田 甜 章慶國(guó)
田甜 綜述,章慶國(guó) 審校
[摘要]力學(xué)因素是軟骨組織工程中的重要影響因素之一。近年來(lái)的研究表明,力學(xué)作用可以刺激細(xì)胞外基質(zhì)的分泌,改變?nèi)S支架上培養(yǎng)的軟骨細(xì)胞的新陳代謝,從而促進(jìn)軟骨組織的生長(zhǎng)與重建。本文就力學(xué)因素對(duì)軟骨細(xì)胞增殖分泌的促進(jìn)、力學(xué)刺激的傳導(dǎo)機(jī)制及生物反應(yīng)器在軟骨組織工程中的應(yīng)用等方面做一綜述。
[關(guān)鍵詞]力學(xué)載荷;軟骨細(xì)胞;力學(xué)信號(hào);生物反應(yīng)器;軟骨組織工程
[中圖分類號(hào)]Q813 R318.01 [文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼]A [文章編號(hào)]1008-6455(2009)03-0405-03
Application of mechanical loading in vitro with constructing tissue-engineered cartilage
TIAN Tian1,ZHANG Qing-guo2
(1.Department of Plastic Surgery, Affiliated Zhongda Hospital, Southeast University, Nanjing 210009,Jiangsu,China; 2.Auricular Reconstructive Center of Plastic Surgery Hospital,Chinese Academy of Medical Science, Beijing 100144, China)
Abstract: Mechanical factor is one of the most important factors in cartilage tissue engineering. Recently,this research study have been revealed that mechanical loading can stimulate the release of extracellular matrix, changes the neo-metabolic activity of cultured chondrocytes in 3D scaffolds, and subsequently accelerate the growth and remodeling of cartilage tissue. The aim of review is to discuss the promotion of proliferation and secretion of chondrocytes by mechanical factor, mechanisms by which chondrocytes respond to mechanical signals, and the applications of bioreactor in cartilage tissue engineering.
Key words: mechanical loading; chondrocyte; mechanical signal; bioreactor; cartilage tissue engineering
多種原因造成的關(guān)節(jié)軟骨病變比較常見(jiàn),軟骨損傷后缺乏自愈能力,尋找軟骨缺損修復(fù)的方法一直是臨床的難題。近年來(lái),隨著組織工程學(xué)技術(shù)的發(fā)展,開(kāi)展體外構(gòu)建組織工程化軟骨的研究越來(lái)越被人們重視。適當(dāng)?shù)牧W(xué)刺激因素可以在一定程度上克服傳統(tǒng)軟骨細(xì)胞培養(yǎng)條件的不足,滿足細(xì)胞在可吸收聚合物中的營(yíng)養(yǎng)需要,減少處于中心部位的軟骨細(xì)胞由于營(yíng)養(yǎng)不良或代謝不暢而導(dǎo)致的生長(zhǎng)遲滯甚至死亡。因此,對(duì)軟骨細(xì)胞進(jìn)行三維立體培養(yǎng)時(shí),研究力學(xué)刺激對(duì)細(xì)胞的影響、力學(xué)信號(hào)的傳導(dǎo)機(jī)制以及應(yīng)用生物反應(yīng)器對(duì)體外培養(yǎng)的細(xì)胞大規(guī)模擴(kuò)增都將對(duì)軟骨組織工程的發(fā)展有著非常重要的意義。
1軟骨組織的生物力學(xué)性狀
軟骨由軟骨細(xì)胞和軟骨基質(zhì)構(gòu)成,軟骨細(xì)胞包埋于軟骨陷窩內(nèi),軟骨基質(zhì)由軟骨細(xì)胞產(chǎn)生和分泌。軟骨基質(zhì)主要由膠原和蛋白多糖組成。膠原纖維在軟骨的不同層面排列形成不同結(jié)構(gòu),具有很強(qiáng)的拉伸性能;蛋白多糖凝膠分散在膠原纖維網(wǎng)之間,本身不具有抗壓作用,但由于蛋白多糖有很強(qiáng)的吸水膨脹性,加上蛋白多糖上經(jīng)常有固定負(fù)電荷互相排斥,使它有充分?jǐn)U展傾向,而這個(gè)傾向卻被周圍的膠原纖維網(wǎng)約束了,最終兩者達(dá)到壓力平衡[1],使軟骨內(nèi)部在未受外力時(shí)就存在一個(gè)膨脹壓(滲透壓)。當(dāng)外力大于膨脹壓時(shí),引起液體外流,蛋白多糖濃度增加,滲透壓增大以對(duì)抗外壓力,同時(shí)將壓力傳遞給膠原纖維,使壓應(yīng)力轉(zhuǎn)化為張應(yīng)力。因此,外界因素如異常應(yīng)力導(dǎo)致蛋白多糖、膠原的減少、破壞或微細(xì)結(jié)構(gòu)的改變等,都會(huì)引起關(guān)節(jié)軟骨力學(xué)性能的變化。
2力學(xué)刺激的應(yīng)用
2.1 壓力:壓力是正常人體關(guān)節(jié)軟骨最主要的受力,可以將其看成是由一系列隨時(shí)間變化的動(dòng)態(tài)成分和隨時(shí)間緩慢發(fā)展的靜態(tài)成分組成[2],因而體外研究實(shí)驗(yàn)多采用的壓力方式有兩種:一種是持續(xù)靜壓力,另一種為動(dòng)態(tài)壓力。
靜壓力多為早期研究所關(guān)注的加載方式,它的施加使組織保持持續(xù)恒定的壓縮狀態(tài),但普遍發(fā)現(xiàn)基質(zhì)的合成將受到抑制。近年的研究對(duì)于靜壓力的作用效果有更深一步理解,Quinn 等[3]認(rèn)為靜壓力使培養(yǎng)基內(nèi)可溶物質(zhì)運(yùn)輸受限,而導(dǎo)致軟骨細(xì)胞代謝水平下降,Ragan 等[4]發(fā)現(xiàn)40h持續(xù)靜壓力只是促使新合成的蛋白多糖分子流失到培養(yǎng)基中,并不伴隨蛋白多糖分子的大小、成分的改變,認(rèn)為靜壓力不引起細(xì)胞代謝途徑的變化。
研究發(fā)現(xiàn),在循環(huán)動(dòng)態(tài)壓力作用下,軟骨組織內(nèi)四種物理特性發(fā)生變化:靜水壓、毛細(xì)液流及其引起的離子濃度與電荷變化、流能和組織與細(xì)胞變形。Huang 等[5]分組對(duì)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞施加周期性壓力(強(qiáng)度為壓縮10%、頻率為1 Hz,4 h/d),處理3、7、14天后, 發(fā)現(xiàn)TGF-β1 干預(yù)組、壓應(yīng)力干預(yù)組、TGF-β1與壓應(yīng)力復(fù)合干預(yù)組的TGF-β1 及軟骨分化標(biāo)志物的表達(dá), 均較靜止對(duì)照組增強(qiáng),提示壓應(yīng)力可能促進(jìn)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的軟骨性分化,并推斷其通過(guò)增強(qiáng)TGF-β1基因表達(dá)來(lái)調(diào)節(jié)。一些生長(zhǎng)因子也與力學(xué)刺激具有某種聯(lián)系,如生理范圍內(nèi)的正弦動(dòng)態(tài)壓力刺激可使胰島素樣生長(zhǎng)因子-1(IGF-1)對(duì)關(guān)節(jié)軟骨蛋白及蛋白多糖合成的促進(jìn)作用的時(shí)間提前,提示力學(xué)作用不但可以單獨(dú)刺激關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞,還可促進(jìn)IGF這種可溶性細(xì)胞生長(zhǎng)因子與相對(duì)分散的單個(gè)細(xì)胞的結(jié)合[6]。這也提示聯(lián)合應(yīng)用力學(xué)因素和生物活性因子優(yōu)于應(yīng)用單一方法,可以更有效地進(jìn)行體外軟骨組織構(gòu)建和體內(nèi)缺損的修復(fù)。
2.2 流體靜壓力:流體靜壓力,也有稱其為生理液態(tài)壓力,是生理活動(dòng)時(shí)對(duì)軟骨細(xì)胞影響最大的力[7]。實(shí)驗(yàn)表明選用的間歇性流體靜壓力負(fù)荷低于或近似于生理水平(1~10MPa),將不會(huì)引起細(xì)胞形變[8],并能提高軟骨細(xì)胞蛋白多糖和Ⅱ膠原的mRNA 的表達(dá)水平[9],對(duì)基質(zhì)的合成、積累有重要作用;而超過(guò)生理范圍的持續(xù)高流體靜壓力則會(huì)改變細(xì)胞骨架結(jié)構(gòu)、破壞高爾基體,導(dǎo)致正常的軟骨細(xì)胞向關(guān)節(jié)炎樣細(xì)胞變化[10]。
2.3 剪切力:流體剪切力是機(jī)體內(nèi)微環(huán)境重要組成部分。目前,流體剪切應(yīng)力模型有錐板流動(dòng)室、平行平板流動(dòng)室、板板流動(dòng)室、圓柱管流動(dòng)室和徑向流動(dòng)室。李洪鵬等[11]利用平行平板流動(dòng)室對(duì)人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞加載0.5Pa 的流體剪切力30min后,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞增殖能力提高,細(xì)胞活性增強(qiáng),S期細(xì)胞百分比較對(duì)照組增高約180%。Malaviya等[12]將3.5Pa的流體剪切力作用到單層培養(yǎng)的牛原代關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞上,96h后發(fā)現(xiàn)流體剪切力可明顯促進(jìn)軟骨細(xì)胞的增殖,施加剪切力組培養(yǎng)液中的TGF-β1是靜止組的3.5倍,培養(yǎng)液起到了有絲分裂原的作用;當(dāng)用抗TGF-β1抗體或抗TGF-β1II型受體抗體時(shí),這種作用被阻斷,但由于阻斷作用是部分的,可以推測(cè)流體剪切力促進(jìn)軟骨細(xì)胞的增殖是部分TGF-β1及其受體介導(dǎo)的。Waldman等[13]選用小幅度的剪切力(1%~3%應(yīng)變),先將軟骨細(xì)胞種植在生物陶瓷支架中,讓其自由生長(zhǎng)4 周后,再施加間歇性剪切力作用4周,結(jié)果發(fā)現(xiàn)8 周后的樣本對(duì)比未加力組,無(wú)論從厚度、脫水重量、壓縮模量、平衡模量還是蛋白多糖、膠原量都顯著增加,這可能與剪切力作用改變了細(xì)胞外基質(zhì)超微結(jié)構(gòu)有關(guān),有待進(jìn)一步研究。
2.4 離心力:離心力的施加主要是利用復(fù)合物在離心機(jī)內(nèi)高速旋轉(zhuǎn),從而對(duì)復(fù)合物產(chǎn)生離心力,該辦法不要求特殊設(shè)備,較為簡(jiǎn)單。將高密度軟骨細(xì)胞接種在離心管內(nèi),離心力可能發(fā)揮了類似生物體內(nèi)應(yīng)力的作用,可以使軟骨細(xì)胞按固定方向進(jìn)行空間排列,在支架材料中形成一定的初期分布,有利于營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的交換和細(xì)胞的增殖代謝??浊迦萚14]將軟骨細(xì)胞種植在脫細(xì)胞軟骨基質(zhì)材料上,并移入離心管中培養(yǎng),每天取出離心管置于離心機(jī)上離心3次,每次離心時(shí)間20min,相對(duì)離心力約為200g,復(fù)合物培養(yǎng)至8 周后與靜態(tài)培養(yǎng)組比較發(fā)現(xiàn),離心力的作用主要是能刺激軟骨細(xì)胞分泌GAG和Ⅱ型膠原增加,并使該類軟骨組織具一定層次排列結(jié)構(gòu),而靜態(tài)培養(yǎng)的類軟骨組織排列較為紊亂。劉天一等[15]研究離心力和搖床力對(duì)三維支架軟骨誘導(dǎo)劑培養(yǎng)的豬骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞向軟骨分化的影響,發(fā)現(xiàn)第4 周和8 周時(shí),兩組實(shí)驗(yàn)組的細(xì)胞材料復(fù)合物形狀保持良好,細(xì)胞生長(zhǎng)情況、軟骨陷窩形成、蛋白多糖沉積及Ⅱ型膠原合成均明顯優(yōu)于對(duì)照靜止組,從而表明種子細(xì)胞體外構(gòu)建組織工程化軟骨中, 施加力學(xué)刺激也可以促進(jìn)軟骨組織成熟。
2.5 張力:在生物體運(yùn)動(dòng)過(guò)程中, 細(xì)胞組織常常受到動(dòng)態(tài)的牽拉應(yīng)力作用, 體內(nèi)牽拉力是通過(guò)細(xì)胞外基質(zhì)傳遞到細(xì)胞的,因此張應(yīng)力學(xué)模型通常是以彈性膜為基底材料,利用模板、液體或氣體對(duì)基底膜施加可控的位移或壓力作用, 引起培養(yǎng)膜發(fā)生彈性變形, 從而使粘附于膜上的細(xì)胞受到相應(yīng)的張應(yīng)變作用。Wright等[16]對(duì)體外培養(yǎng)的人長(zhǎng)骨關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞施以牽張力后發(fā)現(xiàn),細(xì)胞cAMP及蛋白多糖的合成增加。低頻率、低強(qiáng)度的牽張力可促進(jìn)軟骨細(xì)胞合成分泌蛋白多糖,而高頻率、高強(qiáng)度的牽張力則抑制蛋白多糖的合成和分泌[17]。所以適當(dāng)?shù)膹埩纱龠M(jìn)單層培養(yǎng)軟骨細(xì)胞的增生和分泌,這與體內(nèi)研究的結(jié)果一致。
3力學(xué)載荷可能的信號(hào)傳導(dǎo)機(jī)制
力學(xué)刺激體外細(xì)胞所引起一系列的變化,是通過(guò)一定的途徑, 將細(xì)胞外力學(xué)信號(hào)傳導(dǎo)至細(xì)胞內(nèi),從而啟動(dòng)或調(diào)節(jié)相關(guān)的基因蛋白表達(dá)分布。國(guó)內(nèi)外大量研究表明,機(jī)械載荷刺激細(xì)胞組織后,其基本的機(jī)械力學(xué)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制與調(diào)節(jié)過(guò)程具有相同信號(hào)途徑,主要為3 條:通過(guò)細(xì)胞外基質(zhì)信號(hào)-跨膜整合素-細(xì)胞骨架構(gòu)像改變對(duì)信號(hào)的傳遞,激活細(xì)胞膜力敏感離子通道介導(dǎo)細(xì)胞內(nèi)鈣離子水平升高,觸動(dòng)G蛋白偶聯(lián)酪氨酸激酶磷酸化與促分裂原活化蛋白激酶調(diào)節(jié)的級(jí)聯(lián)反應(yīng), 各信號(hào)分子之間存在網(wǎng)絡(luò)狀調(diào)控, 最后導(dǎo)致轉(zhuǎn)錄因子的激活。戚孟春等[18]用過(guò)高的牽拉應(yīng)力(4 000με,0.5Hz)系統(tǒng)干預(yù)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞后,激光共聚焦顯微鏡觀察到細(xì)胞骨架F-actin解聚和重排, 并誘發(fā)部分細(xì)胞發(fā)生凋亡,表明細(xì)胞骨架是骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞傳導(dǎo)力學(xué)信號(hào)通路中重要的一環(huán)。整合素對(duì)于許多類型的細(xì)胞粘著于細(xì)胞外基質(zhì)蛋白具有重要作用,是介導(dǎo)力學(xué)的重要物質(zhì),因?yàn)樗鼈兡軌蚺c肌動(dòng)蛋白結(jié)合的蛋白質(zhì)相互作用,通過(guò)細(xì)胞骨架來(lái)與細(xì)胞外基質(zhì)產(chǎn)生聯(lián)系。Holmvall等[19]在軟骨細(xì)胞中及軟骨肉瘤細(xì)胞中均可分離到α1β1和α2β1整合素,能夠表現(xiàn)與軟骨特異性基質(zhì)成分II型膠原的高親和性;在力學(xué)刺激下,基質(zhì)成分II型膠原及整合素mRNA均明顯升高,而β1整合素亞單位并未改變,α5或α2整合素有所升高,α2β1整合素與II型膠原結(jié)合位點(diǎn)很可能介導(dǎo)了力學(xué)刺激。
4生物反應(yīng)器的應(yīng)用
目前體外軟骨構(gòu)建技術(shù)主要存在組織“空心”、力學(xué)強(qiáng)度差以及難以精確塑形等問(wèn)題。生物反應(yīng)器的出現(xiàn)及其在軟骨組織工程中的應(yīng)用為解決這些問(wèn)題帶來(lái)了希望[20],主要是因?yàn)樗苣M體內(nèi)微環(huán)境,為細(xì)胞生長(zhǎng)傳輸物質(zhì),并可施加各種力學(xué)刺激,彌補(bǔ)體外培養(yǎng)條件的不足。因此,生物反應(yīng)器已逐漸成為軟骨組織工程的一個(gè)重要研究領(lǐng)域。
4.1 機(jī)械攪拌式生物反應(yīng)器:該生物反應(yīng)器的支架-細(xì)胞復(fù)合物懸在反應(yīng)器的瓶塞上,支架周圍加入培養(yǎng)液,位于培養(yǎng)瓶底部的磁棒不斷攪拌,每隔數(shù)日更換培養(yǎng)液以保持營(yíng)養(yǎng)。這種生物反應(yīng)器的剪力梯度與營(yíng)養(yǎng)酸堿度變化曲線及不均勻的物體交換率可影響細(xì)胞生長(zhǎng)。然而,這樣的培養(yǎng)體系能使CO2和O2的濃度達(dá)到一個(gè)類似正常的平衡狀態(tài),避免靜態(tài)培養(yǎng)中O2的降低和CO2的聚集[21]。
4.2 灌注式生物反應(yīng)器:該生物反應(yīng)器用繼發(fā)性液流替代機(jī)械性攪拌,通過(guò)蠕動(dòng)移液泵使培養(yǎng)液循環(huán)流動(dòng)。其中的細(xì)胞處于一個(gè)動(dòng)態(tài)層流場(chǎng)且時(shí)刻保持恒定營(yíng)養(yǎng)供應(yīng)的環(huán)境,同時(shí)還避免了常規(guī)一次性全部換液帶來(lái)的培養(yǎng)環(huán)境的驟變[22]。與振蕩式生物反應(yīng)器相比,它所培養(yǎng)的細(xì)胞密度可提高20倍。目前,這一裝置多用于三維材料-細(xì)胞復(fù)合體的培養(yǎng)。
4.3 間歇性生理液壓生物反應(yīng)器:該生物反應(yīng)器是先將軟骨細(xì)胞或軟骨塊置于培養(yǎng)皿中,其中加滿完全培養(yǎng)液,將培養(yǎng)皿上蓋雙層壓力膜,排出培養(yǎng)皿內(nèi)空氣,使壓力膜與培養(yǎng)皿貼緊至不留氣泡。將該培養(yǎng)皿置于圓柱形壓力室中,壓力和頻率由計(jì)算機(jī)控制下的壓力閥來(lái)調(diào)控。Carver等[23]發(fā)現(xiàn)間歇性生理液態(tài)壓力可明顯促進(jìn)聚羥基乙酸網(wǎng)上培養(yǎng)的馬軟骨細(xì)胞細(xì)胞外基質(zhì)的合成與分泌,其蛋白多糖的含量至少是無(wú)壓力培養(yǎng)下的兩倍。
4.4 旋轉(zhuǎn)式微重力生物反應(yīng)器:該生物反應(yīng)器由兩個(gè)同軸的容器構(gòu)成,內(nèi)瓶靜止,允許氣體通過(guò)瓶壁與外瓶交換;外瓶瓶壁封閉,兩瓶中間為培養(yǎng)液。通過(guò)調(diào)節(jié)外瓶轉(zhuǎn)速,使離心力和重力平衡,達(dá)到模擬體內(nèi)細(xì)胞所處的微重力狀態(tài)。該系統(tǒng)使細(xì)胞在支架材料內(nèi)分布較均勻、分化狀態(tài)較好且細(xì)胞密度較大[24]。在軟骨細(xì)胞體外擴(kuò)增的初期,由于軟骨細(xì)胞和支架材料尚未復(fù)合緊密,力學(xué)作用會(huì)使復(fù)合不牢的軟骨細(xì)胞脫落而無(wú)法達(dá)到軟骨細(xì)胞-支架材料共同培養(yǎng),體外擴(kuò)增的目的。而該裝置破壞性應(yīng)力相對(duì)較小或無(wú)明顯破壞性應(yīng)力,可以克服上述問(wèn)題,并產(chǎn)生大的軟骨,且組織結(jié)構(gòu)及成分都接近正常軟骨,可以用于修復(fù)關(guān)節(jié)軟骨的缺損。
5小結(jié)
模擬正常體內(nèi)的力學(xué)環(huán)境對(duì)于體外構(gòu)建組織工程化軟骨起到非常重要的作用。利用動(dòng)態(tài)壓力、流體靜壓力、剪切力、離心力、張力都能提供不錯(cuò)的力學(xué)刺激,尤其是生物反應(yīng)器的設(shè)計(jì)與應(yīng)用更加優(yōu)化了培養(yǎng)環(huán)境,提高了工程化軟骨的質(zhì)量。雖然力學(xué)因素的作用機(jī)制還不十分明確,構(gòu)建的組織工程化軟骨的生物力學(xué)性能仍低于正常體內(nèi)軟骨的力學(xué)性質(zhì), 但隨著研究的深入和科學(xué)技術(shù)的發(fā)展, 用組織工程技術(shù)來(lái)修復(fù)軟骨缺損及病變的時(shí)代已不再遙遠(yuǎn)。
[參考文獻(xiàn)]
[1]孟維春,董啟榕. 關(guān)節(jié)軟骨壓縮特性的實(shí)驗(yàn)研究[J].醫(yī)用生物力學(xué), 2003,18(1):28-33.
[2]Kim YJ, Sah RL, Grodzinsky A. Mechanical regulation of cartilage biosynthetic behavior: physical stimuli[J]. Arch Biochem Biophys, 1994, 311(1): 1-12.
[3]Quinn TM, Studer C, Grodzinsky AJ, et al. Preservation and analysis of nonequilibrium solute concentration distributions within mechanically compressed cartilage explants[J]. J Biochem Biophys Methods, 2002, 52(2): 83-95.
[4]Ragan PM, Chin VI, Hung HH, et al. Chondrocyte extracellular matrix synthesis and turnover are influenced by static compression in a new alginate disk culture system[J]. Arch Biochem Biophys, 2000, 383(2): 256-264.
[5]Charles Huang C-Y, Hagar KL, Frost LE, et al. Effects of cyclic compressive loading on chondrogenesis of rabbit bone-marrow derived mesenchymal stem cells[J]. Stem Cells, 2004, 22: 313-323.
[6]Borassar LJ, Grodzinsky AJ, Frank EH, et al.The effect of dynamic compression on the response of articular cartilage to insulin-like growth facror-I[J].J Orthop Res, 2001, 19(1): 11-17.
[7]Bachrach NM, Mow VC, Guilak F. Incompressibility of the solid matrix of articular cartilage under high hydrostatic pressures[J]. J Biomech, 1998, 31(5): 445-451.
[8]Toyoda T, Seedhom BB, Kirkham J, et al. Upregulation of aggrecan and type II collagen mRNA expression in bovine chondrocytes by the application of hydrostatic pressure[J]. Biorheology, 2003, 40(1-3): 79-85.
[9]Ikenoue T, Trindade MC, Lee MS, et al. Mechanoregulation of human articular chondrocyte aggrecan and type II collagen expression by intermittent hydrostatic pressure in vitro[J]. Orthop Res, 2003, 21(1): 110-116.
[10]Fioravanti A, Benetti D, Coppola G, et al. Effect of continuous high hydrostatic pressure on the morphology and cytoskeleton of normal and osteoarthritic human chondrocytes cultivated in alginate gels[J]. Clin Exp Rheumatol, 2005, 23(6): 847-853.
[11]李洪鵬,許建中,周強(qiáng),等. 流體剪切應(yīng)力對(duì)人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞增殖及細(xì)胞周期的影響[J]. 第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2005,27(16): 1637-1639.
[12]Malaviya P, Nerem RM. Fluid-induced shear stress stimulates chondrocyte proliferation partially mediated via TGF-β1[J]. Tissue Eng,2002,8(4): 581-590.
[13]Waldman SD, Spiteri CG, Grynpas MD. Long-term intermittent shear deformation improves the quality of cartilaginous tissue formed in vitro[J]. J Orthop Res,2003,21(4): 590-596.
[14]孔清泉,楊志明,項(xiàng)舟. 離心力在體外構(gòu)建組織工程軟骨中的作用[J]. 中華實(shí)驗(yàn)外科雜志,2005,22(3): 281-283.
[15]劉天一,周廣東,苗春雷,等. 力學(xué)刺激影響豬骨髓基質(zhì)干細(xì)胞體外軟骨形成的初步研究[J].中華醫(yī)學(xué)雜志,2004,84(23): 1997-2002.
[16]Wright M, Jobanputra P, Bavington C, et al. Effects of intermittent pressure-induced strain on the electrophysiology of cultured human chondrocytes: Evidence for the presence of stretch-activated membrane ion channels[J]. Clin Sci, 1996, 90(1): 61-71.
[17]Fukuda K, Asada S, Kumano F, et al. Cyclic tensile stretch on bovine articular chondrocytes inhibits protein kinase C activity[J]. J Lab Clin Med, 1997, 130(2): 209-215.
[18]戚孟春,胡靜,鄒舒娟,等. 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞和顱骨成骨細(xì)胞在張應(yīng)力下細(xì)胞骨架的改變[J]. 華西口腔醫(yī)學(xué)雜志, 2005, 23(2): 110-113.
[19]Holmvall K, Camper L, Johansson S, et al. Chondrocyte and chondrosarcoma cell integrins with affinity for collagen type Ⅱand their response to mechanical stress[J]. Exp Cell Res, 1995, 221(2): 496-503.
[20]Lee DA, Martin I. Bioreactor culture techniques for cartilage-tissue engineering[J]. Methods Mol Biol,2004,238: 159-170.
[21]Gooch KJ, Kwon JH, Blunk T, et al. Effects of mixing intensity on tissue-engineered cartilage[J]. Biotechnol Bioeng,2001,72(4): 402-407.
[22]Sittinger M, Schultz O, Keyszer G, et al. Artificial tissues in perfusion culture[J]. Int J Artif Org,1997,20: 57-62.
[23]Carver SE, Heath CA. Semi-continuous perfusion system for delivering intermittent physiological pressure to regenerating cartilage[J]. Tissue Eng,1999,5:1-11.
[24]Qiu QQ, Ducheyne P, Ayyaswamy PS, 3D bone tissue engineered with bioactive microsphere in simulated microgravity[J]. In Vitro Cell Dev Biol Anim,2001,37(3):157-165.
[收稿日期]2008-12-27[修回日期]2009-02-11
編輯/張惠娟