曹永強(qiáng),吳昌旭,王婷婷,張銘林,胡庭俊,于美玲
( 廣西大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,廣西 南寧 530005 )
青蒿素是一種分離自植物青蒿(黃花蒿葉)中的倍半萜烯內(nèi)酯[1]。自屠呦呦教授于20世紀(jì)70年代發(fā)現(xiàn)青蒿素后,關(guān)于青蒿素及其衍生物的研究層出不窮。有研究發(fā)現(xiàn),青蒿素及其衍生物具有抗寄生蟲[2-3]、抗腫瘤[4]、抗病毒[5]、抗菌[6]、抗炎[7]、抗纖維化[8]和保護(hù)腎臟[9]等作用。青蒿素的應(yīng)用研究主要集中于各種動(dòng)物寄生蟲疾病的防治,如應(yīng)用青蒿素治療豬附紅細(xì)胞體病、雞柔嫩艾美爾球蟲、牛焦蟲病、錐蟲病和血吸蟲病等[10-13]。但因青蒿素存在水溶性差、生物利用度低、半衰期短和穩(wěn)定性差等特點(diǎn)限制了其在獸醫(yī)臨床中的應(yīng)用[14]。納米脂質(zhì)體藥物遞送系統(tǒng)能夠提高青蒿素的水溶性,并將藥物靶向遞送到靶器官,從而解決青蒿素溶解度差的問題;還能夠提高藥物生物利用度,具有很好的緩釋作用和穿透作用[15]。本試驗(yàn)通過比較薄膜分散法、逆向蒸發(fā)法、乙醇注入法和改良乙醇注入法,優(yōu)選制得脂質(zhì)體粒徑較小、包封率較高、操作簡單的制備方法,并通過單因素試驗(yàn)和Box-Benhnken響應(yīng)面法優(yōu)化了其制備工藝,為應(yīng)用青蒿素防控動(dòng)物疾病提供參考。
1.1.1 藥品及試劑耗材
青蒿素(批號:20210720,陜西寶雞市方晟生物開發(fā)有限公司)、青蒿素標(biāo)準(zhǔn)品(北京索萊寶科技有限公司)、大豆卵磷脂(上海生工生物工程股份有限公司,BC級,純度≥60%)、膽固醇(上海生工生物工程股份有限公司,Reagent級)、2%磷鎢酸負(fù)染色液(北京索萊寶科技有限公司)、透析袋MD34(規(guī)格:MD34,透析膜截留分子量:3500D,北京索萊寶科技有限公司)、200目碳膜銅網(wǎng)(深圳市瑞格銳思科技有限公司)。NaOH、無水乙醇、二甲基亞砜(DMSO)和NaCl試劑等均為國產(chǎn)分析純。
1.1.2 儀器設(shè)備
HEI VAP ADVANTAGE旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(海道夫公司)、UV-1800紫外可見光分光光度計(jì)(島津儀器有限公司)、Zetasizer Nano-ZS納米粒度電位分析儀(Malvern instrument lid)、SCIENTZ-IID超聲波細(xì)胞粉碎儀(寧波新芝生物科技股份有限公司)、HH-4數(shù)顯恒溫水浴鍋(常州澳華儀器有限公司)、524G恒溫磁力攪拌器(上海梅穎浦儀器儀表制造有限公司)、himac CF16RN多用途冷凍離心機(jī)(日立公司)、日立HT7700透射電子顯微鏡(日立公司)。
1.2.1 青蒿素納米脂質(zhì)體制備方法的優(yōu)選
1.2.1.1 薄膜分散法
精確稱取大豆卵磷脂250 mg、膽固醇50 mg、青蒿素12.5 mg,加入無水乙醇超聲溶解。45 ℃旋轉(zhuǎn)減壓蒸發(fā)除去有機(jī)溶劑,形成一層均勻的薄膜后,加入10 mL生理鹽水,邊振搖邊水浴超聲使脂質(zhì)膜溶于水相呈混懸液?;鞈乙航?jīng)0.45 μm有機(jī)濾膜過濾,得青蒿素納米脂質(zhì)體。
1.2.1.2 逆向蒸發(fā)法
精確稱取大豆卵磷脂250 mg、膽固醇50 mg、青蒿素12.5 mg,加入無水乙醇超聲溶解。將10 mL生理鹽水加入有機(jī)相中,振搖使之呈淡黃色乳狀液。45 ℃旋轉(zhuǎn)減壓蒸發(fā)除去有機(jī)溶劑?;鞈乙航?jīng)0.45 μm有機(jī)濾膜過濾,得青蒿素納米脂質(zhì)體。
1.2.1.3 乙醇注入法
精確稱取大豆卵磷脂250 mg、膽固醇50 mg、青蒿素12.5 mg,加入無水乙醇超聲溶解。將有機(jī)相用注射器緩緩地滴加入45 ℃水浴的10 mL生理鹽水中,邊滴加邊攪拌,然后置于磁力攪拌器上常溫?cái)嚢?~4 h。混懸液經(jīng)0.45 μm有機(jī)濾膜過濾,得青蒿素納米脂質(zhì)體。
1.2.1.4 改良乙醇注入法
精確稱取大豆卵磷脂250 mg、膽固醇50 mg、青蒿素12.5 mg,加入無水乙醇超聲溶解。將有機(jī)相用注射器緩緩地滴加入45 ℃水浴的10 mL生理鹽水中,邊滴加邊攪拌,然后置于恒溫磁力攪拌器攪拌30 min,40 ℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)30 min后,常溫磁力攪拌1~2 h?;鞈乙河眉?xì)胞破碎儀探頭超聲10 min,期間每超聲10 s,暫停10 s?;鞈乙航?jīng)0.45 μm有機(jī)濾膜過濾,得青蒿素納米脂質(zhì)體。
1.2.1.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
準(zhǔn)確稱取青蒿素標(biāo)準(zhǔn)品2 mg,溶解于1 mL DMSO中,配制2 000 mg/L溶液。精密量取溶液于10 mL容量瓶中,用2% NaOH溶液-DMSO(1∶1,V/V)定容至刻度,配成10、20、30、40、50、100和125 mg/L的青蒿素標(biāo)準(zhǔn)溶液,室溫反應(yīng)1 h。在291 nm處進(jìn)行吸光度值測定,以青蒿素標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.1.6 包封率、粒徑、多分散性指數(shù)(PDI)和Zeta電位的測定
包封率測定參考Isacchi等[16]的方法。將2 mL脂質(zhì)體轉(zhuǎn)移到透析袋中,在800 mL生理鹽水中透析2 h,中間將水介質(zhì)更換一次,利用透析法去除游離青蒿素。收集透析袋中液體,加入適量2% NaOH-DMSO混合液超聲破乳10 min,室溫反應(yīng)35 min,8 000 r/min離心15 min,取上清液,在291 nm處測定吸光度值。另取未經(jīng)透析的脂質(zhì)體溶液2 mL,同法操作。通過青蒿素標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算包封率。
式中:w1為透析后的納米脂質(zhì)體中青蒿素的質(zhì)量;w2為納米脂質(zhì)體中青蒿素的總量。
粒徑、PDI和Zeta電位測定:將納米脂質(zhì)體稀釋10倍,用馬爾文納米粒度電位分析儀測定脂質(zhì)體粒徑分布、PDI和Zeta電位。
1.2.2 青蒿素納米脂質(zhì)體制備單因素試驗(yàn)
根據(jù)制備方法篩選結(jié)果選擇本試驗(yàn)條件下的最佳制備方法進(jìn)行工藝優(yōu)化。通過單因素試驗(yàn)分別考察藥脂比(1∶10、1∶12、1∶14、1∶16、1∶18、1∶20、1∶22和1∶26)、磷膽比(3∶1、4∶1、5∶1、6∶1和7∶1)、生理鹽水體積(5、10、15、20、25和30 mL)、超聲時(shí)間(5、10、15和20 min)對青蒿素納米脂質(zhì)體包封率的影響。
1.2.3 Box-Behnken響應(yīng)面設(shè)計(jì)
單因素考察結(jié)果表明,藥脂比、磷膽比和生理鹽水體積對青蒿素納米脂質(zhì)體的包封率的影響較為顯著,故選取這3個(gè)因素作為考察對象。每個(gè)因素選取3個(gè)水平,各因素及水平見表1。以包封率(Y)作為響應(yīng)值,建立數(shù)學(xué)模型,優(yōu)化青蒿素納米脂質(zhì)體制備工藝。利用Design Expert 13.0 軟件建立Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)。
表1 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素和水平Tab.1 Factors and levels of Box-Behnken experimental design
1.2.4 青蒿素納米脂質(zhì)體制備工藝驗(yàn)證試驗(yàn)
在響應(yīng)面優(yōu)化的最佳條件下重復(fù)青蒿素納米脂質(zhì)體的制備和包封率的測定。每個(gè)樣品進(jìn)行3個(gè)重復(fù),測定脂質(zhì)體的包封率、粒徑、PDI和Zeta電位。
1.2.5 青蒿素納米脂質(zhì)體形態(tài)學(xué)研究
將青蒿素納米脂質(zhì)體用超純水進(jìn)行10倍稀釋,取適量稀釋液滴加至200目的碳膜銅網(wǎng)上,靜置3~5 min,用濾紙條從液滴邊緣吸去多余液體,自然干燥。滴加2%的磷鎢酸負(fù)染色液,靜置2 min,吸去多余液體,靜置干燥。使用透射電鏡觀察脂質(zhì)體的形態(tài)。
由圖1可知,線性回歸方程:y=0.013 2x-0.019 2,y為吸光度,x為青蒿素對照品濃度,相關(guān)系數(shù)R2=0.999 8。
圖1 青蒿素標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Artemisinin standard curve
由表2可知,薄膜分散法的包封率和逆向蒸發(fā)法的包封率均較低,分別為41.31%和41.04%。乙醇注入法包封率為48.65%,平均粒徑為(214.20±2.48)nm。改良乙醇注入法的包封率為58.79%,為4種方法中最高,其平均粒徑和PDI最低,為本試驗(yàn)條件下最佳方法,故選擇改良乙醇注入法進(jìn)行工藝優(yōu)化。
表2 不同方法制備脂質(zhì)體的包封率、平均粒徑和PDITab.2 Encapsulation efficiency, mean particle size and PDI of different preparation methods
圖2 各因素對青蒿素納米脂質(zhì)體包封率的影響Fig.2 Effects of various factors on encapsulation efficiency of artemisinin nanoliposomes
由圖2(a)可知,藥脂比對脂質(zhì)體的包封率影響較大。藥脂比為1∶10~1∶14時(shí),包封率隨藥脂比增加而增高;藥脂比為1∶14時(shí)包封率最高,為59.99%;藥脂比為1∶14~1∶26時(shí),包封率隨藥脂比增加而逐漸減小。
由圖2(b)可知,磷膽比對脂質(zhì)體的包封率影響較大。磷膽比在3∶1~5∶1范圍內(nèi)時(shí),包封率隨著磷膽比增加而增高,磷膽比在5∶1時(shí),包封率最高,為56.90%。磷膽比在5∶1~7∶1范圍內(nèi)時(shí),包封率隨著磷膽比增加而逐漸減小。
由圖2(c)可知,生理鹽水體積對脂質(zhì)體的包封率影響較大。生理鹽水體積在5~10 mL范圍內(nèi),包封率隨著生理鹽水體積增大而增高,生理鹽水體積為10 mL時(shí)包封率最高,達(dá)58.67%。生理鹽水體積在10~30 mL范圍內(nèi),包封率隨著生理鹽水體積增加而逐漸減小。
由圖2(d)可知,超聲時(shí)間對脂質(zhì)體的包封率影響較小。青蒿素納米脂質(zhì)體包封率呈微小的上下波動(dòng)趨勢。
2.4.1 回歸模型的建立
利用Design Expert 13.0軟件建立Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)。對試驗(yàn)測得數(shù)據(jù)進(jìn)行二次多元回歸分析,得到A、B、C與Y的二次多項(xiàng)回歸方程:Y=61.03+1.20A+4.80B-1.35C-0.54AB+0.43AC-0.715BC-5.90A2-11.20B2-14.30C2,R2=0.994 5,模型的變異系數(shù)為2.65%,表明本試驗(yàn)建立的模型精密度良好。失擬項(xiàng)F值為0.534 2,失擬項(xiàng)不顯著,表明該回歸方程擬合情況良好,見表3。
表3 青蒿素納米脂質(zhì)體響應(yīng)面回歸模型的方差分析Tab.3 Analysis of variance for regression model of artemisinin nanoliposomes
2.4.2 響應(yīng)曲面分析與優(yōu)化條件的確定
Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)方案及結(jié)果見表4。3種影響因素對于響應(yīng)值的3D曲面圖的影響結(jié)果見圖3~圖5。
表4 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)方案及結(jié)果Tab.4 Box-Behnken experimental design scheme and results
由圖3~圖5可知,包封率隨著藥脂比、磷膽比及生理鹽水體積增大,均呈先增大后減小的趨勢。得到最優(yōu)制備工藝條件為藥脂比為1∶14.53,磷膽比為5.42∶1,生理鹽水體積為9.74 mL(此時(shí)磷脂質(zhì)量為250 mg)。
圖3 藥脂比和磷膽比對包封率的影響Fig.3 Effect of drug lipid ratio and phosphorus bile ratio on encapsulation efficiency
圖5 磷膽比和生理鹽水體積對包封率的影響Fig.5 Effect of phosphorus/bile ratio and normal saline volume on encapsulation efficiency
圖4 藥脂比和生理鹽水體積對包封率的影響Fig.4 Effect of drug lipid ratio and normal saline volume on encapsulation efficiency
由表5可知,最佳制備工藝條件下,3次重復(fù)制備的青蒿素納米脂質(zhì)體包封率平均值為68.57%,平均粒徑為195.13 nm,PDI為0.19,Zeta電位為-12.10 mV。
表5 青蒿素納米脂質(zhì)體制備工藝驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果Tab.5 Validation test results of artemisinin nanoliposomes preparation process
透射電鏡觀察脂質(zhì)體的形態(tài),結(jié)果見圖6。
由圖6可知,制備的青蒿素納米脂質(zhì)體形態(tài)呈雙層球形,且脂質(zhì)體大小與馬爾文粒徑電位分析測定儀測定的結(jié)果一致。
圖6 青蒿素納米脂質(zhì)體透射電鏡觀察結(jié)果Fig.6 Transmission electron microscopic observation of artemisinin nanoliposomes
青蒿素的問世拯救了全球無數(shù)受瘧疾折磨的生命[17],青蒿素的抗寄生蟲和抗腫瘤作用是目前研究的兩大熱點(diǎn)[18-21]。但由于青蒿素具有溶解性和穩(wěn)定性,限制了其發(fā)展。納米脂質(zhì)體技術(shù)可延長藥物的半衰期,遞送藥物透過細(xì)胞膜進(jìn)入細(xì)胞[22-23],為青蒿素的進(jìn)一步發(fā)展提供了更多可能性。
青蒿素納米脂質(zhì)體制備工藝中使用最多的是薄膜分散法,關(guān)于不同制備方法對包封率的影響研究較少,大多數(shù)研究忽略了不同制備方法對包封率和粒徑的影響[16,24-25]。許賢會(huì)[26]制備阿維菌素脂質(zhì)體時(shí)聯(lián)合薄膜分散法與凍融法,發(fā)現(xiàn)改良薄膜分散法的包封率為90.36%,薄膜分散法為86.51%。王虹雅[27]采用薄膜分散法、注入法、逆向蒸發(fā)法以及改良后的逆向蒸發(fā)-薄膜分散法制備頭孢噻呋鈉納米脂質(zhì)體,發(fā)現(xiàn)注入法的包封率最高(74.2%),但粒徑比改良后的逆向蒸發(fā)-薄膜分散法大。
本試驗(yàn)通過比較常用的脂質(zhì)體制備方法,并將傳統(tǒng)乙醇注入法進(jìn)行改良。在傳統(tǒng)乙醇注入法的基礎(chǔ)上,利用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀和細(xì)胞破碎儀,結(jié)合超聲法和乙醇注入法。試驗(yàn)結(jié)果表明,改良乙醇注入法制備的脂質(zhì)體包封率較高、粒徑較小。通過使用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀將大部分有機(jī)溶劑快速蒸發(fā),降低環(huán)境溫度對注入法的影響,縮短制備時(shí)間,從而解決了傳統(tǒng)乙醇注入法因長時(shí)間攪拌導(dǎo)致青蒿素析出的問題,提高包封率。
使用細(xì)胞破碎儀進(jìn)行超聲可進(jìn)一步提高包封率,減小粒徑和PDI。白先群等[28]利用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)法制備青蒿琥脂納米脂質(zhì)體,其包封率為44.14%,經(jīng)超聲粉碎的脂質(zhì)體包封率達(dá)到74.10%,表明超聲法的融入能夠有效提高脂質(zhì)體包封率,與本試驗(yàn)結(jié)果一致。本研究進(jìn)一步通過單因素試驗(yàn)和響應(yīng)面法優(yōu)化乙醇注入法制備青蒿素納米脂質(zhì)體工藝,優(yōu)化工藝后制備的青蒿素納米脂質(zhì)體包封率達(dá)69.62%、粒徑為167.50 nm。陸慧等[29]使用薄膜分散法制備青蒿素脂質(zhì)體包封率大于43%,粒徑為194 nm,本研究中改良乙醇注入法明顯優(yōu)于該試驗(yàn)使用的薄膜分散法。余熒藍(lán)等[24]采用薄膜分散法制備青蒿素長循環(huán)脂質(zhì)體粒徑為113.3 nm,包封率為95.88%,分析其原因是該研究使用的磷脂純度高達(dá)98%,磷脂純度對脂質(zhì)體的包封率影響較大,長循環(huán)修飾和高純度磷脂提高了脂質(zhì)體包封率,減小了脂質(zhì)體平均粒徑。彭盛峰[30]研究發(fā)現(xiàn),磷脂中磷脂酰膽堿純度與姜黃素在脂質(zhì)體中包封率和熱穩(wěn)定性成正比,表明磷脂純度是影響脂質(zhì)體包封率的重要因素。本試驗(yàn)采用磷脂純度為60%,后續(xù)研究將進(jìn)一步提高大豆卵磷脂純度以提高青蒿素脂質(zhì)體包封率。
本試驗(yàn)通過比較不同的脂質(zhì)體制備方法,發(fā)現(xiàn)改良乙醇注入法明顯優(yōu)于薄膜分散法、逆向蒸發(fā)法和傳統(tǒng)乙醇注入法。通過單因素試驗(yàn)和Box-Benhnken響應(yīng)面優(yōu)化得出青蒿素納米脂質(zhì)體制備的最佳工藝條件為青蒿素與磷脂的質(zhì)量比1∶14.53,磷脂與膽固醇的質(zhì)量比5.42∶1,生理鹽水體積9.74 mL(此時(shí)磷脂質(zhì)量為250 mg)。此條件下制備的青蒿素納米脂質(zhì)體形態(tài)呈雙層球形,包封率68.57%,平均粒徑為195.13 nm,PDI為0.19,Zeta電位為-12.10 mV。
本研究優(yōu)化了青蒿素納米脂質(zhì)體制備工藝,可為青蒿素納米脂質(zhì)體在動(dòng)物寄生蟲疾病防控和寵物腫瘤治療方面的研究提供參考。