阮先樂
摘要:為了篩選水稻在低溫脅迫下的關(guān)鍵基因,從GEO數(shù)據(jù)庫下載水稻4個數(shù)據(jù)集中的70個樣本。利用在線分析程序GEO2R進行共同差異表達基因分析,并對這些差異表達基因進行GO、KEGG分析,構(gòu)建蛋白質(zhì)互作網(wǎng)絡(luò),對關(guān)鍵基因構(gòu)建熱圖。結(jié)果表明,獲得共同差異表達基因51個,其中上調(diào)表達基因1個,下調(diào)表達基因50個。上述基因的GO分析結(jié)果表明,其細(xì)胞組成主要集中在細(xì)胞、細(xì)胞要素和細(xì)胞器上;在分子功能上,上述基因的功能主要集中在結(jié)合、催化活性上;在生物過程中,上述基因的功能主要集中在細(xì)胞過程、代謝過程和生物調(diào)控上。KEGG信號通路分析結(jié)果表明,上述基因主要參與植物激素信號轉(zhuǎn)導(dǎo)等通路。在構(gòu)建的共同差異表達基因的蛋白質(zhì)網(wǎng)絡(luò)中,有29個節(jié)點。另外,得到10個關(guān)鍵基因、2個關(guān)鍵子網(wǎng)絡(luò)。研究結(jié)果為進一步研究水稻低溫脅迫關(guān)鍵基因奠定了基礎(chǔ),也有利于水稻低溫育種。
關(guān)鍵詞:水稻;GEO數(shù)據(jù)庫;低溫脅迫;共同差異表達基因;GO功能分析;KEGG信號通路分析
中圖分類號:S511.01;S126? 文獻標(biāo)志碼:A
文章編號:1002-1302(2024)03-0061-06
水稻(Oryza sativa L.)起源于熱帶與亞熱帶,是低溫敏感型作物。低溫嚴(yán)重影響了水稻的產(chǎn)量和品質(zhì),也限制了水稻向高海拔、高緯度地區(qū)擴展[1]。從全球范圍來看,目前有24個國家約1 500萬hm2的水稻受到低溫影響,在亞洲南部、東南部,約700萬hm2的土地由于受到低溫影響而無法種植水稻[2]。在我國的東北地區(qū),由于緯度較高、溫度偏低,每3~5年就會發(fā)生1次冷害[3]。因此,培育耐冷水稻品種具有十分重要的現(xiàn)實意義。
植物的耐冷性是多基因效應(yīng)的,其機理復(fù)雜,而利用傳統(tǒng)育種方式在改良植物耐冷性方面有限制。如果采用基因工程技術(shù)進行作物育種,是提高植物耐冷性比較有效的途徑[4]。水稻與低溫脅迫相關(guān)的基因可以分2類:第1類是功能基因,其編碼產(chǎn)物在水稻受到低溫脅迫時直接起到保護作用;第2類是調(diào)控基因表達的信號因子[5]。閆凌月等研究發(fā)現(xiàn),OsMADS25通過提高水稻在低溫脅迫下對活性氧的清除能力,進而提高其對低溫的耐受性[6]。Hur等研究發(fā)現(xiàn),水稻中合成脯氨酸的關(guān)鍵基因OsP5CS2對提高水稻的耐冷性十分重要[7]。Li等研究發(fā)現(xiàn),OsTPS1基因的超表達能夠提高轉(zhuǎn)基因水稻對干旱、鹽和低溫脅迫的耐受性[8]。陳能剛等研究發(fā)現(xiàn),在孕穗期、開花期,轉(zhuǎn)異戊烯基轉(zhuǎn)移酶基因(isopentenyl transferase ipt)水稻的相對電導(dǎo)率的變化量和葉綠體受低溫的危害較?。?]。張明星構(gòu)建的OsWRKY63水稻突變體具有較強的耐冷性,為水稻耐冷品種的選育提供了潛在基因資源和中間育種材料[10]。Wang等研究發(fā)現(xiàn),含有OsDREB1F基因的轉(zhuǎn)基因水稻對鹽、干旱和低溫的耐受性有所提高[11]。另有研究也發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)錄因子MYB、SNAC、TCP、PHD、bZIP與水稻的耐冷性有關(guān)[12-16]。
GEO數(shù)據(jù)庫(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/)是一個公共功能基因組數(shù)據(jù)存儲庫,目前儲存了100多個物種的約十億個基因表達數(shù)據(jù),科研人員借助基于WEB的工具,有效地探索、查詢和下載這些海量數(shù)據(jù),從而更好地分析和設(shè)計自己的試驗。本研究采用生物信息學(xué)技術(shù)分析GEO數(shù)據(jù)庫中與水稻低溫脅迫相關(guān)的一些數(shù)據(jù),篩選關(guān)鍵差異基因及其功能、信號通路,以期研究低溫脅迫對水稻生長發(fā)育影響的分子機制,從而為今后水稻耐冷性育種奠定良好基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 基因芯片數(shù)據(jù)的獲取與篩選
水稻低溫脅迫基因表達譜芯片數(shù)據(jù)來源于NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)的GEO數(shù)據(jù)庫?;趯Λ@得的初始數(shù)據(jù)的分析與試驗要求,采用GSE6901、GSE31874、GSE37940和GSE71680共4個數(shù)據(jù)集,選擇其中70個樣本進行數(shù)據(jù)分析(表1)。試驗分析時間是2022年10—12月,地點在周口師范學(xué)院。
1.2 方法
1.2.1 共同差異表達基因的篩選 首先利用GEO數(shù)據(jù)庫中的在線分析程序GEO2R對不同數(shù)據(jù)集的處理組、對照組進行分析,并以P<0.05、|log2 FC|≥2作為差異表達基因篩選的標(biāo)準(zhǔn)。然后,利用Evenn(http://www. ehbio.com/test/venn/#/)獲得4個數(shù)據(jù)集的共同差異表達基因。
1.2.2 共同差異表達基因的GO功能分析和KEGG信號通路分析 首先在UniProt數(shù)據(jù)庫(https://www.uniprot.org)中查詢各個共同差異表達基因的GO號,然后利用WEGO 2.0(https://wego.genomics.cn/)進行共同差異表達基因的GO功能分析。KEGG信號通路分析利用DAVID(https://david.ncifcrf.gov/home.jsp)、KOBAS (http://kobas.cbi.pku.edu.cn/)2個在線網(wǎng)站。
1.2.3 蛋白互作網(wǎng)絡(luò)的構(gòu)建 用STRING(https://cn.string-db.org/)和Cytoscape 3.9.1軟件構(gòu)建共同差異表達基因的蛋白質(zhì)互作網(wǎng)絡(luò)關(guān)系圖,用Cytoscape 3.9.1 Cytohubba插件篩選關(guān)鍵基因,用Cytoscape 3.9.1 MCODE篩選關(guān)鍵子網(wǎng)絡(luò)。
2 結(jié)果與分析
2.1 共同差異表達基因的篩選結(jié)果
利用4個數(shù)據(jù)集的70個樣本進行研究分析,按照規(guī)定的篩選標(biāo)準(zhǔn),從GSE6901中獲得1 107個基因,從GSE31874中獲得2 537個基因,從GSE71680中獲得184個基因,從GSE37940中獲得498個基因。之后,經(jīng)Evenn在線分析,獲得51個共同差異表達基因 (圖1),其中上調(diào)表達基因1個,是AK108642,下調(diào)表達基因50個(表2)。
2.2 共同差異表達基因的GO功能分析和KEGG信號通路分析
對共同差異表達基因的GO分析結(jié)果(圖2)表明,細(xì)胞組成主要集中在細(xì)胞、細(xì)胞要素、細(xì)胞器上,分別達到41.2%、41.2%、35.3%。在分子功能上,這些基因的功能主要集中在結(jié)合、催化活性上,分別達到62.7%、31.4%。在生物過程中,這些基因的功能主要集中在細(xì)胞過程、代謝過程、生物調(diào)控上,分別達到49.0%、41.2%、39.2%。KEGG信號通路分析結(jié)果(表3、圖3)表明,這些差異表達基因主要參與植物激素信號轉(zhuǎn)導(dǎo)、植物病原相互作用、類胡蘿卜素生物合成、脂肪酸延伸、RNA降解和次生代謝產(chǎn)物的生物合成等通路中。
2.3 共同差異表達基因的蛋白質(zhì)網(wǎng)絡(luò)構(gòu)建與關(guān)鍵基因的篩選
利用STRING數(shù)據(jù)庫與Cytoscape軟件對共同差異表達基因構(gòu)建蛋白質(zhì)網(wǎng)絡(luò),最終得到29個節(jié)點 (圖4-a)。另外,得到10個關(guān)鍵基因(圖4-b)、2個關(guān)鍵子網(wǎng)絡(luò)(圖4-c、圖4-d)。這10個關(guān)鍵基因的熱圖見圖5。
3 討論和結(jié)論
本研究基于GPL2025、GPL7344等2個平臺上的4個數(shù)據(jù)集的70個樣本進行基因表達數(shù)據(jù)的分析。最終篩選出共同差異表達基因51個,其中上調(diào)表達的基因只有1個,下調(diào)表達的基因50個,并用Cytoscape 3.9.1 Cytohubba篩選出10個關(guān)鍵基因。
KEGG信號通路分析結(jié)果表明,植物激素信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程是一個主要的信號通路過程。脫落酸(ABA)是植物體內(nèi)一種多功能植物激素,植物在非生物脅迫下,其體內(nèi)的ABA含量通常會升高,從而可以增強植物應(yīng)對干旱、鹽、低溫等非生物脅迫的能力[17]。一些早期的研究結(jié)果表明,內(nèi)源性ABA的積累是植物對低溫脅迫的響應(yīng)[18-20],另有研究證實,ABA處理能夠增強黃瓜、苜蓿的抗寒性[21-22]。在本研究中,植物激素信號轉(zhuǎn)導(dǎo)路徑涉及AK107854、AK120087、AK070649等3個基因,這3個基因都與轉(zhuǎn)錄因子TIFY有關(guān)。幾乎所有的OsTIFY基因?qū)Ω珊怠Ⅺ}度和低溫等有一種或多種非生物脅迫有反應(yīng)[23]。徐佳寧的研究發(fā)現(xiàn),幾乎所有蘋果MdUPL基因的表達都受到鹽、干旱或者低溫脅迫的誘導(dǎo),尤其是MdUPL7、MdUPL9在低溫脅迫下表達量顯著上調(diào)[24]。Ca2+已經(jīng)被證明是植物冷脅迫的第二信使,而編碼CML的基因參與了冷脅迫誘導(dǎo)的Ca2+信號途徑[25]。Hu等研究發(fā)現(xiàn),KCS與小麥的耐冷性有關(guān)[26]。YLS9(YELLOW-LEAF-SPECIFIC GENE 9)對ABA有響應(yīng)[27]。在擬南芥CBP60家族成員中,AtCBP60a、AtCBP60g、AtSARD1參與低溫誘導(dǎo)的水楊酸的合成[1]。Peres等研究發(fā)現(xiàn),EL2編碼了一種新型植物CDK(cyclin-dependent protein kinase)抑制劑,將細(xì)胞周期進程與生物、非生物應(yīng)激反應(yīng)聯(lián)系起來,而非生物脅迫如低溫和干旱誘導(dǎo)了EL2 mRNA的表達[28]。
GO功能分析結(jié)果也表明,這些共同差異基因的功能主要集中在細(xì)胞過程、代謝過程和生物調(diào)控上。利用Cytoscape 3.9.1-MCODE篩選得到2個關(guān)鍵子網(wǎng)絡(luò),這2個關(guān)鍵子網(wǎng)絡(luò)所涉及的7個基因都屬于重點關(guān)注的10個關(guān)鍵基因。結(jié)合以上分析,在水稻的耐冷育種中,可以重點考慮上面提到的10個關(guān)鍵基因。本研究為水稻的耐冷育種提供了一定的理論依據(jù),奠定了良好的基礎(chǔ)。
參考文獻:
[1]吉凌霄. OsTIL1和OsCBP60調(diào)控水稻苗期耐冷性信號轉(zhuǎn)導(dǎo)機制的研究[D]. 武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2022:1-2.
[2]Pradhan S K,Pandit E,Nayak D K,et al. Genes,pathways and transcription factors involved in seedling stage chilling stress tolerance in indica rice through RNA-Seq analysis[J]. BMC Plant Biology,2019,19(1):352.
[3]王海濤. CHS1調(diào)控水稻耐冷性的機制研究[D]. 長春:吉林大學(xué),2022:1-5.
[4]段俊枝,李 瑩,周 雷,等. 利用基因工程技術(shù)提高水稻耐冷性的研究進展[J]. 浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報,2015,27(4):705-712.
[5]徐青山,黃 晶,孫愛軍,等. 低溫影響水稻發(fā)育機理及調(diào)控途徑研究進展[J]. 中國水稻科學(xué),2022,36(2):118-130.
[6]閆凌月,張豪健,鄭雨晴,等. 轉(zhuǎn)錄因子OsMADS25提高水稻對低溫的耐受性[J]. 遺傳,202 3(11):1078-1087.
[7]Hur J H,Jung K H,Lee C H,et al. Stress-inducible OsP5CS2 gene is essential for salt and cold tolerance in rice[J]. Plant Science,2004,167(3):417-426.
[8]Li H W,Zang B S,Deng X W,et al. Overexpression of the trehalose-6-phosphate synthase gene OsTPS1 enhances abiotic stress tolerance in rice[J]. Planta,2011,234(5):1007-1018.
[9]陳能剛,余顯權(quán),趙德剛,等. 轉(zhuǎn)ipt基因水稻植株耐冷性研究[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報,2006,19(2):255-259.
[10]張明星. OsWRKY63調(diào)控水稻耐冷性的分子機制研究[D]. 長春:吉林大學(xué),2022:21-48.
[11]Wang Q Y,Guan Y C,Wu Y R,et al. Overexpression of a rice OsDREB1F gene increases salt,drought,and low temperature tolerance in both Arabidopsis and rice[J]. Plant Mol Biol,2008,67(6):589-602.
[12]Yang A,Dai X Y,Zhang W H. A R2R3-type MYB gene,OsMYB2,is involved in salt,cold,and dehydration tolerance in rice[J]. Journal of Experimental Botany,2012,63(7):2541-2556.
[13]Hu H H,You J,F(xiàn)ang Y J,et al. Characterization of transcription factor gene SNAC2 conferring cold and salt tolerance in rice[J]. Plant Mol Biol,2008,67:169-181.
[14]王孫婷. 水稻OsPCF6與OsTCP21基因冷脅迫應(yīng)答功能研究[D]. 哈爾濱:東北農(nóng)業(yè)大學(xué),2014:37-57.
[15]馬 卉. 水稻PHD-finger家族低溫誘導(dǎo)基因的鑒定與啟動子功能分析[D]. 合肥:安徽農(nóng)業(yè)大學(xué),2014:30-34.
[16]關(guān)可興. 水稻耐冷性相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子OsbZIP32的功能分析[D]. 長春:吉林大學(xué),2015:1-9.
[17]張明菊,朱 莉,夏啟中. 植物激素對脅迫反應(yīng)調(diào)控的研究進展[J]. 湖北大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),202 3(3):242-253.
[18]Daie J,Campbell W F. Response of tomato plants to stressful temperatures increase on abscisic acid concentrations[J]. Plant Physiol,1981,67(1):26-29.
[19]Eze J M O,Dumbroff E B,Thompson J E.Effects of temperature and moisture stress on the accumulation of abscisic acid in bean[J]. Physiologia Plantarum,1983,58(2):179-183.
[20]Lalk I,Drffling K. Hardening,abscisic acid,proline and freezing resistance in two winter wheat varieties[J]. Physiologia Plantarum,1985,63(3):287-292.
[21]Flores A,Grau A,Laurich F,et al. Effect of new terpenoid analogues of abscisic acid on chilling and freezing resistance[J]. Journal of Plant Physiology,1988,132(3):362-369.
[22]Mohapatra S S,Poole R J,Dhindsa R S.Abscisic acid-regulated gene expression in relation to freezing tolerance in alfalfa[J]. Plant Physiology,1988,87(2):468-473.
[23]Ye H Y,Du H,Tang N,et al. Identification and expression profiling analysis of TIFY family genes involved in stress and phytohormone responses in rice[J]. Plant Mol Biol,2009,71(3):291-305.
[24]徐佳寧. 蘋果UPL基因家族及轉(zhuǎn)錄組和蛋白質(zhì)組響應(yīng)非生物脅迫的研究[D]. 泰安:山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2017:42-94.
[25]陳文燁. 小麥鈣調(diào)素/類鈣調(diào)素基因的特征分析、克隆及功能研究[D]. 石家莊:河北科技大學(xué),2019:1-2.
[26]Hu X J,Zhang Z B,F(xiàn)u Z Y,et al. Significance of a β-ketoacyl-CoA synthase gene expression for wheat tolerance to adverse environments[J]. Biologia Plantarum,2010,54(3):575-578.
[27]Divi U K,El-Tahchy A,Vanhercke T,et al. Transcriptional and biochemical responses of monoacylglycerol acyltransferase-mediated oil synthesis and associated senescence-like responses in Nicotiana benthamiana[J]. Frontiers in Plant Science,2014,5:204-216.
[28]Peres A,Churchman M L,Hariharan S,et al. Novel plant-specific cyclin-dependent kinase inhibitors induced by biotic and abiotic stresses[J]. Journal of Biological Chemistry,2007,282(35):25588-25596.