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多重PCR方法快速檢測4種主要致腹瀉性大腸埃希菌

2010-01-11 12:36徐義剛崔麗春李蘇龍姜艷春謝曉峰劉新亮
微生物學(xué)雜志 2010年3期
關(guān)鍵詞:埃希菌大腸基因組

徐義剛,崔麗春,李蘇龍,姜艷春,謝曉峰,劉新亮

(1.黑龍江出入境檢驗(yàn)檢疫局檢驗(yàn)檢疫技術(shù)中心,黑龍江哈爾濱 150001;2.東北林業(yè)大學(xué),黑龍江哈爾濱 150040)

大腸埃希菌(Escherichia coli)由Escherich于1885年首次發(fā)現(xiàn),起初一直被認(rèn)為是腸道菌群的正常組成部分,屬于條件致病菌。20世紀(jì)中葉,人們認(rèn)識(shí)到某些特殊血清型大腸埃希菌對人和動(dòng)物有致病性,尤其對嬰兒和幼畜(禽),常引起嚴(yán)重腹瀉和敗血癥[1-2]。與人類疾病有關(guān)的大腸埃希菌,統(tǒng)稱為致瀉性大腸埃希菌(diarrheogenicE.coli),根據(jù)生物學(xué)特性主要分為4類[3-4]:產(chǎn)腸毒性大腸埃希菌(ETEC)、腸致病性大腸埃希菌(EPEC)、腸侵襲性大腸埃希菌(EIEC)和腸出血性大腸埃希菌(EHEC)。致瀉性大腸埃希菌作為人畜共患性致病菌,其研究具有重要的公共衛(wèi)生意義。ETEC主要感染兒童和旅游者,發(fā)展中國家尤為嚴(yán)重,被污染的水和食物是主要傳染來源,主要致病因素是大腸埃希菌腸毒素LT或ST[5],感染的臨床癥狀輕度時(shí)為溫和性腹瀉,嚴(yán)重時(shí)可發(fā)展為霍亂樣腹瀉癥狀[6];EPEC是嬰兒腹瀉的主要病原菌,具有高度傳染性,嚴(yán)重者可致死,病原菌主要感染腸上皮細(xì)胞或組織培養(yǎng)細(xì)胞表面形成特征性的組織病理學(xué)損傷[7];EIEC主要引起大齡兒童和成年人腹瀉,曾爆發(fā)流行,臨床癥狀為水樣腹瀉,有時(shí)呈現(xiàn)痢疾癥狀[8];EHEC主要血清型是O157:H7,引起散發(fā)性或暴發(fā)性出血性結(jié)腸炎,可產(chǎn)生志賀毒素樣細(xì)胞毒素[9]。目前我國針對致瀉性大腸埃希菌的檢測方法主要采用國標(biāo)法(GB 4789.6-1994),經(jīng)樣品→增菌→分離培養(yǎng)→革蘭染色鏡檢/生化及菌落觀察/生化反應(yīng)試驗(yàn)/腸毒素檢查等,操作復(fù)雜繁瑣,檢測時(shí)間長,完成整個(gè)檢測程序需要4~7 d,且檢測單一。本文結(jié)合致瀉性大腸埃希菌的危害性和感染的普遍性,建立一種多重PCR方法,實(shí)現(xiàn)一次性完成4種主要致瀉性大腸埃希菌的檢測。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株 大腸埃希菌ATCC 25922、腸出血性大腸埃希菌O157:H7 ATCC 35150、產(chǎn)腸毒素大腸埃希菌ATCC 35401、侵襲性大腸埃希菌ATCC 43893、腸致病性大腸埃希菌ATCC 11775、阪崎腸桿菌ATCC 51329、單核細(xì)胞增生李斯特菌ATCC 19111、綿羊李斯特菌ATCC 33090、英諾克李斯特菌ATCC 19119、威爾斯李斯特菌ATCC 35897、西爾李斯特菌ATCC 35967、類志賀單胞菌ATCC 14030、嗜水氣單胞菌ATCC 7966、空腸彎曲菌ATCC 33560、普通變形桿菌ATCC 49027、豬霍亂沙門菌ATCC 10708、福氏志賀菌ATCC 12022、金黃色葡萄球菌ATCC 29213、溶血性鏈球菌CMCC 32121、霍亂弧菌ATCC 14035、副溶血性弧菌ATCC 27519、溶藻性弧菌ATCC 33839、創(chuàng)傷弧菌ATCC 33149和小腸結(jié)腸炎耶爾森菌ATCC 9610,分別由美國典型菌種保藏中心(ATCC)和中國醫(yī)學(xué)微生物菌種保藏管理中心(CMCC)提供。

1.1.2 試劑 TaqDNA Polymerase,NEB公司;細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒,大連TaKaRa公司;復(fù)合增菌培養(yǎng)基BPW,北京蘭伯瑞生物技術(shù)公司。

1.2 方法

1.2.1 引物設(shè)計(jì) 根據(jù)GenBank中發(fā)布的EHEC O157:H7 O-antigen基因、ETEC LT基因、EPECbfpA基因和EIEC invasion plas mid基因,利用引物設(shè)計(jì)軟件Pr imer 5.0設(shè)計(jì)4對多重PCR引物,詳細(xì)信息見表1,引物由大連TaKaRa公司合成。

表1 PCR引物序列Table 1 The primers sequence of PCR

1.2.2 細(xì)菌培養(yǎng)及基因組DNA提取 將試驗(yàn)菌株分別接種于5 mL復(fù)合增菌培養(yǎng)基BPW中,按照每種細(xì)菌最適生長溫度培養(yǎng)過夜,吸取1 mL培養(yǎng)菌液,利用細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒進(jìn)行提取DNA,詳見說明書。

1.2.3 單一PCR反應(yīng)體系及條件的優(yōu)化 PCR反應(yīng)體系為25μL,不含Mg2+的Buffer(10×)2.5 μL,將Mg2+、dNTP、TaqDNA Polymerase和引物配制成不同濃度的組合,用去離子水補(bǔ)充至25μL。Mg2+、dNTP、TaqDNA Polymerase和引物的濃度范圍依次為:Mg2+濃度范圍1.0~8 mmol/L,以0.5 mmol/L遞增;dNTPs濃度范圍0.1~0.8 mmol/L,以0.05 mmol/L遞增;TaqDNA Polymerase濃度范圍0.5~3.5 U,以0.5 U單位遞增;引物濃度范圍0.1~0.6μmol/L,以0.1μmol/L遞增。采用矩陣法進(jìn)行對比試驗(yàn)。反應(yīng)條件:95℃5 min,95℃20 s,為了提高PCR反應(yīng)的靈敏度和特異性,根據(jù)設(shè)計(jì)的引物退火溫度,以55℃為基礎(chǔ),以0.5℃遞加,直至62℃,時(shí)間30 s,進(jìn)行35個(gè)循環(huán)。

1.2.4 多重PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化 多重PCR反應(yīng)體系為25μL,以提取的致病菌基因組作為模板,進(jìn)行多重PCR擴(kuò)增,反應(yīng)條件及體系優(yōu)化參考單重PCR方法進(jìn)行。

1.2.5 多重PCR方法的特異性 采用試劑盒法提取試驗(yàn)菌株的基因組DNA,利用所建立的多重PCR方法進(jìn)行擴(kuò)增,驗(yàn)證本方法的特異性。

1.2.6 多重PCR方法的敏感性 測定所提取的4種致瀉性大腸埃希菌基因組DNA濃度,然后分別進(jìn)行10倍遞進(jìn)系列稀釋,從每種致病菌基因組DNA的每個(gè)稀釋度中各取1μL混合,以此作為模板進(jìn)行多重PCR擴(kuò)增,以確定其敏感性。

1.2.7 驗(yàn)證試驗(yàn) 將建立的多重PCR檢測方法應(yīng)用于檢驗(yàn)檢疫實(shí)踐工作中,檢測124份肉類、奶類制品及人工污染樣品等,其結(jié)果與國標(biāo)法(GB 4789.6-1994)進(jìn)行比較,驗(yàn)證該方法的可靠性。

2 結(jié)果與分析

2.1 多重PCR反應(yīng)條件的確定

首先對單一PCR反應(yīng)體系進(jìn)行了優(yōu)化,經(jīng)對比分析確定單一PCR反應(yīng)體系中的Mg2+濃度為2.5 mmol/L、dNTP濃度為0.2 mmol/L、TaqDNA Polymerase用量為1.5 U、引物濃度為0.2μmol/L,在該反應(yīng)體系下的PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果見圖1。在單一PCR反應(yīng)體系擴(kuò)增的基礎(chǔ)上,優(yōu)化了多重PCR反應(yīng)體系及條件,最佳反應(yīng)體系為:Mg2+濃度為4 mmol/L、dNTP濃度為0.3 mmol/L、TaqDNA Polymerase用量為2.0 U,PCR擴(kuò)增引物濃度比例為ETEC:EHEC:EIEC:EPEC=1:1:1.3:1。反應(yīng)條件為:95℃5 min、95℃15 s、60℃20 s、72℃60 s,進(jìn)行35個(gè)循環(huán),多重PCR擴(kuò)增產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果見圖2。

圖1 致瀉性大腸埃希菌單一PCR檢測結(jié)果Fig.1 The detection results of diarrheogenicEscherichia coliby single PCR

圖2 4種致瀉性大腸埃希菌多重PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.2 The amplification results of four diarrheogenic Escherichia colibymulti-PCR

2.2 多重PCR的特異性

利用多重PCR方法對表2中24株細(xì)菌進(jìn)行特異性檢測試驗(yàn),結(jié)果顯示所試腸出血性大腸埃希菌、腸侵襲性大腸埃希菌、腸致病性大腸埃希菌和產(chǎn)腸毒性大腸埃希菌等4種致瀉性大腸埃希菌均為陽性,說明本研究所建立的多重PCR方法具有高度特異性。

表2 多重PCR特異性結(jié)果Table 2 The specificity results ofmulti-PCR assay

2.3 多重PCR的敏感性

將已知濃度的4種致瀉性大腸埃希菌基因組DNA進(jìn)行梯度稀釋,從每個(gè)稀釋度中各取1μL混合,以此作為模板進(jìn)行多重PCR擴(kuò)增,以確定其敏感性。結(jié)果表明,該多重PCR方法能同時(shí)檢測到128 pg的EHEC、EPEC、EIEC和ETEC的基因組DNA,其中EHEC和ETEC的最低基因組DNA檢出濃度為32 pg。

2.4 多重PCR的實(shí)踐應(yīng)用

利用多重PCR方法對124份肉類、奶類制品及人工污染食品樣品進(jìn)行檢測,同時(shí)采用國標(biāo)進(jìn)行驗(yàn)證,結(jié)果見表3。多重PCR方法共檢出15份陽性樣本,與國標(biāo)檢測結(jié)果符合率為100%,說明所建立的多重PCR方法具有良好的可靠性。

表3 多重PCR方法實(shí)際應(yīng)用結(jié)果Table 3 The application ofmulti-PCR assay in practice

3 討 論

食品安全是全球性的重大公共衛(wèi)生問題,已報(bào)道的食源性疾病致病因子有250多種,其中腸道致病菌是食源性疾病中最常見的生物致病因素。據(jù)世界衛(wèi)生組織(WHO)報(bào)道[10],全球每年因食源性微生物污染引起的腹瀉病例達(dá)數(shù)億起,死亡的0~15歲兒童約170萬人。目前,致瀉性大腸埃希菌仍是引起腹瀉的重要病原之一,特別是嬰幼兒腹瀉,在我國及國外腹瀉患者中致瀉性大腸埃希菌檢出率、構(gòu)成比、優(yōu)勢類型及血清型不同[11-15],給臨床診斷帶來不便。

在此情況下,采用多重PCR方法一次性檢測出單一病原感染或混合感染,對保障食品安全和人類健康具有現(xiàn)實(shí)意義。因此,本研究針對4種主要的致瀉性大腸埃希菌相關(guān)基因設(shè)計(jì)了4對特異性引物,通過體系及反應(yīng)條件優(yōu)化,建立了一步反應(yīng)同時(shí)檢測4種致瀉性大腸埃希菌的多重PCR方法。檢驗(yàn)檢疫實(shí)踐證實(shí),該方法比常規(guī)的細(xì)菌分離鑒定敏感度高,檢測快速,可用于臨床病例的快速診斷和流行病學(xué)調(diào)查,具有一定的實(shí)用性。

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