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思茅松毛蟲不同發(fā)育階段的轉(zhuǎn)錄組差異分析

2022-11-28 08:35:48王宇翔楊斌吳培福冷堂健邱雨周杰瓏
四川動物 2022年6期
關(guān)鍵詞:思茅發(fā)育階段松毛蟲

王宇翔,楊斌,吳培福,冷堂健,邱雨,周杰瓏,*

(1. 西南林業(yè)大學生命科學學院,昆明650224;2. 西南林業(yè)大學生物多樣性保護學院,云南省森林災害預警與控制重點實驗室,昆明650224)

思茅松毛蟲Dendrolimus kikuchii(Matsumura,1927)是我國危害最嚴重的6 種松毛蟲之一,隸屬于鱗翅目Lepidoptera 枯葉蛾科Lasiocampidae 松毛蟲屬Dendrolimus,模式標本來自云南思茅(侯陶謙,1987),在我國分布于云南、四川、貴州、廣東、湖南、浙江、江蘇、安徽、福建、臺灣等省,主要危害思茅松Pinus kesiyavar.langbianensis、云南松Pinus yunnanensis、滇 油 杉Keteleeria fortunei、馬 尾 松Pinus massoniana及落葉松Larix gmelinii等針葉類植物(陳昌潔,1990;侯陶謙,1993;曹先聰,2017)。爆發(fā)成災時,針葉短時間被蠶食精光,被害樹林遠看枯黃一片,如同火燒,俗稱“無煙森林火災”;蟲害輕則影響松樹生長、落葉及枝條枯死,降低松果、木材和松脂的產(chǎn)量(侯陶謙,1987;Daiet al.,2012;Menet al.,2017),重則造成樹木死亡,給林業(yè)經(jīng)濟和生態(tài)景觀造成巨大損失(童清,劉宏屏,2009;聶中良等,2019)。松毛蟲與人接觸還會引起“松毛蟲病”(陳昌潔,1990)。

關(guān)于思茅松毛蟲的研究集中在危害調(diào)查及防治措施、腸道微生物、種群動態(tài)監(jiān)測、線粒體系統(tǒng)發(fā)育、組織病理及生理生化等方面(張榮超,2015;曹先聰,2017;Liuet al.,2017;Menet al.,2017;Wuet al.,2017;馮玉元,2018;萬鷹等,2018;李雕益等,2022;邱雨等,2022)。Zhou 等(2021)報道了思茅松毛蟲的全基因組,為該物種的系統(tǒng)進化和防治策略提供了新的視角。但迄今為止有關(guān)思茅松毛蟲基因表達及調(diào)控相關(guān)研究較為匱乏。隨著下一代測序技術(shù)(NGS)和生物信息學的發(fā)展,RNA-Seq分析成為發(fā)育生物學、進化生物學、分類學、寄主互作及毒理學等領(lǐng)域的重要研究手段(Zhanget al.,2014;Tianet al.,2015;姚順,2018;Chenet al.,2019;Norigaet al.,2019),可從整體水平上分析基因結(jié)構(gòu)和功能,有利于發(fā)現(xiàn)生物學過程的基因表達變化規(guī)律(Wang & Kirkness,2005)。昆蟲轉(zhuǎn)錄組分析為深入系統(tǒng)地研究昆蟲生命活動相關(guān)基因功能、系統(tǒng)進化與分類、生長發(fā)育以及昆蟲與相關(guān)寄主互作等提供依據(jù)(張棋麟,袁明龍,2013)?;诖耍狙芯坎捎肈NBSEQ-T7 測序平臺對思茅松毛蟲不同發(fā)育階段的轉(zhuǎn)錄組進行測序,開展各階段基因表達譜差異和功能富集分析。研究結(jié)果能豐富思茅松毛蟲遺傳資源的組學數(shù)據(jù)庫,有助于揭示基因表達與特定階段生理功能的關(guān)系,理解昆蟲全變態(tài)發(fā)育的生物學過程,為進一步闡明思茅松毛蟲生長發(fā)育的分子機制、開展功能基因表達調(diào)控及害蟲生物防治策略相關(guān)研究奠定理論基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 樣品采集

思茅松毛蟲蟲繭采自云南省安寧市縣街野外滇油杉林(102°24'E,24°46'N),采回后于室內(nèi)羽化、交配、產(chǎn)卵、孵化及飼養(yǎng)(飼養(yǎng)條件:28 ℃,相對濕度75%,光照L∶D=16∶8,幼蟲飼喂新鮮滇油杉)。收集各發(fā)育階段樣品:卵50粒、1齡幼蟲10頭、4齡幼蟲 10 頭、7 齡幼蟲 6 頭、蛹 4 頭和成蟲 4 頭。將上述樣品用PBS 溶液(pH7.4,濃度0.01 mol·L?1)清洗干凈,?80 ℃保存。

1.2 RNA提取、文庫構(gòu)建及測序

采用以Trizol 法提取總RNA 的試劑盒(TIANGEN,DP431)分別提取不同發(fā)育階段樣品的總RNA。質(zhì)檢后,使用MGIEasy RNA 文庫制備試劑套裝(深圳華大智造科技股份有限公司)建立6個cDNA文庫。通過DNBSEQ-T7(原MGISEQ-T7)測序平臺上對合格文庫進行測序。文庫構(gòu)建及測序由武漢希望組生物科技有限公司完成。轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)提交至NCBI_SRA 數(shù)據(jù)庫,登錄號為PRJNA732117。

1.3 數(shù)據(jù)質(zhì)控及比對參考基因組

使用 Fastp(https://github.com/OpenGene/fastp)對原始數(shù)據(jù)進行過濾,然后利用FastQC(http://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc)對clean data 進行質(zhì)控,質(zhì)控合格后進行后續(xù)分析。使用 Hisat2(Kimet al.,2015)將 clean reads 與參考基因組比對(DDBJ/ENA/GenBank登錄號:JAHHIN?000000000)。

1.4 差異表達基因(DEGs)及其功能富集分析

通過定位到基因組區(qū)域或基因外顯子區(qū)的測序序列(reads)的計數(shù)來估計基因的表達水平。本研究以每百萬reads 中來自某一基因每千堿基長度的fragments 數(shù)目(FPKM)作為每個基因表達量的衡量標準,以FPKM=0.1 作為判斷基因是否表達的閾值:0.115 為高豐度表達水平。參考Bardou 等(2014)的方法繪制基因維恩圖;各發(fā)育階段基因表達量經(jīng)log2轉(zhuǎn)換后,通過R 語言繪制聚類熱圖。采用 EdgeR(Robinsonet al.,2010)對不同發(fā)育階段的DEGs 進行分析,篩選條件為|Fold Change |≥2 且 P-adjust(FDR)≤0.005。 采 用clusterProfiler(https://github. com/GuangchuangYu/clusterProfiler;Yuet al.,2012)對 DEGs 進行 GO 和KEGG 富集分析,以FDR<0.05 作為篩選顯著富集結(jié)果的閾值,確定DEGs 主要參與的代謝通路或信號途徑。

2 結(jié)果與分析

2.1 轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)統(tǒng)計與質(zhì)量評估

測序獲總的數(shù)據(jù)量為369 804 176 條序列,各發(fā)育階段樣品的為47 517 160~75 263 362條;經(jīng)數(shù)據(jù)過濾質(zhì)控,約有99%被作為clean reads 保留,獲得368 027 762 條序列進行下游分析,各階段clean reads 為 47 433 276~74 726 282 條,其中,成蟲期最多,4齡幼蟲期最少;各階段clean reads的比對率為86.29%~91.10%;Q20 均 在 96.46% 以 上 ,Q30 在90.00% 左右;GC 含量為 41.10%~47.60%(表 1)。轉(zhuǎn)錄組測序質(zhì)量較高,數(shù)據(jù)可滿足生物信息學分析相關(guān)要求。

表1 不同發(fā)育階段轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)統(tǒng)計與質(zhì)量分析Table 1 Statistics and quality analysis of transcriptome data at different developmental stages

2.2 基因表達水平分析

各發(fā)育階段基因數(shù)量分別為11 580 個(卵)、12 128 個(1 齡幼蟲)、11 334個(4齡幼蟲)、11 209個(7 齡幼蟲)、12 160 個(蛹)和11 478 個(成蟲)?;驍?shù)量和高表達基因均為蛹階段最多,4 齡幼蟲期最少;各發(fā)育階段中,除幼蟲期外,其他3個階段均為高表達基因占比最高(表2)。

表2 不同表達水平的基因數(shù)量統(tǒng)計表Table 2 Statistics of the number of genes in different expression levels

從維恩圖可以看出(圖1:A),不同發(fā)育階段均表達的基因有9 251 個;特有基因在卵、幼蟲、蛹、成蟲階段分別有 213 個、261 個、183 個、141 個,其中幼蟲階段特有基因分別為153個(1齡幼蟲)、43個(4 齡幼蟲)、65 個(7 齡幼蟲)。熱圖顯示(圖1:B),不同發(fā)育階段呈現(xiàn)不同的基因表達聚類模式,其中4 齡幼蟲和7 齡幼蟲聚為一支,再與1 齡幼蟲匯聚,蛹和成蟲聚為一支,再與卵匯聚,最后兩大支匯合;不同發(fā)育階段的基因表達譜存在明顯差異,各發(fā)育階段均有幾個主要的高表達基因簇,卵和蛹階段尤為突出。

圖1 基因表達維恩圖(A)和基因表達模式聚類圖(B)Fig. 1 Venn diagram of gene expression(A)and cluster diagram of gene expression patterns(B)

2.3 DEGs分析

DEGs 總數(shù)為 12 927 個,其中,卵與 1 齡幼蟲的最多(3 336 個:上調(diào)1 902 個,下調(diào) 1 434 個),1 齡幼蟲與 4 齡幼蟲的有 2 398 個(上調(diào) 1 362 個,下調(diào)1 036 個),4 齡幼蟲與7 齡幼蟲的有1 758 個(上調(diào)642 個,下調(diào) 1 116 個),7 齡幼蟲與蛹的有 2 034 個(上調(diào)1 166 個,下調(diào)868 個),蛹與成蟲的最少(1 654個:上調(diào)821個,下調(diào)833個)。

不同發(fā)育階段基因表達的比較結(jié)果顯示,從卵至1齡幼蟲,顯著上調(diào)基因有肌球蛋白相關(guān)基因(XP_026493160.1 和AAV91411.1)、化學感受蛋白相關(guān)基因(AII01039.1 和AII01031.1)、視黃醇脫氫酶相關(guān)基因(XP_026737674.1)、絲氨酸蛋白酶相關(guān)基因(ACR15967.2);而與有絲分裂特異性細胞周期蛋白cyclin-B1 相關(guān)基因(XP_026731829.1)、細胞分裂周期蛋白20(CDC20)相關(guān)基因(XP_026733697.1)明顯下調(diào)。4 齡幼蟲相對1 齡幼蟲,載脂蛋白相關(guān)基因(XP_026760716.1)、細胞壁蛋白相關(guān)基因(XP_004932399.1)、表皮蛋白相關(guān)基因(XP_026734677.1)、保幼激素相關(guān)基因(XP_004925704.1 和 XP_026743329.1)、蛻皮激素相關(guān)基因(XP_026761583.1 和XP_026735381.1)等顯著上調(diào);7 齡幼蟲相對4 齡幼蟲,解毒酶細胞色素P450 相關(guān)基因(XP_021191965.1 和 AID54859.1)、表皮蛋白相關(guān)基因(XP_026762046.1)、保幼激素相關(guān)基因(XP_026733514.1和XP_026743329.1)、蛻皮相關(guān)基因(XP_026330046.1和XP_026761583.1)等表達上調(diào),而脂肪酶相關(guān)基因(AEA76291.1)表達下調(diào)。從7齡幼蟲到蛹階段,顯著上調(diào)基因有溶菌酶相關(guān)基因(XP_026321249.1)、脂肪酸合成酶相關(guān)基因(XP_026499944.1)、過氧化物酶相關(guān)基因(XP_026725384)、長鏈酯酰輔酶A 合成酶相關(guān)基因(XP_026724857.1)、儲存蛋白相關(guān)基因(XP_026327069.1)、表皮蛋白相關(guān)基因(XP_026501352.1)、卵黃原蛋白基因(BAB16412.1)等,顯著下調(diào)基因有細胞色素P450 家族相關(guān)基因(AID54859.1 和(XP_021191965.1)。從蛹到成蟲階段,角質(zhì)層蛋白相關(guān)基因(XP_026756401.1)、肌鈣蛋白 C 相關(guān)基因(XP_026757608.1)、脂肪酸合成酶相關(guān)基因(XP_026499944.1)、化學感受蛋白相關(guān)基因(AII01034.1)、飛行有關(guān)基因(XP_026317122.1和XP_026757413.1)等顯著上調(diào),而與血淋巴蛋白酶相關(guān)基因(AAV91004.1)、溶酶體相關(guān)基因(XP_026734095.1)、Toll樣受體相關(guān)基因(XP_026744547.1)表達下調(diào)。

2.4 不同發(fā)育階段DEGs功能富集分析

GO分析表明,各階段DEGs均能顯著富集到生物過程、細胞組分及分子功能,其中涉及分子功能的條目最多、細胞組分的最少(圖2)。KEGG 分析發(fā)現(xiàn),各階段DEGs顯著富集到代謝、生物體系統(tǒng)、遺傳信息處理、細胞過程、環(huán)境信息處理5類途徑,涉及101條通路,其中代謝途徑最多(57條通路;圖3)。

圖2 不同發(fā)育階段差異表達基因GO富集分析Fig. 2 GO enrichment analysis of differentially expressed genes at different developmental stages

圖3 不同發(fā)育階段差異表達基因KEGG通路富集分析Fig. 3 KEGG pathway enrichment analysis of differentially expressed genes at different developmental stages

從卵到1 齡幼蟲,DEGs 主要富集于催化活性和代謝過程。相比于1齡幼蟲,卵期上調(diào)基因主要參與細胞分裂過程和蛋白質(zhì)合成過程。隨齡期增加,GO 富集情況與上、下調(diào)基因參與KEGG 通路均有所變化,主要體現(xiàn)在免疫功能和解毒代謝途徑上。在幼蟲變態(tài)為蛹階段,DEGs 顯著富集于催化活性、結(jié)構(gòu)組分和結(jié)合分子功能,氧化還原過程、跨膜運輸和蛋白質(zhì)水解(生物過程),核糖體、胞外區(qū)域(細胞組分);上調(diào)基因富集于DNA 復制、核苷酸切除修復,下調(diào)通路主要有核糖體和大量代謝途徑。當蛹變?yōu)槌上x,DEGs富集于跨膜運輸、氧化還原過程、催化活性、細胞粘附及蛋白質(zhì)折疊的細胞增殖過程;上調(diào)基因參與氨基酸代謝、脂肪酸代謝和與飛行有關(guān)的晝夜節(jié)律等途徑。

3 討論

通過對思茅松毛蟲發(fā)育過程的轉(zhuǎn)錄組學研究和差異表達基因的分子解析,可為后續(xù)開展發(fā)育生物學研究奠定分子基礎(chǔ),為今后害蟲綜合防治提供新的方向和策略。本文采用DNBSEQ-T7測序平臺對思茅松毛蟲進行轉(zhuǎn)錄組測序分析,發(fā)現(xiàn)各發(fā)育階段差異表達基因與每個階段特定生理活動存在顯著相關(guān)性。在卵期,參與細胞周期和細胞分裂相關(guān)基因有較高表達。幼蟲階段,與消化酶、代謝、肌肉生長、感覺等相關(guān)基因明顯上調(diào);隨齡期增加,保幼激素、解毒、表皮蛋白及抗性等相關(guān)基因也顯著上調(diào)。蛹階段,與細胞增殖和分化相關(guān)基因被激活,脂肪酸合成酶、儲存蛋白、表皮蛋白、溶菌酶等相關(guān)基因顯著上調(diào),這些可能與保證蛹發(fā)育和角質(zhì)層形成提供足夠蛋白質(zhì)和氨基酸(Pick&Burmester,2009;Allenet al.,2018)、由凋亡和自噬介導對幼蟲器官的自我消化(Tashiroet al.,1976;Joneset al.,1995)和免疫防御機制(Chung &Ourth,2000;Xieet al.,2013)等有關(guān)。成蟲階段,高表達基因主要與組織器官形成、外部形態(tài)、繁殖和飛行等過程顯著相關(guān)。此外,基因表達具有發(fā)育時空特異性,卵與1齡幼蟲間差異表達基因數(shù)目最多,說明從卵向幼蟲的轉(zhuǎn)變是最為復雜的過程,這與戚禮興(2016)、Yang 等(2016)及 Han 等(2019)在菜粉蝶Pieris rapae、馬尾松毛蟲Dendrolimus punctatus和云南松毛蟲Dendrolimus houi上的研究結(jié)果一致。

在GO 功能富集中,各發(fā)育階段的DEGs 顯著富集到了氧化還原、蛋白質(zhì)水解、跨膜運輸、碳水化合物代謝等生物過程,這些過程為機體生長發(fā)育、運動提供營養(yǎng)和能量來源(Claudiuset al.,2014;Massoet al.,2016;Gautamet al.,2020)。在分子功能中,較多地富集在活性功能和結(jié)合功能上。其中,催化活性最為典型,生物體各類催化活動都離不開酶的參與,保證了昆蟲物質(zhì)代謝和營養(yǎng)能量轉(zhuǎn)換等過程正常進行(趙星,2021)。結(jié)合功能與一些分子和關(guān)鍵因子/離子需要結(jié)合后才能變?yōu)榛钚?、有功能的調(diào)控有關(guān)。結(jié)合功能和催化活性功能顯著富集情況與姚順(2018)的研究結(jié)果較為一致。幾丁質(zhì)結(jié)合是唯一一個在各發(fā)育階段比較中均被顯著富集的條目,這可能與其全變態(tài)發(fā)育的周期性表皮降解和重構(gòu)等生理過程有關(guān)(Co?hen,2001)。在細胞組分中,顯著富集到胞外區(qū)域、線粒體內(nèi)膜、質(zhì)膜等,這說明相關(guān)細胞活動及細胞膜內(nèi)外分子在昆蟲發(fā)育過程有著重要作用,發(fā)揮各種物質(zhì)轉(zhuǎn)運和信號傳遞交流等重要生理功能(Zhaoet al.,2020)。

氧化磷酸化是昆蟲生理生化過程的一個重要環(huán)節(jié),是產(chǎn)生ATP 的主要方式(Dewaret al.,2022);碳水化合物是生物體生長發(fā)育、運動的主要能量來源(Oppertet al.,2015);脂肪酸是肌肉收縮、加快組織新陳代謝的重要能量來源,可以與磷脂結(jié)合形成細胞膜(Glatzet al.,2010);檸檬酸(TCA)循環(huán)是氨基酸、糖類和脂類代謝的共同代謝通路,是機體通過物質(zhì)代謝獲取能量的最有效方式(陳牧等,2012);CYP450藥物代謝及外源物質(zhì)代謝過程對于生物體有毒代謝物排出、植物次生代謝物降解中發(fā)揮重要作用(Wenet al.,2006;Maoet al.,2007;Pottieret al.,2012;Pakharukovaet al.,2015);溶酶體在多細胞生物生長發(fā)育、結(jié)構(gòu)重建、維持細胞內(nèi)穩(wěn)態(tài)等過程中起著重要作用(Kobayashi & Liang,2015;Vargaet al.,2015);吞噬體具有清除凋亡細胞和入侵病原體的功能(Stuart & Ezekowitz,2008),上述代謝、解毒及免疫相關(guān)通路顯著富集于幼蟲階段,說明幼蟲在活動旺盛、取食頻繁及接觸環(huán)境增多的情況下,生物體組織代謝活動加強,解毒和免疫功能逐漸顯現(xiàn),以滿足機體生長發(fā)育所需和免受外界侵害。隨齡期增加,上調(diào)基因主要參與調(diào)控生長通路(內(nèi)質(zhì)網(wǎng)蛋白加工)(Chenet al.,2017)、與肌動蛋白合成相關(guān)的信號途徑和細胞連接、分化及遷移(細胞外基質(zhì)受體互作)(Alldingeret al.,2006;Peschet al.,2016)、耐藥性相關(guān)通路(藥物代謝-其他酶)(Santoset al.,2020)、先天性防御有關(guān)通路(FcγR 介導 的吞噬作用)(Popovicet al.,2021),這些對于幼蟲生長發(fā)育過程中的組織器官功能和結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性、生理生化功能及免疫相關(guān)機能完善等方面有重要作用(Liuet al.,2014)。幼蟲變態(tài)為蛹,下調(diào)通路明顯多于上調(diào)通路、且主要富集于代謝通路,推測可能與蛹階段不再取食和活動,相關(guān)生理生化代謝減弱有關(guān);上調(diào)基因則富集一些與細胞分裂有關(guān)的通路,這可能與蛹階段細胞增殖和分化活動加劇有關(guān),以利于成蟲器官的形成(Sotillos&Celis,2005;Wonget al.,2012)。從蛹轉(zhuǎn)變到成蟲,上調(diào)基因顯著富集通路多數(shù)與成蟲飛行活動、交配、產(chǎn)卵及其他行為等重要功能發(fā)揮需要較多營養(yǎng)和能量有關(guān);與飛行有關(guān)的晝夜節(jié)律通路在該階段也被上調(diào)基因富集,這可能與羽化后形成的白天飛行、夜間棲息的生理節(jié)律相關(guān)。

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