孔曉明,劉勇
蚌埠醫(yī)學院微生物學教研室,安徽省感染與免疫重點實驗室,蚌埠 233030
自然殺傷T細胞(natural killer T cell,NKT細胞)是一類介導天然免疫和獲得性免疫的免疫細胞,它們既表達T細胞受體(T cell receptor,TCR),又表達NK細胞表面標記CD161(NK1.1)。NKT細胞能特異性識別非經(jīng)典的主要組織相容性復合物(major histocompatibility complex,MHC)Ⅰ類樣分子CD1d呈遞的脂類抗原和蛋白質(zhì)抗原,活化后的NKT細胞能同時分泌T輔助細胞1(T helper cell type 1,Th1)和Th2兩類細胞因子,包括白細胞介素2(interleukin 2,IL-2)、IL-4、γ干擾素(interferon γ,IFN-γ)、腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor α,TNF-α)等,同時激活下游多種其他免疫細胞,如樹突細胞(dendritic cell,DC)、NK細胞、巨噬細胞、T細胞等,進而調(diào)節(jié)機體多種免疫效應[1]。大量研究表明,NKT細胞在抗胞內(nèi)菌的感染免疫中發(fā)揮著重要作用。
NKT細胞可分為Ⅰ~Ⅲ型:Ⅰ型NKT細胞大部分屬CD4+和CD4-CD8-一類,主要特征為CD1d限制性,TCR多樣性有限,只表達1條恒定的Vα14-Jα18鏈(小鼠)或Vα24-Jα18鏈(人)和1條Vβ鏈﹝包括Vβ8.2、Vβ7、Vβ2(小鼠)和Vβ11(人)﹞;Ⅱ型NKT細胞也表現(xiàn)為CD1d限制性,但表達多種TCR Vα鏈;Ⅲ型NKT細胞是CD1d非依賴性的,表達多種TCR Vα鏈,也稱NKT樣細胞[1]。
目前對NKT細胞表型的確定仍存有爭議。常借助NK細胞譜系標記(小鼠為NK1.1,人為CD161)及TCRα/β共表達來界定NKT細胞。常用CD161(人)與TCRα/β共表達、NK1.1(僅C57BL/6小鼠表達)與TCRα/β共表達、DX5(NK1.1-小鼠)與TCRα/β共表達來標記。CD1d四聚體的出現(xiàn)對 Ⅰ 型和 Ⅱ 型NKT細胞的研究起了極好的推動作用。α-半乳糖神經(jīng)酰胺 (α-galactosylceramide,α-GalCer)分子是目前與NKT細胞結合效能最強的糖脂抗原,能最大限度刺激NKT細胞產(chǎn)生Th1及Th2細胞因子[2]。應用此糖脂及CD1d建立的CD1d四聚體技術已成為目前檢測NKT細胞的“金標準”[3]。但Ⅲ型NKT細胞即NKT樣細胞,是CD1d非依賴性的,目前多采用DX5與TCRα/β共表達來界定。
不同于傳統(tǒng)的T細胞,NKT細胞的活化可能有2條途徑[4]:①直接識別微生物的脂類抗原,類似于傳統(tǒng)的MHC限制性T細胞的活化模式,即NKT細胞的TCR識別抗原呈遞細胞表面CD1d呈遞的微生物脂類抗原,如大腸埃希菌的磷酯酰乙醇胺、結核分枝桿菌(Mycobacteriumtuberculosis)的脂阿拉伯甘露糖等,經(jīng)信號轉導通路直接被活化。②微生物抗原間接刺激模式,即微生物抗原誘導宿主產(chǎn)生某些因子(如IL-12、IL-18等),這些因子能與NKT細胞表面的細胞因子受體結合,活化NKT細胞。有時該途徑也同時需要CD1d呈遞糖脂類抗原對TCR進行激活。陳鈺等[5]研究發(fā)現(xiàn),超抗原金黃色葡萄球菌腸毒素B(staphylococcal enterotoxin B,SEB)也能活化NKT細胞,活化的NKT細胞亞群主要是CD8+NK1.1+和TCRVβ8+NK1.1+。
胞內(nèi)菌分為兼性胞內(nèi)菌和專性胞內(nèi)菌2類。兼性胞內(nèi)菌進入機體后主要在胞內(nèi)寄居、繁殖;在體外,又能在無生命的培養(yǎng)基中生長。此類細菌有結核分枝桿菌、牛分枝桿菌、傷寒沙門菌(Salmonellatyphi)、布魯桿菌(Brucellasp.)、肺炎軍團菌(Legionellapneumonia)、產(chǎn)單核細胞李斯特菌(Listeriamonocytogenes,LM)等,多引起慢性感染。專性胞內(nèi)菌包括立克次體、柯克斯體、衣原體等,只能在活細胞內(nèi)生長、繁殖。機體抵抗胞內(nèi)菌感染以細胞免疫為主。大量動物實驗研究表明,NKT細胞在多種胞內(nèi)菌感染中發(fā)揮抗感染作用[6]。
大量研究表明,胞內(nèi)菌能活化NKT細胞。如傷寒沙門菌細胞壁上的脂多糖[7]與DC共培養(yǎng),能誘導NKT細胞分泌IFN-γ。該過程需DC表達的Toll樣受體4(Toll-like receptor 4,TLR-4)、IL-4和CD1d參與,表明DC產(chǎn)生的IL-12能與NKT細胞表面的細胞因子受體結合,增強NKT細胞活化。大腸埃希菌脂多糖[8]活化NKT細胞只需IL-12和IL-18存在,而不需CD1d的呈遞。LM通過改變DC和巨噬細胞表面CD1d的表達來活化NKT細胞,該過程需由IFN-β介導[9]。
研究發(fā)現(xiàn),NKT細胞可識別分枝桿菌并產(chǎn)生相應的免疫應答效應。因為分枝桿菌細胞壁的脂類和磷酯酰膽堿甘露糖苷能激活NKT細胞,分泌IFN-γ的CD4-CD8-NKT細胞還可通過釋放抗微生物的肽段(溶菌素)直接發(fā)揮抗分枝桿菌的作用[10]。傷寒沙門菌細胞壁上的脂多糖也能活化NKT細胞。
活化后的NKT細胞具有免疫調(diào)節(jié)功能,通過產(chǎn)生大量的IL-4、IFN-γ、IL-10、IL-13等細胞因子,或通過細胞間直接接觸的方式,作用于NK細胞、B細胞、DC和T細胞,從而調(diào)節(jié)整個免疫網(wǎng)絡。
Berntman等[11]研究發(fā)現(xiàn),小鼠口服感染沙門菌5 d后,NKT細胞活化,參與早期免疫應答。其中分泌IFN-γ(發(fā)揮抗感染、抗腫瘤等機體保護功能)的CD4-CD8-NKT細胞增多,分泌IL-4(參與免疫調(diào)節(jié),改善自身免疫性疾病的癥狀)的CD4+NKT細胞減少。Sada-Ovalle等[10]用感染結核分枝桿菌的巨噬細胞與清潔級C57BL/6小鼠的脾臟共培養(yǎng),發(fā)現(xiàn)上清液中IFN-γ分泌增加,且培養(yǎng)液中細菌減少。實驗表明,結核分枝桿菌感染的巨噬細胞能激活NKT細胞,活化后的NKT細胞能抑制結核分枝桿菌的復制,通過分泌IFN-γ識別并殺傷感染細胞。已證實,活化與未活化的NKT細胞均能保護宿主,抵抗結核分枝桿菌。Chiba等[12]發(fā)現(xiàn),給予C57BL/6小鼠尾靜脈注射卡介苗(bacillus Calmette-Guerin,BGG)感染后,肝臟和脾臟的NKT細胞可活化(CD69表達上調(diào),但NK1.1+NKT細胞減少),分泌IFN-γ。該實驗采用BrdU方法(淋巴細胞增生試驗)發(fā)現(xiàn),在BCG感染早期(感染9 d內(nèi)),NKT細胞被激活并增殖;感染9 d后自適應性應答出現(xiàn),NKT細胞開始衰落,通過Fas-FasL信號轉導途徑發(fā)生凋亡。Venkataswamy等[13]將NKT細胞活化劑α-GalCer注入到活的BCG中,發(fā)現(xiàn)α-GalCer-BCG能刺激DC成熟,并顯著增強特有的CD8+T細胞反應,從而提高疫苗抗結核分枝桿菌的免疫保護效應。
Emoto等[14]給予C57BL/6小鼠α-GalCer或?qū)φ找禾幚? d后,再通過腹腔注射LM感染1 h,檢測腹腔、肝臟和脾臟中菌落形成單位(colony-forming unit,CFU)發(fā)現(xiàn),α-GalCer能通過激活器官(不是腹腔)中的NKT細胞產(chǎn)生IFN-γ,從而加強巨噬細胞的殺菌和噬菌作用,減輕LM感染。Emoto等[15]發(fā)現(xiàn),給予感染LM的小鼠α-GalCer后,大量骨髓來源的Gr-1+(粒細胞譜系標記)細胞及少量的γδ T細胞會迅速滲入肝臟,從而發(fā)揮強大的抗LM感染作用。
大量研究發(fā)現(xiàn),NKT細胞活化后,表面NK1.1分子表達下調(diào),TCRα/β表達也下調(diào),下調(diào)的原因尚未明確。
Emoto等[16]研究發(fā)現(xiàn),在LM感染早期階段,NK1.1+NKT細胞顯著下降,NK1.1-NKT細胞顯著上升,以分泌IFN-γ為主。研究認為,NK1.1+細胞是NK1.1-細胞的前體,NK1.1的丟失是為了清除抗原感染的細胞。
Emoto等[17]研究還發(fā)現(xiàn),LM感染的肝臟NKT細胞表面NK1.1分子表達發(fā)生改變。在感染第4天,NK1.1分子表達下降;感染16 d后,NK1.1分子表達恢復到感染前水平。檢測胞質(zhì)TCRα/β(cTCRα/β)和細胞表面TCRα/β(sTCRα/β)發(fā)現(xiàn),LM感染后NKT細胞的“丟失”很可能是因為TCRα/β的丟失或凋亡,但在LM感染的小鼠NK1.1+和NK1.1-NKT細胞群中檢測不到活化的半胱天冬氨酸酶3(Caspase-3)[17]。
Werner等[18]比較了NK1.1-BALB/c小鼠肝臟和脾臟的DX5+NKT細胞在表型和功能上的差異發(fā)現(xiàn),NKT細胞活化后,會發(fā)生典型的TCRα/β表達下調(diào)及CD178(啟動死亡信號轉導的Fas分子的配體)表達上調(diào)。
活化后的NKT細胞幾乎對所有血細胞,包括NK細胞、DC、B細胞及T細胞均有作用,因此活化的NKT細胞是連接天然免疫與獲得性免疫的橋梁[19]。
Joyee等[20]將衣原體感染Jα18-/-基因敲除小鼠與野生型小鼠后,比較CD8α+DC與NKT細胞共培養(yǎng)后的IFN-γ產(chǎn)量,發(fā)現(xiàn)活化后的NKT細胞會優(yōu)先調(diào)節(jié)CD8α+DC的功能,從而引發(fā)天然免疫反應。Choi等研究發(fā)現(xiàn),在LM靜脈注射初次感染過程中,肝臟和脾臟的NKT細胞在感染第1天就被活化,表現(xiàn)為CD69表達上調(diào);在感染第8天,通過分泌細胞因子(如IFN-γ、IL-12),誘導適應性免疫反應,表現(xiàn)為傳統(tǒng)性T細胞增加[21]。Fujii等[22]發(fā)現(xiàn),NKT細胞被激活后,會激活下游的DC和NK細胞。DC會誘導NKT細胞持久分泌IFN-γ;而活化后的NKT細胞,其CD40表達上調(diào),能通過CD40-CD40L的相互作用促使DC成熟,從而分泌IL-12,上調(diào)聯(lián)合刺激分子,誘導適應性免疫捕獲胞內(nèi)抗原,以及延長聯(lián)合CD4和CD8 T細胞免疫殺菌作用。
含有糖脂類抗原的胞內(nèi)菌,如大腸埃希菌和結核分枝桿菌,可直接活化NKT細胞;其他不含有糖脂類抗原的胞內(nèi)菌,可通過誘導宿主產(chǎn)生某些因子(如IL-12)與NKT細胞表面的細胞因子受體結合,增強NKT細胞的活化?;罨蟮腘KT細胞經(jīng)分泌多種細胞因子發(fā)揮天然免疫反應,并激活下游多種其他免疫細胞,如DC、NK細胞、巨噬細胞、T細胞等,進而調(diào)節(jié)機體多種免疫效應。對活化后的NKT細胞表面TCRα/β和NK1.1的“丟失”機制尚需進一步研究。
[1] Bendelac A, Savage PB, Teyton L. The biology of NKT cells [J]. Annu Rev Immunol, 2007,25:297-336.
[2] Bai L, Sagiv Y, Liu Y, Freigang S, Yu KO, Teyton L, Porcelli SA, Savage PB, Bendelac A. Lysosomal recycling terminates CD1d-mediated presentation of short and polyunsaturated variants of the NKT cell lipid antigen alphaGalCer [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2009,106(25):10254-10259.
[3] Watarai H, Nakagawa R, Omori-Miyake M, Dashtsoodol N, Taniguchi M. Methods for detection, isolation and culture of mouse and human invariant NKT cells[J]. Nat Protoc, 2008,3(1):70-78.
[4] Brigl M, Brenner MB. How invariant natural killer T cells respond to infection by recognizing microbial or endogenous lipid antigens [J]. Semin Immunol, 2010,22(2):79-86.
[5] 陳鈺, 鐘江, 徐健, 陳中才, 張繼慧, 金婷. 超抗原SEB活化的NKT細胞亞群及耐受功能的研究[J]. 免疫學雜志, 2009, (1):23-26.
[6] Emoto M, Emoto Y. Intracellular bacterial infection and invariant NKT cells [J]. Yonsei Med J, 2009,50(1):12-21.
[7] Nagarajan NA, Kronenberg M. Invariant NKT cells amplify the innate immune response to lipopolysaccharide[J]. J Immunol, 2007,178(5):2706-2713.
[8] Tupin E, Kinjo Y, Kronenberg M. The unique role of natural killer T cells in the response to microorganisms [J]. Nat Rev Microbiol, 2007,5(6):405-417.
[9] Raghuraman G, Geng Y, Wang CR. IFN-beta-mediated up-regulation of CD1d in bacteria-infected APCs [J]. J Immunol, 2006,177(11):7841-7848.
[10] Sada-Ovalle I, Chiba A, Gonzales A, Brenner MB, Behar SM. Innate invariant NKT cells recognize Mycobacterium tuberculosis-infected macrophages, produce interferon-gamma, and kill intracellular bacteria [J]. PLoS Pathog, 2008,4(12):e1000239.
[11] Berntman E, Rolf J, Johansson C, Anderson P, Cardell SL. The role of CD1d-restricted NKT lymphocytes in the immune response to oral infection with Salmonella typhimurium [J]. Eur J Immunol, 2005,35(7):2100-2109.
[12] Chiba A, Dascher CC, Besra GS, Brenner MB. Rapid NKT cell responses are self-terminating during the course of microbial infection [J]. J Immunol, 2008,181(4):2292-2302.
[13] Venkataswamy MM, Baena A, Goldberg MF, Bricard G, Im JS, Chan J, Reddington F, Besra GS, Jacobs WR Jr, Porcelli SA. Incorporation of NKT cell-activating glycolipids enhances immunogenicity and vaccine efficacy of Mycobacterium bovis bacillus Calmette-Guerin [J]. J Immunol, 2009,183(3):1644-1656.
[14] Emoto M, Yoshida T, Fukuda T, Kawamura I, Mitsuyama M, Kita E, Hurwitz R, Kaufmann SH, Emoto Y. Alpha-galactosylceramide promotes killing of Listeria monocytogenes within the macrophage phagosome through invariant NKT-cell activation [J]. Infect Immun, 2010,78(6):2667-2676.
[15] Emoto M, Emoto Y, Yoshizawa I, Kita E, Shimizu T, Hurwitz R, Brinkmann V, Kaufmann SH. Alpha-GalCer ameliorates listeriosis by accelerating infiltration of Gr-1+cells into the liver [J]. Eur J Immunol, 2010,40(5):1328-1341.
[16] Emoto M. Liver invariant NKT cells and listeriosis [J]. Microbes Infect, 2008,10(9):1036-1040.
[17] Emoto M, Yoshizawa I, Emoto Y, Takahashi Y, Hurwitz R, Miamoto M, Kaufmann SH. Reversible NK1.1 surface expression on invariant liver natural killer T cells during Listeria monocytogenes infection [J]. Microbes Infect, 2007,9(14-15):1511-1520.
[18] Werner JM, Busl E, Farkas SA, Schlitt HJ, Geissler EK, Hornung M. DX5+NKT cells display phenotypical and functional differences between spleen and liver as well as NK1.1-Balb/c and NK1.1+C57Bl/6 mice [J]. BMC Immunol, 2011,12:26.
[19] Cerundolo V, Kronenberg M. The role of invariant NKT cells at the interface of innate and adaptive immunity [J]. Semin Immunol, 2010,22(2):59-60.
[20] Joyee AG, Uzonna J, Yang X. Invariant NKT cells preferentially modulate the function of CD8 alpha+dendritic cell subset in inducing type 1 immunity against infection [J]. J Immunol, 2010,184(4):2095-2106.
[21] Choi HJ, Xu H, Geng Y, Colmone A, Cho H, Wang CR. Bacterial infection alters the kinetics and function of iNKT cell responses [J]. J Leukoc Biol, 2008,84(6):1462-1471.
[22] Fujii S, Shimizu K, Hemmi H, Steinman RM. Innate Valpha14+natural killer T cells mature dendritic cells, leading to strong adaptive immunity [J]. Immunol Rev, 2007,220:183-198.