謝燕，陳海琴，張秋香，田豐偉，陳永泉，張灝，陳衛(wèi)

江南大學(xué)食品學(xué)院，無(wú)錫 214122

一種新型IIa類(lèi)細(xì)菌素的克隆表達(dá)和活性鑒定

謝燕，陳海琴，張秋香，田豐偉，陳永泉，張灝，陳衛(wèi)

江南大學(xué)食品學(xué)院，無(wú)錫 214122

NB-C1為一種潛在的IIa類(lèi)細(xì)菌素基因，為實(shí)現(xiàn)其在大腸桿菌中的高效可溶表達(dá)，首先構(gòu)建了NB-C1蛋白與綠色熒光蛋白 (GFP) 的融合表達(dá)載體 pIVEX 2.4d-GFP-NB-C1，然后將構(gòu)建的表達(dá)載體轉(zhuǎn)化大腸桿菌 BL21(DE3) pLysS，經(jīng)誘導(dǎo)表達(dá)后，重組蛋白GFP-NB-C1以可溶的形式存在于細(xì)胞內(nèi)。經(jīng)Ni-NTA親和層析柱分離純化后，重組融合蛋白的純度大于95%，產(chǎn)量達(dá)36.1 mg/L。抑菌試驗(yàn)表明，純化后的重組蛋白對(duì)單核細(xì)胞增生李斯特氏菌具有明顯的抑制作用。

IIa類(lèi)細(xì)菌素，融合表達(dá)，蛋白質(zhì)純化，活性鑒定

采用傳統(tǒng)的菌種篩選法尋找新的細(xì)菌素，存在乳酸菌出發(fā)菌株細(xì)菌素產(chǎn)量低，分離純化困難等問(wèn)題[3]。我國(guó)有豐富的乳酸菌資源，隨著乳酸菌基因組序列報(bào)道的日趨增多，利用基因搜索工具尋找新的細(xì)菌素已成為一條快速有效的途徑。根據(jù)細(xì)菌素氨基酸的保守序列及其結(jié)構(gòu)基因上下游的特征編碼基因，如調(diào)節(jié)基因、轉(zhuǎn)運(yùn)基因、免疫基因等的特征，利用生物信息學(xué)工具設(shè)計(jì) IIa類(lèi)細(xì)菌素基因的搜索比對(duì)腳本，在已測(cè)序乳酸菌基因組數(shù)據(jù)庫(kù)中搜索潛在的IIa類(lèi)細(xì)菌素基因，然后通過(guò)比對(duì)分析，排除錯(cuò)誤基因和已報(bào)道的乳酸菌細(xì)菌素基因，從而確定新的細(xì)菌素基因。目前已從乳酸菌基因組中鑒定出多種細(xì)菌素基因[4-6]。Diep等[7]從一株戊糖片球菌中得到一條新的類(lèi)片球菌素基因，在沙克乳桿菌中表達(dá)并獲得較高的產(chǎn)量和活性。國(guó)外已有關(guān)于細(xì)菌素異源表達(dá)的研究[8-10]，其重組表達(dá)宿主以大腸桿菌居多，其中不乏理想的研究成果[11-14]。利用基因搜索工具篩選細(xì)菌素基因并結(jié)合基因工程重組表達(dá)，定能加強(qiáng)新型高效乳酸菌細(xì)菌素的開(kāi)發(fā)和應(yīng)用，這對(duì)食品安全和保藏具有重要意義。

IIa類(lèi)細(xì)菌素通常含有37~48個(gè)氨基酸殘基，并且擁有相似的序列，如表1所示，N端具有共同的YGNGVXaaC保守序列 (Xaa為出現(xiàn)頻率高的殘基)，保守區(qū)含有2個(gè)半胱氨酸殘基，可形成1個(gè)二硫鍵，研究表明此二硫鍵對(duì)抑制李斯特氏菌是必需的[15]；序列的 C端只有 34%~80.5%的相似性。本研究中的NB-C1基因通過(guò)生物信息學(xué)方法從乳酸菌基因組數(shù)據(jù)庫(kù)中篩選得到，與IIa類(lèi)乳酸菌細(xì)菌素同源性較高，人工合成其成熟肽的全基因序列，并命名為NB-C1 (GenBank Accession No. HQ 015716)。NB-C1的成熟肽序列含有42個(gè)氨基酸殘基，序列為KYYGNGVHCGKKTCYVDWGQATASIGKIIVNGW TQHGPWAHR。其N(xiāo)端保守區(qū)序列為YGNGVHC，且N端含有2個(gè)半胱氨酸，可形成1個(gè)二硫鍵，C端序列則與已知的 IIa類(lèi)細(xì)菌素同源性較差。根據(jù)NB-C1氨基酸組成的特點(diǎn)，可推斷其很可能為一種潛在的新型 IIa類(lèi)細(xì)菌素基因。在抗菌肽重組表達(dá)研究中，為避免其對(duì)宿主的毒性作用，多采用融合表達(dá)方式[11-14,16-17]。我們?cè)鴮?NB-C1基因進(jìn)行直接表達(dá)，但未能檢測(cè)到目的蛋白及其活性，推測(cè)該細(xì)菌素對(duì)宿主可能具有一定的毒性作用，另外目的蛋白為約5 kDa的小肽，易被內(nèi)源蛋白酶降解[18-19]，穩(wěn)定性較差，故本文嘗試融合表達(dá)。本文以綠色熒光蛋白 (GFP) 作為融合載體蛋白，在大腸桿菌中進(jìn)行融合表達(dá)并獲得足夠的活性重組蛋白GFP-NB-C1。這為 NB-C1生物學(xué)性質(zhì)的進(jìn)一步研究提供了物質(zhì)基礎(chǔ)，以及為新型 IIa類(lèi)細(xì)菌素的發(fā)掘和研究提供了一種新的路徑和方法。

表1 Ⅱa類(lèi)乳酸菌細(xì)菌素的氨基酸序列分析[2]Table 1 Sequence alignment of class Ⅱ a bacteriocins[2]

1 材料與方法

1.1 菌株和質(zhì)粒

T載體 pGM-T購(gòu)自天根生化有限科技 (北京)公司；表達(dá)載體pIVEX 2.4d購(gòu)自Roche公司；質(zhì)粒pEGFP-C1由本實(shí)驗(yàn)室提供；表達(dá)菌株 Escherichia coli BL21(DE3) pLysS購(gòu)自Stratagene公司；抑菌試驗(yàn)的指示菌單核細(xì)胞增生李斯特氏菌 Listeria monocytogenes，由江南大學(xué)食品學(xué)院姚衛(wèi)蓉實(shí)驗(yàn)室提供。

1.2 主要試劑和儀器

DNA 聚合酶和 T4 DNA連接酶購(gòu)自寶生物工程 (大連) 有限公司；限制性內(nèi)切酶購(gòu)自NEB公司；GeneRuler DNA Leader Mix Maker購(gòu)自Fermentas公司；低分子量標(biāo)準(zhǔn)蛋白Marker購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；三 (羥甲基) 氨基甲烷 (Tris)、N-[三(羥甲基) 甲基]甘氨酸 (Tricine)、質(zhì)粒抽提試劑盒、氨芐青霉素以及氯霉素均購(gòu)自上海生工生物工程有限公司；膠回收試劑盒購(gòu)自北京索來(lái)寶科技有限公司；PCR儀購(gòu)自Gene Technologies有限公司；電泳儀和凝膠成像系統(tǒng)購(gòu)自BIO-RAD公司；引物由上海博尚公司合成；DNA測(cè)序由北京華大基因有限公司完成。

1.3 方法

常規(guī)分子生物學(xué)操作參照《分子克隆手冊(cè)》[20]進(jìn)行。

1.3.1 NB-C1的全基因合成

根據(jù)NB-C1基因序列設(shè)計(jì)寡核苷酸鏈，合成多條具有互補(bǔ)序列的引物 (表 2)，然后通過(guò)重疊延伸PCR 技術(shù)反應(yīng)合成其全基因序列 (GenBank Accession No. HQ 015716)。將NB-C1的成熟片段與pGM-T載體連接，構(gòu)建克隆載體pGMT-NB-C1。

表2 NB-C1全基因合成的寡核苷酸片段引物Table 2 Primers of NB-C1 oligonucleotides for gene synthesis

1.3.2 融合表達(dá)載體的構(gòu)建

根據(jù)pIVEX 2.4d質(zhì)粒多克隆區(qū)的酶切位點(diǎn)進(jìn)行引物設(shè)計(jì)，GFP和NB-C1的融合順序?yàn)镚FP-NB-C1，其N(xiāo)端為質(zhì)粒自帶的6×His標(biāo)簽編碼序列。

以測(cè)序正確的pGMT-NB-C1為模板，利用表3中引物P1和P2進(jìn)行PCR擴(kuò)增，產(chǎn)物回收、純化后進(jìn)行 NcoⅠ/XmaⅠ雙酶切，酶切產(chǎn)物連接至經(jīng)同樣酶切的pIVEX 2.4d載體，構(gòu)建重組表達(dá)載體pIVEX 2.4d-NB-C1。同樣，以pEGFP-C1為模板，利用P3和P4引物擴(kuò)增GFP片段，經(jīng)過(guò)NotⅠ/NcoⅠ酶切和連接反應(yīng)，構(gòu)建重組載體pIVEX 2.4d-GFP-NB-C1，轉(zhuǎn)化E. coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞，篩選陽(yáng)性克隆，并進(jìn)行PCR鑒定和酶切鑒定。將基因測(cè)序正確的重組質(zhì)粒pIVEX 2.4d-GFP-NB-C1轉(zhuǎn)化表達(dá)宿主E. coli BL21(DE3)pLysS，構(gòu)建重組菌 BL21(DE3)pLysS/ pIVEX2.4d-GFP-NB-C1。

表3 NB-C1基因PCR擴(kuò)增引物列表Table 3 PCR primers of NB-C1

1.3.3 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)和SDS-PAGE檢測(cè)

將重組菌株 BL21(DE3)pLysS/pIVEX2.4d-GFPNB-C1劃線培養(yǎng)，挑取單菌落接種于 LB (Luria-Bertani) 培養(yǎng)基中 (含100 mg/L氨芐青霉素和34 mg/L氯霉素)，37 ℃振蕩培養(yǎng)至OD600為0.6，加入IPTG至終濃度0.8 mmol/L，20 ℃、200 r/min誘導(dǎo)培養(yǎng)20 h。離心收集菌體并重懸于PBS緩沖液中 (0.1 mol/L，pH 8.0)，在冰浴下進(jìn)行超聲破碎，離心得上清和沉淀。將全細(xì)胞、上清和沉淀樣品進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)，同時(shí)以質(zhì)粒pIVEX2.4d轉(zhuǎn)化的BL21(DE3)pLysS/pIVEX2.4d誘導(dǎo)表達(dá)產(chǎn)物作為空白對(duì)照。

1.3.4 融合蛋白GFP-NB-C1的純化及鑒定

收集破碎上清液，通過(guò)0.45 μm濾膜過(guò)濾后，上樣于5 mL的Ni-NTA親和層析凝膠柱，首先采用10倍柱體積的清洗緩沖液 (20 mmol/L PBS，500 mmol/L NaCl，20 mmol/L咪唑，pH 8.0) 洗滌凝膠柱，再用洗脫緩沖液 (20 mmol/L PBS，500 mmol/L NaCl，150~300 mmol/L咪唑，pH 8.0) 梯度洗脫并收集，樣品進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)和Bradford法測(cè)定蛋白質(zhì)濃度。

1.3.5 融合蛋白GFP-NB-C1的抑菌活性測(cè)定

采用固體平板擴(kuò)散法測(cè)定融合蛋白GFP-NB-C1對(duì)單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的抑菌活性。向培養(yǎng)皿中倒入約15 mL含有1.5%瓊脂的FB (Fraser Broth Base) 培養(yǎng)基 (加有 1% 50 mg/mL檸檬酸鐵銨溶液)，將在FB液體培養(yǎng)基生長(zhǎng)至對(duì)數(shù)中期的敏感菌按1%轉(zhuǎn)接至5 mL 0.5%瓊脂溶液中，迅速混勻，均勻鋪在已凝固的平板培養(yǎng)基上，制備雙層固體培養(yǎng)基，待凝固后小心放置5個(gè)牛津杯，然后分別加入100 μL PBS (pH 8.0) (陰性對(duì)照)，以及不同濃度的GFP-NB-C1 (40、60、80、100 mg/L) 純化樣品。培養(yǎng)皿于4 ℃放置6 h后轉(zhuǎn)移至37 ℃培養(yǎng)箱，培養(yǎng)12 h后觀察抑菌圈情況。

2 結(jié)果

2.1 融合表達(dá)載體的構(gòu)建和表達(dá)

將重組質(zhì)粒 pIVEX 2.4d-GFP-NB-C1分別用NcoⅠ/XmaⅠ和 NotⅠ/NcoⅠ雙酶切鑒定，得到150 bp和750 bp的目的條帶，與預(yù)期結(jié)果一致 (圖1)。DNA測(cè)序結(jié)果證明融合目標(biāo)片段序列正確。重組菌BL21(DE3) pLysS/pIVEX2.4d-GFP-NB-C1進(jìn)行IPTG誘導(dǎo)表達(dá)，表達(dá)產(chǎn)物進(jìn)行SDS-PAGE分析，結(jié)果表明，在約32 kDa處有一條明顯的目標(biāo)蛋白條帶 (圖 2)。SDS-PAGE分析細(xì)胞破碎的上清和沉淀，表明 GFP-NB-C1融合蛋白主要以胞內(nèi)可溶形式存在。

2.2 重組融合蛋白GFP-NB-C1的純化和鑒定

SDS-PAGE分析蛋白質(zhì)純化樣品，結(jié)果顯示，目的條帶大小為約32 kDa (圖3)。Quantity one軟件分析表明其純度大于 95%。以 BSA為標(biāo)準(zhǔn)樣品，Bradford法測(cè)定蛋白質(zhì)濃度，結(jié)果表明經(jīng)過(guò)一步純化后，最終可獲得36.1 mg/L純化的GFP-NB-C1融合蛋白。

圖1 質(zhì)粒pIVEX 2.4d-GFP-NB-C1圖示 (A) 及酶切鑒定電泳圖 (B)Fig. 1 Schematic map of the recombinant plasmid pIVEX 2.4d-GFP-NB-C1 (A) and restriction analysis of the recombinant plasmid pIVEX 2.4d-GFP-NB-C1 (B). M: DNA marker; 1: pIVEX 2.4d-GFP-NB-C1 digested with Nco I/Xma I; 2: pIVEX 2.4d-GFP-NB-C1 digested with Not I/Nco I.

圖2 GFP-NB-C1融合蛋白表達(dá)產(chǎn)物的SDS-PAGE分析Fig. 2 SDS-PAGE analysis of the fusion protein GFP-NB-C1. M: protein marker; 1: negative control; 2: whole proteins of cell lysate; 3: soluble fraction of cell lysate; 4: insoluble fraction of cell lysate.

2.3 重組融合蛋白GFP-NB-C1的活性鑒定

使用固體平板擴(kuò)散法測(cè)定融合蛋白GFP-NB-C1對(duì)單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的抑菌活性，結(jié)果如圖4A所示，培養(yǎng)皿上出現(xiàn)明顯的抑菌圈，表明GFP-NB-C1對(duì)敏感菌L. monocytogenes具有明顯的抑制作用，并且抑菌圈直徑與融合蛋白濃度具有一定的線性關(guān)系，如圖4B。

圖3 純化后融合蛋白的SDS-PAGE分析Fig. 3 SDS-PAGE analysis of the purified GFP-NB-C1 fusion protein. M: protein marker; 1: purified GFP-NB-C1.

3 討論

近年來(lái)雖然諸多學(xué)者通過(guò)融合方式表達(dá)了抗菌肽，但由于大多以包涵體形式存在[13,21]，不利于后續(xù)的活性檢測(cè)等工作。本文以 GFP為融合載體蛋白，在大腸桿菌中實(shí)現(xiàn)了重組蛋白的高效可溶表達(dá)，并且GFP的使用有助于對(duì)重組蛋白表達(dá)和純化過(guò)程的實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)。為了使融合蛋白以可溶的形式表達(dá)，本研究對(duì)表達(dá)條件進(jìn)行了優(yōu)化，最終確定表達(dá)條件為誘導(dǎo)前OD600為0.6，IPTG終濃度為0.8 mmol/L，20 ℃低溫誘導(dǎo)20 h，目的蛋白以胞內(nèi)可溶形式表達(dá)，避免了包涵體形成。

圖4 不同濃度GFP-NB-C1融合蛋白對(duì)單核細(xì)胞增生李斯特菌的抑菌圈直徑 (A) 及GFP-NB-C1濃度與抑菌圈直徑曲線 (B)Fig. 4 Inhibitory zone evaluation of GFP-NB-C1 fusion protein at different concentration on the growth of L. monocytogenes (A) and the concentration-inhibitory zone curve (B). 1: negative control; 2: 40 mg/L GFP-NB-C1; 3: 60 mg/L GFP-NB-C1; 4: 80 mg/L GFP-NB-C1; 5: 100 mg/L GFP-NB-C1.

表達(dá)載體pIVEX 2.4d具有6個(gè)His組成的標(biāo)簽，所以重組蛋白可以通過(guò)Ni-NTA親和層析凝膠柱純化。為得到較純的目的蛋白，洗脫時(shí)采用150~300 mmol/L咪唑梯度洗脫，當(dāng)洗脫液中咪唑濃度為250 mmol/L和300 mmol/L時(shí)，目的蛋白被洗脫下，SDS-PAGE分析顯示為單一條帶。本研究中純化條件溫和，步驟簡(jiǎn)單，這均有利于蛋白活性的保持，并大大簡(jiǎn)化了純化過(guò)程和降低了純化難度，純化后樣品可直接用于活性檢測(cè)。圖 4表明目的蛋白對(duì)指示菌形成了明顯的抑菌圈，而在其邊界外還具有一層界限模糊的外圈，這可能是因?yàn)樯倭恳志镔|(zhì)向平皿內(nèi)部擴(kuò)散后對(duì)邊界周?chē)木哂幸欢ǖ囊种谱饔枚纬?，抑菌圈直徑按照具有清晰邊界的?nèi)圈進(jìn)行計(jì)算。抑菌實(shí)驗(yàn)表明融合蛋白GFP-NB-C1對(duì)單核細(xì)胞增生李斯特氏菌具有較好的抑菌活性，說(shuō)明經(jīng)GFP融合后NB-C1保留了生物活性。

本文成功構(gòu)建并表達(dá)了可溶性融合蛋白GFP-NB-C1，經(jīng)一步純化，可獲得36.1 mg/L純度大于95%的融合蛋白，為其生物學(xué)性質(zhì)進(jìn)行進(jìn)一步的探討奠定了基礎(chǔ)。另外本研究建立了一條 IIa類(lèi)細(xì)菌素從基因搜索、重組表達(dá)到獲得活性蛋白的通路，這對(duì)新型細(xì)菌素的挖掘和研究提供了新的思路和借鑒。

[1] Jack RW, Tagg JR, Ray B. Bacteriocins of gram-positive bacteria. Microbiol Rev, 1995, 59(2): 171?200.

[2] Ennahar S, Sashihara T, Sonomoto K, et a1. Class IIa bacteriocins: biosynthesis, structure and activity. FEMS Microbiol Rev, 2000, 24(1): 85?106.

[3] Muriana PM, Klaenhammer TR. Purification and partial characterization of lactacin F, a bacteriocin produced by Lacobacillus acidophilus 11088. Appl Environ Microbiol, 1991, 57(1): 114?121.

[4] Hoskins J, Alborn Jr WE, Arnold J, et a1. Genome of the baeterium Streptococcus pneumoniaestrain R6. J Bacteriol, 2001, 183(19): 5709?5717.

[5] Saizieu AD, Gardes C, Flint N, et a1. Mieroarray-based identification of a novel Streptococcus pneumoniaeregulon controlled by an autoinduced peptide. Bacteriol, 2000, 182(17): 4696?4703.

[6] Nes IF, Johnsborg O. Exploration of antimicrobial potential in LAB by genomics. Curr Opin Biotechnol, 2004, 15(2): 100?104.

[7] Diep DB, Godager LD, Brede D, et al. Data mining and characterization of a novel pediocin-like bacteriocin system from the genome of Pediococcus pentosaceus ATCC 25745. Microbiology, 2006, 152: 1649?1659.

[8] Axelsson L, Katle T, Mslett MB, et al. A system for heterologous expression of bacteriocins in Lactobacillus sake. FEMS Microbiol Lett, 1998, l68(1): 137?143.

[9] Biet F, Berjeaud JM, Worobo RW, et a1. Heterologous expression of the baeteriocin mesentericin Y105 using the dedicated transport system and the general secretion pathway. Microbiology, 1998, 144(10): 2845?2854.

[10] Kawai Y, Arakawa K, Itoh A, et a1. Heterologous expression of gasserlcin A, a bacteriocin produced by Lactobacillus gasseri LA39. Anim Sci J, 2003, 74(1): 45?51.

[11] Moon GS, Pyun YR, Kim WJ. Expression and purification of a fusion-typed pediocin PA-1 in Escherichia coli and recovery of biologically active pediocin PA-1. Int J Food Microbiol, 2006, 108(1): 136?140.

[12] Beaulieu L, Tolkatchev D, Jetté JF, et a1. Production of active pediocin PA-1 in Escherichia coli using a thioredoxin gene fusion expression approach: cloning, expression, purification, and characterization. Can J Microbiol, 2007, 53(11): 1246?1258.

[13] Lu HR, Li GD, Wu HY, et al. Fusion expression of antimicrobial peptide GK1 in Escherichia coli. Chin J Biotech, 2008, 24(1): 21?26.陸海榮, 李國(guó)棟, 吳宏宇, 等. 抗菌肽GK1在大腸桿菌中的融合表達(dá). 生物工程學(xué)報(bào), 2008, 24(1): 21?26.

[14] Chen HQ, Fan LM, Xu ZN, et al. Efficient production of soluble human beta-defensin-3-4 fusion proteins in Escherichia coli cell-free system. Process Biochem, 2007, 42(3): 423?428.

[15] Drider D, Fimland G, Héchard Y, et al. The continuing story of class IIa bacteriocins. Microbiol Mol Biol Rev, 2006, 70(2): 564?582.

[16] Klocke M, Mundt K, Idler F, et a1. Heterologous expression of enterocin A, a bacteriocin from Enterococcus faecium, fused to a cellulose-binding domain in Escherichia coli results in a functional protein with inhibitory activity against Listeria. Appl Microbiol Biot, 2005, 67(4): 532?538.

[17] Chen HQ, Xu ZN, Xu NZ, et a1. Efficient production of a soluble fusion protein containing human beta-defensin-2 in E. coli cell-free system. J Biotechnol, 2005, 115(3): 307?315.

[18] Valore EV, Ganz T. Laboratory production of antimicrobial peptides in native conformation. Methods Mol Biol, 1997(78): 115?131.

[19] Piers KL, Brown MH, Hancock REW. Recombinant DNA procedures for producing small antimicrobial cationic peptides in bacteria. Gene, 1993, 134(1): 7?13.

[20] Sambrook J, Russell DW. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 3rd ed. Beijing: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001.

[21] Barrell PJ, Liew OW, Conner AJ. Expressing an antibacterial protein in bacteria for raising antibodies. Protein Expr Purif, 2004, 33(1): 153?159.

Expression and characterization of a new class IIa bacteriocin

Yan Xie, Haiqin Chen, Qiuxiang Zhang, Fengwei Tian, Yongquan Chen, Hao Zhang, and Wei Chen

School of Food Science and Technology, Jiangnan University, Wuxi 214122, China

NB-C1 gene is a potential class IIa bacteriocin gene. To obtain its soluble expression, NB-C1 was fused with the green fluorescent protein (GFP) gene and a recombinant expression vector pIVEX 2.4d-GFP-NB-C1 was constructed, which was transformed into Escherichia coli BL21(DE3) pLysS. The expressed fusion protein GFP-NB-C1 was purified by Ni-NTA affinity chromatography and the bioactivity was examined using Listeria monocytogenes as the indicator bacteria. The results showed that the expressed fusion protein GFP-NB-C1 was soluble and the final concentration of the purified fusion protein was 36.1 mg/L E. coli culture and had the purity above 95%. The antimicrobial assay of GFP-NB-C1 was analyzed and showed its high activity against Listeria monocytogenes.

class IIa bacteriocin, fusion expression, protein purification, activity identification

細(xì)菌素 (Bacteriocin) 是某些細(xì)菌產(chǎn)生的具有抗菌活性的多肽、蛋白質(zhì)或蛋白質(zhì)復(fù)合物，一般只對(duì)親緣關(guān)系較近的細(xì)菌有毒害作用。產(chǎn)生菌對(duì)其產(chǎn)生的細(xì)菌素具自身免疫性[1]。很多微生物均可產(chǎn)生細(xì)菌素，其中乳酸菌細(xì)菌素研究得最為深入。IIa類(lèi)細(xì)菌素是乳酸菌細(xì)菌素的一個(gè)亞類(lèi)，為抗李斯特氏菌的多肽。近年來(lái)世界范圍內(nèi)發(fā)生多起由單核細(xì)胞增生李斯特氏菌引起的中毒事件，具有很大的危害性，預(yù)防和控制食品中的李斯特氏菌則成為了人們關(guān)注的熱點(diǎn)，而IIa類(lèi)細(xì)菌素對(duì)李斯特氏菌具有特異的抗菌活性，并且還具有安全性、酶穩(wěn)定性、熱穩(wěn)定性、免疫性等優(yōu)點(diǎn)[2]，因此在食品領(lǐng)域具有很好的應(yīng)用前景。但目前僅有幾個(gè)細(xì)菌素在食品和生物藥物領(lǐng)域中得到應(yīng)用，因此從乳酸菌天然資源中挖掘更多高效的細(xì)菌素已成為研究熱點(diǎn)。

September 6, 2010; Accepted: January 26, 2011

Supported by: National Natural Science Foundation of China (Nos. 20706023, 20836003).

Wei Chen. Tel/Fax: +86-510-85912155; E-mail: weichen@jiangnan.edu.cn

國(guó)家自然科學(xué)基金 (Nos. 20706023, 20836003) 資助。