王晗,朱蓮,唐靚,楊亞冬,趙思雨,張文元
(杭州醫(yī)學(xué)院 1.公共衛(wèi)生學(xué)院;2.基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與法醫(yī)學(xué)院;3.檢驗醫(yī)學(xué)院、生物工程學(xué)院,浙江 杭州 310013 )
前列腺癌是老年男性常見疾病,正嚴(yán)重影響著我國男性患者的健康,尋求精準(zhǔn)的藥物治療很重要[1]。目前,超過90%的潛在抗癌藥物在臨床試驗中失敗,主要原因是目前用于藥物開發(fā)和個性化治療的臨床前模型不準(zhǔn)確[2],使用了過于簡化的體外模型,缺乏對腫瘤微環(huán)境的模擬。雖然2D 培養(yǎng)系統(tǒng)仍然是良好的高通量基礎(chǔ)研究的選擇,但它忽視了細胞自然的3D 微環(huán)境,難以達到高水平的生物學(xué)復(fù)雜性[3]。因而很有可能會提供治療效果的不準(zhǔn)確信息,使得假陽性化合物進入臨床試驗。在2D 培養(yǎng)條件下篩選為有效藥物,而臨床應(yīng)用往往無效[4],導(dǎo)致高退出率,浪費時間和金錢。體內(nèi)模型雖然更能反應(yīng)腫瘤的發(fā)生和行為機制以及藥物代謝,但是這些模型使用和維護更加昂貴,費時費力,同時涉及倫理問題。由于2D 培養(yǎng)的局限性和體內(nèi)模型的復(fù)雜性,刺激了體外三維腫瘤模型的開發(fā)[5]。3D 細胞培養(yǎng)可克服2D培養(yǎng)的限制,提高診療效果[6],正在成為藥物研究中有力的新型手段,成為介于二維培養(yǎng)和動物實驗之間的一種折中方法[7],以彌合兩者之間的鴻溝[8-9],可提高對生理或病理過程、藥物發(fā)現(xiàn)和篩選的認(rèn)識[10]。從而提高臨床前藥物研究的預(yù)測能力,改善藥物臨床轉(zhuǎn)化[11]?;|(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs)中的人基質(zhì)金屬蛋白酶2(matrix metalloproteinase-2,MMP-2)、人基質(zhì)金屬蛋白酶9(matrix metalloproteinase-9,MMP-9)降解Ⅳ型膠原,在腫瘤細胞的侵襲與轉(zhuǎn)移灶的形成中起重要作用[12]。為了改善晚期前列腺癌和骨骼受累患者的預(yù)后,需要更好地了解這一過程是如何啟動和調(diào)節(jié)的。本實驗采用ELISA法測定細胞培養(yǎng)上清液中MMP-2、MMP-9 蛋白表達含量變化,可更全面地捕捉前列腺癌侵襲與轉(zhuǎn)移的生物學(xué)特征及機制[13]。
3D 生物打印技術(shù)為建立模擬異質(zhì)腫瘤微環(huán)境模型提供了可能性,可以精確定位包括水凝膠、細胞和營養(yǎng)物質(zhì)在內(nèi)的生物墨水,以創(chuàng)建3D 體外培養(yǎng)環(huán)境[14]。臨床上前列腺癌患者常采取手術(shù)治療及放療、化療[15]。唑來膦酸是臨床上被廣泛應(yīng)用的化療藥物[16]。本實驗采用唑來膦酸作為藥敏試驗藥物。本實驗通過3D 生物打印技術(shù)構(gòu)建前列腺癌PC-3 細胞3D 模型,并進行唑來膦酸藥敏試驗,并與2D 細胞培養(yǎng)進行比較,利用ELISA 法測定培養(yǎng)上清液中MMP-2、MMP-9 蛋白表達含量變化。
前列腺癌PC-3 細胞(賽百慷);RPMI-1640培養(yǎng)基(Gibco);胎牛血清(Procell);海藻酸鈉(Sigma),明膠(Sigma),鈣黃綠素-AM(Solarbio),碘化丙啶(Solarbio)。唑來膦酸(Macklin),先用少量完全培養(yǎng)基溶解,并用0.22 μm 濾膜過濾后,再用完全培養(yǎng)基配置為工作濃度。人基質(zhì)MMP-2、MMP-9 兩種ELISA 試劑盒(晶美生物工程有限公司);3D 生物打印機(BioScaffolder2.1,德國GESIM 公司);熒光倒置顯微鏡、多功能酶標(biāo)儀(上海普丹光學(xué)儀器有限公司)。
1.2.1 前列腺癌細胞于2D 培養(yǎng)下藥敏試驗 前列腺癌PC-3 細胞使用含10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基培養(yǎng),每2~3 d 換液1 次,0.25%胰蛋白酶消化傳代。收集對數(shù)期生長的PC-3 細胞,制成5×104cells/mL 細胞懸液,100 μL/孔均勻接種于96 孔板。37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h 后,棄上清,分別加入不同濃度的唑來膦酸(25、50、100 μmol/L),100 μL/孔,每個濃度設(shè)3 個復(fù)孔。繼續(xù)培養(yǎng)48 h 后,每孔滴加10 μL CCK-8 溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,酶標(biāo)儀測定450 nm 處OD 值。細胞存活率=(加藥處理OD 值/未加藥處理OD 值)×100%。
1.2.2 3D 生物打印構(gòu)建前列腺癌模型 將1.2 g明膠粉末、1.6 g 海藻酸鈉粉末分別溶于10 mL 0.9% NaCl 溶液中。每天70 ℃、30 min 水浴1 次,連續(xù)3 d,對兩種溶液進行滅菌。將PC-3 細胞制成1×106cells/mL 細胞懸液,與明膠溶液和海藻酸鈉溶液以1∶2∶2 的體積比均勻混合為前列腺癌細胞/水凝膠,裝入無菌打印筒,2 000 r/min 離心2 min 消除氣泡,37 ℃水浴加熱5 min,連接內(nèi)徑0.17 mm 的打印槍頭,安裝到3D 生物打印機上。打印內(nèi)部結(jié)構(gòu)為網(wǎng)格狀的結(jié)構(gòu)體,為10 mm×10 mm×0.8 mm。該網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)體由圓柱狀微絲逐層交錯堆積形成。料桶溫度37 ℃,氣壓150 kPa,打印速度15 mm/s,無菌操作下擠壓制造。將打印好的前列腺癌細胞/水凝膠結(jié)構(gòu)體立即滴加5% CaCl2化學(xué)交聯(lián)5 min,即為3D 前列腺癌模型。PBS 輕輕洗滌2~3 次,放入24 孔板中培養(yǎng),每孔含1 mL 培養(yǎng)基,隔天換液。
1.2.3 3D 條件下檢測PC-3 細胞的藥物敏感性上述3D 前列腺癌模型培養(yǎng)1 d 后,棄上清,分別加入不同濃度的唑來膦酸(25、50、100 μmol/L),每個濃度設(shè)3 個復(fù)孔。繼續(xù)培養(yǎng)48 h 后,將Live/Dead 雙熒光染色劑4 μmol/L 鈣黃綠素-AM 和2 μmol/L 碘化丙啶混合并通過0.22 μm 過濾器過濾后,均勻滴加于3D 前列腺癌模型上,于37 ℃黑暗環(huán)境下孵育30 min,PBS 洗滌3 次。熒光倒置顯微鏡分別在488 nm(鈣黃綠素-AM 的激發(fā)波長)和543 nm(碘化丙啶的激發(fā)波長)處進行圖像采集。每個樣本選擇3 個隨機位置,同一位置、深度拍攝細胞,綠色為活細胞,紅色為死細胞,并合并活/死圖像。細胞存活率=(綠色染色細胞數(shù)/細胞總數(shù))×100%。
1.2.4 ELISA 試劑盒檢測2D/3D 細胞培養(yǎng)上清液中MMP-2 和MMP-9 的蛋白濃度 取對數(shù)期PC-3細胞,以2.5×104個/mL 的密度種于24 孔板中,1 mL/孔均勻接種,作為2D 前列腺癌模型。將1.2.2項通過3D 打印技術(shù)構(gòu)建的模型作為3D 前列腺癌模型將上述2D/3D 前列腺癌模型培養(yǎng)24 h 后,棄去原培養(yǎng)基,分別加入不同終濃度唑來膦酸0、5、10、20 μmol/L,加藥完畢后,于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)36 h。收集細胞上清液3 000 r/min 離心15 min,小心吸取上清液,分裝后凍存于-80 ℃。每個濃度均設(shè)5 個復(fù)孔。按照試劑盒說明書操作,檢測上清液中MMP-2 和MMP-9 的蛋白濃度。
使用GraphPad Prism 進行統(tǒng)計學(xué)處理。計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(),兩兩比較采用配對t檢驗;P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
當(dāng)唑來膦酸濃度25 μmol/L 作用于PC-3 細胞時,細胞受到一定程度的抑制。當(dāng)濃度50 μmol/L時,細胞出現(xiàn)明顯抑制。當(dāng)濃度100 μmol/L 時,PC-3 細胞大量死亡。見圖1 及表1。
表1 2D/3D 培養(yǎng)條件下不同濃度唑來膦酸對PC-3 細胞存活率的影響(n=3,,%)
表1 2D/3D 培養(yǎng)條件下不同濃度唑來膦酸對PC-3 細胞存活率的影響(n=3,,%)
圖2 表明,不同濃度唑來膦酸對3D 條件下前列腺癌細胞-水凝膠結(jié)構(gòu)體中PC-3 細胞增殖活性,隨著藥物唑來膦酸濃度的遞增,PC-3 活細胞數(shù)量逐漸減少,死細胞數(shù)量逐漸增多。結(jié)果顯示當(dāng)唑來膦酸50 μmol/L 時,PC-3 死亡細胞數(shù)量有所增多。當(dāng)唑來膦酸濃度100 μmol/L 作用時,PC-3 死亡細胞數(shù)量明顯增多。見圖2 及表1。
圖2 不同濃度唑來膦酸對3D 培養(yǎng)前列腺癌PC-3 細胞存活的影響(×100)
與2D 培養(yǎng)條件下相比,不同濃度的唑來膦酸對3D 培養(yǎng)條件下對PC-3 前列腺癌細胞的整體藥物敏感性顯著低于2D 培養(yǎng)條件下的藥物敏感性。即與2D 培養(yǎng)相比,3D 細胞培養(yǎng)的整體耐藥性顯著增加。見表1。
ELISA 檢測結(jié)果顯示,不同濃度唑來膦酸于2D/3D 條件下作用于PC-3 細胞36 h,均可導(dǎo)致MMP-2 和MMP-9 的分泌減少,并呈劑量依賴關(guān)系。與空白0 μmol/L 相比,各濃度組MMP-2 和MMP-9 的分泌減少。3D 培養(yǎng)上清液MMP-2 和MMP-9 蛋白分泌濃度的下降速度均明顯慢于2D 培養(yǎng)模型,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表2。
表2 唑來膦酸對PC-3 細胞培養(yǎng)上清液MMP-2、MMP-9 蛋白分泌的影響(n=5,,ng/mL)
表2 唑來膦酸對PC-3 細胞培養(yǎng)上清液MMP-2、MMP-9 蛋白分泌的影響(n=5,,ng/mL)
注:1)與0 μmol/L 相比,P<0.05;2)與2D 比較,P<0.05。
盡管在癌癥研究和藥物發(fā)現(xiàn)/開發(fā)方面有重大投資,但新癌癥藥物批準(zhǔn)率≤5%,大多數(shù)轉(zhuǎn)移性癌癥仍然無法治愈。絕大多數(shù)的癌癥新藥在臨床開發(fā)中失敗,因為缺乏治療效果和/或不可接受的毒性??拱┧幬镩_發(fā)成功率低的主要原因之一是臨床前模型未能充分概括人類癌癥的復(fù)雜性和異質(zhì)性。在體內(nèi)測試之前,大多數(shù)癌癥生物學(xué)家仍然依賴傳統(tǒng)的2D 單層培養(yǎng)技術(shù),在體外測試抗腫瘤藥物[17]。盡管易于處理,2D 培養(yǎng)的結(jié)果往往不能有效地轉(zhuǎn)化為體內(nèi)臨床前研究,絕大多數(shù)有前景的臨床前藥物對真正的腫瘤患者無效,從而延誤了成功治療方法的發(fā)現(xiàn)。這是因為2D 培養(yǎng)缺乏細胞與細胞、以及細胞與腫瘤微環(huán)境的接觸,這在腫瘤信號傳導(dǎo)和藥物反應(yīng)中很重要,從而導(dǎo)致與真實腫瘤相比惡性表型減少[18]。無論是2D 癌細胞培養(yǎng),還是動物實驗,都難以破解其藥物測試的局限性[19]。生物工程的進步尤其令人鼓舞的簡單經(jīng)濟的3D 技術(shù)快速發(fā)展,具體而言,三維培養(yǎng)最近獲得了腫瘤和基質(zhì)細胞模型,在模擬癌癥生態(tài)位和腫瘤微環(huán)境,以及與其之間的相互作用方面顯示了巨大的潛力。從這個意義上說,更好地重現(xiàn)體內(nèi)細胞環(huán)境的癌細胞3D 培養(yǎng)成為科學(xué)上準(zhǔn)確和低成本的癌癥模型,用于臨床前篩選和測試新藥候選藥物,然后再轉(zhuǎn)向昂貴和耗時的動物模型[20]。此外,盡管動物模型是臨床前研究的關(guān)鍵,但已經(jīng)實施了更嚴(yán)格的指令,以促進替代生物系統(tǒng)的使用。在此背景下,3D 腫瘤模型的開發(fā)和整合到臨床前研究工作流程尤其具有吸引力,在減少體內(nèi)模型數(shù)量的同時,促進臨床試驗治療學(xué)的進步和成功[21]。3D 腫瘤模型彌合了2D 細胞培養(yǎng)模型和體內(nèi)模型之間的一些差異,其中包括形態(tài)、極性、藥物滲透性和基因表達。可提高新型治療藥物的預(yù)測性能,并為個性化治療提供機會[22]。
3D 模式下藥物可能無法完全穿透3D 系統(tǒng)到達核心附近的癌細胞,與2D 培養(yǎng)系統(tǒng)相比,這些細胞對藥物具有更強的抵抗力,往往更好地預(yù)測體內(nèi)藥物反應(yīng)[23]。3D 模型通常顯示的藥物反應(yīng)行為比2D 培養(yǎng)更接近實際腫瘤[24]。因此,為癌癥研究增加另一個維度既不會取代現(xiàn)有的2D 細胞培養(yǎng),也不會取代動物試驗,但它肯定會有助于提高療效的可預(yù)測性[25-26]。由于化療藥物研發(fā)具有高成本和所需時間長的特性,應(yīng)繼續(xù)研發(fā)更加精準(zhǔn)的篩選平臺。利用3D 打印機構(gòu)建的3D 在腫瘤細胞模型,精準(zhǔn)性高,可重復(fù)連續(xù)打印,耗時短且開發(fā)成本較為低廉[27]。利用3D 生物打印機構(gòu)建的腫瘤模型有望成為2D 腫瘤細胞培養(yǎng)和動物實驗支架的橋梁。3D 生物打印水凝膠的優(yōu)勢在于能夠更為準(zhǔn)確地模仿細胞外基質(zhì)[28]。3D 環(huán)境中的前列腺癌細胞埋藏于不同層次的前列腺癌模型中,大部分細胞生長階段不同,處于3D 條件下的前列腺癌細胞與正常體內(nèi)癌細胞更為接近[17]。
3D 生物打印水凝膠前列腺癌模型為癌細胞提供了廣闊的空間,3D 前列腺癌模型中的腫瘤細胞成多層結(jié)構(gòu),可使癌細胞持續(xù)增長。同時3D 前列腺癌模型充分模擬了細胞外基質(zhì)與癌細胞之間的通訊功能,并造成細胞缺氧狀態(tài),增加了癌細胞增殖時間[21]。與2D 細胞培養(yǎng)評估藥物敏感性相比,3D 生物打印技術(shù)的使用使研究人員獲得更加準(zhǔn)確的結(jié)果。但當(dāng)前的3D 打印生物打印仍然受細胞類型和模型設(shè)計的限制,需要進一步的工作開發(fā)生物材料和打印方法來構(gòu)建可以更好地模仿動態(tài)生化和機械環(huán)境的腫瘤模型。
考慮到超過25 μmol/L 唑來膦酸對2D 培養(yǎng)的PC-3 細胞有較大的損傷,所以本實驗采用≤20 μmol/L唑來膦酸檢測其在2D/3D 條件下對PC-3 細胞培養(yǎng)上清液中MMP-2 和MMP-9 蛋白分泌的影響。實驗結(jié)果顯示,隨著唑來膦酸濃度的升高,PC-3 細胞存活率成下降趨勢。唑來膦酸的藥敏性在2D 和3D 條件下有顯著差異,在3D 環(huán)境中前列腺癌細胞的存活率顯著高于2D 環(huán)境。隨著唑來膦酸濃度的升高,3D 細胞培養(yǎng)上清液MMP-2 和MMP-9 蛋白分泌的下降速度均明顯慢于2D 培養(yǎng)模型??赡苁且驗?D 培養(yǎng)方法在能夠維持細胞生長的前提下,允許細胞與基質(zhì)之間的相互作用,可能更好地反映了真實的腫瘤微環(huán)境,比單層細胞培養(yǎng)更類似于體內(nèi)生長的形態(tài)。
綜上所述,使用3D 生物打印技術(shù)構(gòu)建的PC-3 前列腺癌細胞水凝膠結(jié)構(gòu)體(3D 前列腺癌模型)具有比2D 培養(yǎng)更高的耐藥性,細胞培養(yǎng)的空間維度及其與基質(zhì)之間的相互作用對藥物的耐藥性評估有顯著影響。