戴功建,金黑鷹,夏建國
(1.南京醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院胃腸專業(yè),江蘇南京,210029;
2.南京中醫(yī)藥大學(xué)第三附屬醫(yī)院全國肛腸醫(yī)療中心,江蘇南京,210029)
疾病動物模型是當(dāng)代生物醫(yī)學(xué)研究中一種便于認識客觀事物的非常重要的實驗方法和手段。通過模型的間接性研究,可以有意識地改變那些在自然條件下不可能或不容易控制的因素,以觀察模型的反應(yīng)結(jié)果,并將研究結(jié)果推及于人類疾病,從而有助于更有效地揭示人類疾病的本質(zhì)和發(fā)展規(guī)律。
結(jié)直腸癌是消化系統(tǒng)比較常見的惡性腫瘤,隨著人們生活水平的提高、飲食結(jié)構(gòu)的變化、發(fā)病率呈逐漸上升趨勢,嚴(yán)重威脅人類健康,因此對結(jié)直腸癌發(fā)病機制及相應(yīng)治療措施的研究以成為目前的主要任務(wù)之一,這就要求必須建立最能體現(xiàn)人體結(jié)直腸癌特點的動物模型。常用的結(jié)直腸癌動物模型有腫瘤細胞株皮下接種模型、“基因敲除”模型和原位移植模型。
腫瘤細胞株皮下接種模型,建立容易、觀察方便,是一種非常常用的模型,但是由于皮下接種模型無法出現(xiàn)結(jié)直腸癌常見的一些生物學(xué)特性如出現(xiàn)肝轉(zhuǎn)移、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移等,因此在腫瘤的治療研究方面、特別是治療機理研究方面的價值較小。根據(jù)結(jié)直腸癌發(fā)生的分子生物學(xué)基礎(chǔ)建立的結(jié)直腸癌的“基因敲除模型”在理論上來講是一種比較理想的模型,目前已建立 Apc“基因敲除模型”、hMSH2、hMSH6、hMLH1、hPSM1 等“基因敲除模型”[1-2],但是這些小鼠腫瘤的發(fā)生過程與HNPCC結(jié)直腸癌有較大差異,目前尚無法應(yīng)用于腫瘤藥物的篩選和治療的研究,其應(yīng)用價值需要進一步的探索,模型需要進一步的優(yōu)化。原位移植模型是將腫瘤組織通過手術(shù)種植在體內(nèi)的相應(yīng)部位,從而進行相應(yīng)部位腫瘤研究的方法,原位移植模型是目前廣泛應(yīng)用的一種腫瘤模型。
原位移植模型就是將腫瘤組織通過外科手術(shù)操作移植在裸鼠的相應(yīng)部位,從而產(chǎn)生于在體腫瘤相類似的腫瘤生物學(xué)特性。Hoffmann等建立了結(jié)腸癌的原位移植模型(SOI)模型,作者在20只移植了人結(jié)腸癌組織的裸鼠中觀察到了腹腔種植轉(zhuǎn)移、腹膜轉(zhuǎn)移、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移和肝臟轉(zhuǎn)移[3-4],因此原位移植模型是一種建立比較容易而且腫瘤的生物學(xué)特性與在體腫瘤較為一致,是進行結(jié)直腸癌生物學(xué)研究和腫瘤藥物篩選研究的理想模型。Rashidi,等建立結(jié)腸癌肝轉(zhuǎn)移模型,將從結(jié)腸癌肝轉(zhuǎn)移的患者中取腫瘤組織,然后種植在肝臟中,在該模型中除發(fā)現(xiàn)腫瘤在肝臟中生長外,還發(fā)現(xiàn)肝門轉(zhuǎn)移和腹腔淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移,因此作者認為肝轉(zhuǎn)移腫瘤可以通過肝門向肝臟以外轉(zhuǎn)移[5]。但是切開腹腔進行結(jié)腸癌原位移植有一定的死亡率,而且腫瘤在體內(nèi)不容易進行觀察,chen等通過肛門注射催CT-26細胞方法建立了直腸癌的原位移植模型,并對腫瘤進行而且應(yīng)用于直腸癌的研究,有便于觀察的優(yōu)點[6],但是該模型由于腫瘤生長比較迅速,因此可能很快快發(fā)生結(jié)腸梗阻,因此其臨床使用受到一定的限制。使用外科切除的組織塊建立結(jié)腸癌原位移植模型,由于腫瘤直接來源于腫瘤患者的組織,因此其腫瘤的生長符合該患者腫瘤的特點,避免了原腫瘤完整性的破壞,保留了瘤細胞之間、瘤細胞與間質(zhì)之間、瘤細胞與宿主之間的相互作用,這種聯(lián)系是恰恰是腫瘤細胞完整表達其惡性特性尤其是轉(zhuǎn)移特性所必需的,瘤組織塊的結(jié)直癌原位移植成瘤率及轉(zhuǎn)移率均明顯提高,且晚期出現(xiàn)惡病質(zhì)及廣泛轉(zhuǎn)移等表現(xiàn),其特點與臨床患者頗為相似,是目前最為理想的模型。但是使用組織塊建立的腫瘤模型,每個研究者所采取的腫瘤標(biāo)本不同,因此在治療和腫瘤發(fā)病機理研究中差異較大,可比性不強。Okazaki等[7]通過向皮下和結(jié)腸粘膜下注射細胞株建立原位模型,但是在進行腫瘤細胞注射時由于壓力較大,容易使腫瘤細胞沿淋巴管進行轉(zhuǎn)移而出現(xiàn)淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移。Takahashi等[8]首先在直腸處注射腫瘤細胞,然后使用刺激性的藥物誘發(fā)動物產(chǎn)生結(jié)腸炎,動物在一周后可以發(fā)生直腸癌,但是由于炎癥的刺激所產(chǎn)生的腫瘤可能與原發(fā)腫瘤存在一定的差異。目前多數(shù)學(xué)者使用細胞株進行原位移植模型的建立和研究,首先在使用細胞株在皮下接種建立皮下接種的腫瘤,待腫瘤生長在一定的大小后移植在相應(yīng)的部位。使用細胞株建立原位移植模型的好處在于細胞株其遺傳背景比較明確,不同研究者使用相同的細胞進行研究,可比性強,缺點在于使用了細胞株產(chǎn)生的腫瘤無法形成腫瘤腺管樣結(jié)構(gòu)。目前已有使用Lovo細胞、HCT-116細胞、HT-29細胞建立的腫瘤模型[9-11],而且在結(jié)直腸癌的研究中的確有了重要的成果。Marchal F等發(fā)現(xiàn)使用肝高轉(zhuǎn)移細胞株HT-29可以非常穩(wěn)定的建立結(jié)腸癌肝轉(zhuǎn)移模型,國內(nèi)zhang等利用人結(jié)直腸癌細胞株SW480同樣獲得了裸鼠結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移模型[12]。
由于原位移植模型具有在體腫瘤類似或相同的特征,因此使用原位移植模型是進行治療研究的理想的動物模型。結(jié)腸癌的原位移植模型在腫瘤藥物的篩選、腫瘤的生物治療和結(jié)直腸癌腫瘤病例方面的研究中發(fā)揮重要的作用。
Onogawa等[13]在VEGF-C和 VEGF-D表達研究中發(fā)現(xiàn),VEGF-C和VEGF-D在皮下接種模型中表達低而在原位移植模型中表達較高,作者認為VEGF-C和VEGF-D表達可能與組織的微環(huán)境有關(guān),因此作者認為研究VEGF-C和VEGFD的表達需要使用原位移植模型。在體外研究中PDGF-R不能移植腫瘤細胞的生長,Kitadai等研究在體抑制PDGF-R表達是否可以抑制腫瘤細胞的生長,作者在裸鼠的盲腸和脾臟出注射了KM12SM結(jié)腸癌細胞,并使用 CPT-11作為對照,研究發(fā)現(xiàn)抑制PDGF-R表達可以抑制結(jié)直腸癌細胞的增殖和轉(zhuǎn)移。該結(jié)果與體外試驗研究不同,提示體外試驗研究與在體研究的結(jié)果存在差異,也提示使用原位移植模型可能使結(jié)直腸癌的研究更為理想[14]。Zhao等使用原位移植模型進行腫瘤轉(zhuǎn)移新基因的研究,發(fā)現(xiàn)使用原位移植模型所建立的腫瘤模型能蓋好的反映腫瘤的特點,得到更為可靠的結(jié)論[15]。
在治療研究中,原位移植模型同樣具有重要的作用。Wang等使用原位移植模型對西樂葆對結(jié)直腸癌的移植作用和其機理進行研究,發(fā)現(xiàn)西樂葆通過抑制COX-2,PGE(2)合成和VEGF and MMP-2 mRNA表達達到抑制腫瘤細胞生長的作用[16-17]。
結(jié)直腸癌的原位移植模型在結(jié)直腸癌的治療中發(fā)揮重要的作用,但是由于原位移植模型腫瘤位于體內(nèi),觀察不是十分方便,另外在結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移方面研究門脈注射腫瘤細胞似乎要優(yōu)于原位移植[18]。部分學(xué)者使用MRI和超聲對腫瘤進行檢測[19],但是由于腫瘤位置較深,不十分精確。Hoffman等建議了熒光動物模型,在腫瘤組織中首先倒入紅色或綠色的熒光,然后使用熒光對腫瘤進行觀察,是腫瘤觀察的精確程度顯著的提高[20-21];國內(nèi)于曉 等采用活體成像技術(shù)監(jiān)測穩(wěn)定高表達熒光酶報告基因的腫瘤細胞在小鼠體內(nèi)行長及轉(zhuǎn)移情況,為腫瘤治療的藥物研發(fā)提供新的有用工具[22]。但是使用熒光仍不能解決反復(fù)取樣的要求,特別是在腫瘤發(fā)病和治療的研究中,能反復(fù)取樣是進行研究的基礎(chǔ),因此需要開發(fā)更為可靠、理想的動物模型,國內(nèi)Jing等利用盲腸造口研究結(jié)直腸原位移植模型在這方面作了很好的嘗試[23]。
[1]唐偉軍,吳志勇,喻德洪.結(jié)直腸癌的實驗?zāi)P蚚J].中華實驗外科雜志,2000,17(4):380.
[2]Arbeit J M,Hirose R.Murine mentors:transgenic and knockout models of surgical disease[J].Ann Surg,1999,229:21.
[3]Hoffman R M.Orthotopic metastatic(M etaMouse)models for discovery and development of novel chemotherapy[J].Methods Mol Med,2005,111:297.
[4]Rashidi B,Gamagami R,Hoffman R M,et al.An orthotopic mouse model of remetastasis of human colon cancer liver metastasis[J].Clin Cancer Res,2000,6(6):2556.
[5]Rashidi B,Gamagami R,Sasson A,et al.An orthotopic mouse model of remetastasis of human colon cancer liver metastasis[J].Clin Cancer Res,2000,6(6):2556.
[6]Chen Y,Chang K J,Hwang L H,et al.Establishment and characterization of a rectal cancer model in mice:application to cytokine gene therapy[J].Int J Colorectal Dis,2002,17(6):388.
[7]Okazaki K,Nakayama Y,Shibao K,et al.Establishment of a human colon cancer cell line displaying highly metastatic activity[J].Int J Oncol,2000,17(1):39.
[8]Takahashi T,Morotomi M,Nomoto K.A novel mouse model of rectal cancer established by orthotopic implantation of colon cancer cells[J].Cancer Sci,2004,95(6):514.
[9]Kondo Y,Arii S,Mori A,et al.Enhancement of angiogenesis,tumor growth,and metastasis by transfection of vascular endothelial growth factor into LoVo human colon cancer cell line[J].Clin Cancer Res,2000,6(2):622.
[10]Dimas K,Hatziantoniou S,Tseleni S,et al.Sclareol induces apoptosis in human HCT116 colon cancer cells in vitro and suppression of HCT116 tumor growth in immunodeficient mice[J].Apoptosis,2007,12(4):685.
[11]Liang H,Zhan H J,Wang BG,et al.Expression change of apoptosis-associated genes after hyperthermia,chemotherapy and radiotherapy in human colon cancer-transplanted nude mice[J].Zhonghua Wei Chang Wai Ke Za Zhi,2008,11(3):270.
[12]Zhang Y F,Liu L,Ding Y Q.Isolation and characterization of human colorectal cancer cell subline with unique metastatic potential in the liver[J].Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao,2007,27(2):126.
[13]Onogawa S,Kitadai Y,Tanaka S,et al.Regulation of vascular endothelial growth factor(VEGF)-C and VEGF-D expression by the organ microenvironment in human colon carcinoma[J].Eur J Cancer,2004,40(10):1604.
[14]Kitadai Y,Sasaki T,Kuwai T,et al.Targeting the expression of platelet-derived growth factor receptor by reactive stroma inhibits growth and metastasis of human colon carcinoma[J].Am J Pathol,2006,169(6):2054.
[15]Zhao L,Liu L,Wang S,et al.Differential proteomic analysis of human colorectal carcinoma cell lines metastasis-associated proteins[J].J Cancer Res Clin Oncol,2007,133(10):771.
[16]Wang L,Chen W,Xie X,He Y,Bai X.Celecoxib inhibits tumor growth and angiogenesis in an orthotopic implantation tumor model of human colon cancer[J].Exp Oncol,2008,30(1):42.
[17]Kitadai Y,Sasaki T,Kuwai T,et al.Targeting the expression of platelet-derived growth factor receptor by reactive stroma inhibits growth and metastasis of human colon carcinoma[J].Am J Pathol,2006,169(6):2.
[18]Thalheimer A,Otto C,Bueter M,et al.Tumor cell dissemination in a human colon cancer animal model:orthotopic implantation or intraportal injection[J].Eur Surg Res,2009,42(3):195.
[19]Xie Q,Liang B L,Jiang X Q.Hepatic metastasis of human colon carcinoma:establishment of a nude mouse model and its magnetic resonance imaging[J].Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao,2008,28(1):97.
[20]Liu L,Zhang Q L,Jiang H Y,et al.Establishment of a whole-body visualization model of orthotopically implanted colorectal carcinoma and metastasis model in nude mice[J].Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao,2007,27(8):1161.
[21]Hoffman R M.Orthotopic transplant mouse models with green fluorescent protein-expressing cancer cells to visualize metastasis and angiogenesis[J].Cancer M etastasis Rev,1998-1999,17(3):271.
[22]徐元基,周 濤,于曉 ,等.采用活體成像技術(shù)監(jiān)測腫瘤生長及轉(zhuǎn)移模型的建立[J].中國實驗動物學(xué)報,2008,16(1):19.
[23]Jin H,Liu X,Li V K,et al.A simple colostomy implantation model for evaluating colon cancer[J].Int J Colorectal Dis,2009,24(1):41.