhì)過(guò)氧化,MDA濃度顯著增加。楊彎彎等[30]也觀察到抗生素脅迫下銅綠微囊藻中MDA濃度增加的現(xiàn)象。
植物體內(nèi)抗氧化酶主要包括SOD、CAT、POD。SOD是超氧化物自由基清除劑,可將超氧化物催化轉(zhuǎn)化為O2和H2O,在植物抵抗外界環(huán)境脅迫中起著非常重要的作用。當(dāng)植物處于逆境時(shí),CAT等保護(hù)酶能有效地清除過(guò)氧化物所產(chǎn)生的活性氧物質(zhì),防御植物細(xì)胞膜過(guò)氧化,降低植物受傷害的程度。POD是植物體內(nèi)普遍存在的、活性較高的一種酶,其活性大小反映了植物生長(zhǎng)條件的好壞。由圖3可知,與對(duì)照組相比,SMX濃度為1 mg/L時(shí),CAT、POD、SOD活性均升高,說(shuō)明植物在SMX存在時(shí)受到了氧化脅迫,誘導(dǎo)了抗氧化酶活性,以清除過(guò)多的ROS,使植物對(duì)環(huán)境的適應(yīng)能力增強(qiáng)而有利于水體污染物的去除。這與陳友媛等[31]的研究結(jié)果一致。當(dāng)SMX濃度為50和100 mg/L時(shí),由于植物體內(nèi)ROS大量產(chǎn)生并積累,抑制了抗氧化酶的活性,該SMX濃度已經(jīng)超過(guò)植物自身抗氧化酶系統(tǒng)保護(hù)的范圍,說(shuō)明抗氧化酶系統(tǒng)保護(hù)是有限的。Riaz等[32]在試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),氟喹諾酮類(lèi)抗生素濃度為300 mg/L時(shí),抗氧化酶系統(tǒng)無(wú)法保護(hù)小麥免受抗生素增加的脅迫。因此,在SMX脅迫下,會(huì)促進(jìn)植物體內(nèi)ROS的產(chǎn)生,抑制植物抗氧化酶系統(tǒng)。
溫度是影響植物生長(zhǎng)發(fā)育最重要的非生物因素之一[33],其不僅影響植物的生長(zhǎng),而且對(duì)植物體內(nèi)的ROS含量、抗氧化酶系統(tǒng)產(chǎn)生明顯影響。通過(guò)人工模擬氣候室的溫控系統(tǒng)進(jìn)行調(diào)控,不同溫度脅迫下唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草ROS含量及抗氧化酶活性變化如圖4所示。由圖4可知,隨著溫度降低,SOD、CAT、POD含量均減少。研究表明,低溫脅迫下植物抗氧化防御系統(tǒng)會(huì)遭到破壞,酶活性下降[34]。但本研究發(fā)現(xiàn),O2-和MDA含量隨溫度的降低而逐漸增加。這是由于植物體內(nèi)的活性氧一般處于動(dòng)態(tài)平衡,低溫脅迫能引起植物體內(nèi)活性氧含量增加,植物膜脂過(guò)氧化程度加大,導(dǎo)致植物MDA產(chǎn)生量增加[35]。李任任等[36]研究也發(fā)現(xiàn),低溫出苗下,甜菜幼苗葉片中MDA含量較高。因此,溫度的變化在一定程度上刺激植物活性氧含量增加,抑制了植物抗氧化酶的活性。
圖 3 不同濃度SMX對(duì)唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草的活性氧自由基含量和抗氧化酶活性的影響Fig.3 Effects of SMX at different concentrations on reactive oxygen species content and antioxidant enzyme activity of Gladiolus hybridus and Cyperus alternifolius
2.4.1 多樣性與豐富度指數(shù)
采用α多樣性指數(shù)(Shannon-Weiner指數(shù)、ACE指數(shù)、Chao指數(shù)、Simpson指數(shù)和樣品覆蓋率)評(píng)價(jià)唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草的物種豐富度和微生物群落多樣性[37-38],結(jié)果如表1所示。由表1可知,所有樣本覆蓋率均超過(guò)98%,說(shuō)明序列分析可以覆蓋幾乎完整的細(xì)菌種群和相應(yīng)數(shù)量的OTUs[39-40]。添加1 mg/L SMX時(shí),唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草根際微生物Chao指數(shù)大于對(duì)照組,而在該濃度下根系活力也有所提高,說(shuō)明添加1 mg/L 的SMX促進(jìn)植物根系活力提升的同時(shí)也促進(jìn)微生物物種豐富度增加。Xu等[41]研究表明,低劑量抗生素可刺激微生物群落活性,增加根際細(xì)菌群落的豐度和多樣性。但添加50 mg/L 的SMX時(shí),唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草根際微生物Chao指數(shù)小于添加1 mg/L的SMX。Xie等[40]的研究同樣發(fā)現(xiàn),Chao指數(shù)在MFC系統(tǒng)中隨著SMX濃度增加而降低。
表 1 樣品中微生物群落組成的豐富度指數(shù)Table 1 Richness index of microbial community composition in the sample
Shannon-Weiner指數(shù)常用于表征物種的多樣性,同時(shí)反映物種的豐富度和均勻度[42]。添加1 mg/L的SMX后,唐菖蒲Shannon-Weiner指數(shù)從4.26降至3.81,風(fēng)車(chē)草Shannon-Weiner指數(shù)從4.83增至5.14。在SMX濃度為50 mg/L 時(shí),唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草根際微生物Shannon-Weiner指數(shù)相比于SMX為0和1 mg/L 時(shí)均顯著降低。其原因可能是在SMX去除過(guò)程中起作用的微生物作為優(yōu)勢(shì)種保留下來(lái),而其他微生物被消除,導(dǎo)致物種豐富度降低。同樣的現(xiàn)象在污水處理廠中也被發(fā)現(xiàn),如魏健等[43]研究發(fā)現(xiàn),向污水處理廠的曝氣生物濾池中逐漸通入抗生素廢水,OTUs 從264降至220,微生物多樣性指數(shù)從3.06降至3.01。類(lèi)似的研究還表明,過(guò)度的抗生素污染會(huì)降低根際微生物的多樣性[44]。
2.4.2 根際微生物群落結(jié)構(gòu)與組成分析
在不同水平上檢測(cè)微生物的相對(duì)豐度,以確定不同植物-微生物耦合體系處理SMX時(shí)微生物群落組成和結(jié)構(gòu)的響應(yīng)特征(圖5)。
在門(mén)水平上〔圖5(a)〕,按相對(duì)豐度從大到小選擇11個(gè)菌門(mén)(相對(duì)豐度均大于1%)進(jìn)行分析。變形菌門(mén)(Proteobacteria)是各樣品中的優(yōu)勢(shì)菌門(mén)(豐度為72.87%),其次是放線菌門(mén)(Actinobacteria,豐度為8.49%)和擬桿菌門(mén)(Bacteroidetes,豐度為6.08%),說(shuō)明SMX的引入增加了變形菌門(mén)、放線菌門(mén)、擬桿菌門(mén)的相對(duì)豐度,這3個(gè)優(yōu)勢(shì)菌門(mén)在處理含抗生素廢水的人工濕地中分布廣泛[45]。其中,變形菌門(mén)包括很多與碳、氮和硫循環(huán)中相關(guān)的細(xì)菌,擬桿菌門(mén)與有機(jī)物的降解密切相關(guān)[46-47]。唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草根際微生物群落組成在門(mén)水平上變化較明顯,隨著SMX濃度增加,變形菌門(mén)、厚壁菌門(mén)相對(duì)豐度有不同程度增加。先前有研究表明,變形菌門(mén)包括多種抗生素抗性細(xì)菌(ARB),SMX的加入可以促進(jìn)變形菌門(mén)在體外循環(huán)中的生長(zhǎng),并且變形菌有助于芳香族化合物的降解[48]。厚壁菌門(mén)可以產(chǎn)生芽孢,能夠抵抗外部極端環(huán)境,并且厚壁菌門(mén)及其附屬菌群能夠分泌一種降解廢水中有機(jī)污染物的細(xì)胞外酶,如纖維素、脂肪酶和蛋白酶等[42]。此外,系統(tǒng)內(nèi)放線菌門(mén)、擬桿菌門(mén)相對(duì)豐度隨SMX濃度升高而減小。因此,抗生素脅迫影響根際微生物對(duì)污染物和有機(jī)物的吸收、降解和功能代謝。
圖 5 不同水平上檢測(cè)到的微生物的相對(duì)豐度Fig.5 Relative abundance of microorganisms detected at different levels
在屬水平上〔圖5(b)〕,按相對(duì)豐度從大到小選擇20個(gè)菌屬(相對(duì)豐度均大于1%)進(jìn)行分析。優(yōu)勢(shì)菌屬主要為unclassified_f_Burkholderiaceae(豐度為9.41%)、耐熱單胞菌屬 (Thermomonas,豐度為6.70%)、不粘柄菌屬 (Asticcacaulis,豐度為 6.19%)。SMX濃度為0 mg/L時(shí)唐菖蒲根際微生物主要優(yōu)勢(shì)菌屬為耐熱單胞菌屬、檸檬酸桿菌屬 (Citrobacter),風(fēng)車(chē)草根際微生物主要優(yōu)勢(shì)菌屬為德沃斯氏菌屬(Devosia)、鞘氨醇菌屬 (Sphingomonas)。添加1、50 mg/L SMX后,根際微生物群落的菌屬豐度發(fā)生不同的變化。唐菖蒲中耐熱單胞菌屬、unclassified_f_Burkholderiaceae的豐度先降低后升高,說(shuō)明伯克霍爾德氏菌屬逐漸成為磺胺耐藥菌;而檸檬酸桿菌屬的豐度隨著SMX濃度的增加而降低。unclassified_f_Burkholderiaceae作為變形菌門(mén)中具有代表性的菌科,其中大部分菌屬具有發(fā)酵代謝作用。Qi等[49]在研究中也發(fā)現(xiàn)unclassified_f_Burkholderiaceae可能對(duì)SMX中的苯環(huán)降解起到關(guān)鍵作用。在風(fēng)車(chē)草對(duì)照組中發(fā)現(xiàn)的優(yōu)勢(shì)菌屬,在添加1和50 mg/L的SMX系統(tǒng)內(nèi)發(fā)生了變化,羅河桿菌屬(Rhodanobacter)、硫單胞菌屬(Thiomonas)成為新的優(yōu)勢(shì)菌屬。溫慧洋[50]在研究中發(fā)現(xiàn),A硫單胞菌屬相對(duì)豐度的升高可能會(huì)導(dǎo)致SMX中S=O雙鍵發(fā)生斷裂,進(jìn)而提高抗生素的去除效率。
通過(guò)PICRUSt對(duì)抗生素脅迫下植物根際微生物群落level2水平代謝功能進(jìn)行預(yù)測(cè),結(jié)果如圖6所示。由圖6可知,當(dāng)SMX濃度為1 mg/L時(shí),唐菖蒲、風(fēng)車(chē)草微生物代謝功能基因豐度大于SMX濃度為50 mg/L時(shí)。微生物細(xì)菌的生物降解和代謝功能基因隨著SMX濃度升高而降低。Zhang等[51]研究發(fā)現(xiàn),抗生素濃度會(huì)顯著影響植物根系中參與無(wú)機(jī)離子、碳水化合物的轉(zhuǎn)運(yùn)及核苷酸和氨基酸的轉(zhuǎn)化、代謝等功能基因的豐度。微生物群落代謝功能變化是復(fù)雜的,結(jié)合本研究結(jié)果可知,不同濃度的抗生素對(duì)于微生物群落代謝功能的影響不同,磺胺甲惡唑?qū)ξ⑸锎x功能變化的影響,是否有利于提高某些微生物的生存能力有待進(jìn)一步研究。
圖 6 微生物群落代謝功能基因豐度Fig.6 Metabolic gene abundance in microbial community
(1)5種人工濕地植物中,唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草對(duì)1~100 mg/L SMX的去除率較高,平均去除率分別為27.45%~45.32%、35.87%~61.48%。二者根系發(fā)達(dá),具有較強(qiáng)的耐污能力和較高的地上部分生物量,能夠很好地適應(yīng)和耐受抗生素環(huán)境,生物代謝活性高。
(2)在SMX脅迫下,當(dāng)SMX濃度高于30 mg/L時(shí),唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草的根系活力顯著下降,且SMX濃度越大,根系活力受抑制程度越強(qiáng)。隨著SMX濃度的升高,促進(jìn)植物體內(nèi)ROS的產(chǎn)生,抑制植物抗氧化酶系統(tǒng)。低溫脅迫下,植物體內(nèi)ROS含量逐漸升高,植物抗氧化酶活性逐漸降低,植物抗氧化酶系統(tǒng)受到抑制。
(3)唐菖蒲和風(fēng)車(chē)草根際微生物群落組成在門(mén)水平上變化較明顯,SMX濃度升高時(shí),變形菌門(mén)、厚壁菌門(mén)成為優(yōu)勢(shì)菌門(mén),二者可能對(duì)SMX降解起著重要作用;在屬水平上,伯克霍爾德氏菌屬和硫單胞菌屬的富集可能對(duì)SMX的降解起到關(guān)鍵作用。對(duì)微生物群落代謝功能進(jìn)行預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn),不同濃度抗生素對(duì)微生物群落代謝功能的影響不同,SMX對(duì)微生物代謝功能變化的影響是否有利于提高某些微生物的生存能力,尚有待進(jìn)一步研究。