段曌，肖煒，王永霞，賴泳紅，崔曉龍

(云南大學(xué)云南省微生物研究所，云南昆明650091)

微生物生態(tài)學(xué)是研究微生物與其周圍的生物及非生物環(huán)境的相互作用規(guī)律的學(xué)科。傳統(tǒng)的微生物生態(tài)學(xué)研究是基于微生物的直接培養(yǎng)來分析環(huán)境中微生物的種群結(jié)構(gòu)及其生態(tài)關(guān)系的，微生物純培養(yǎng)及顯微技術(shù)作為鑒定微生物種群的手段有很大的局限性，因?yàn)榄h(huán)境中大多數(shù)微生物處于“存活但不能培養(yǎng)”(viable but nonculturable，VBNC)的狀態(tài)［1］。因此，不依賴于微生物純培養(yǎng)的分子生物學(xué)方法正被廣泛地用于微生物生態(tài)學(xué)研究，即微生物分子生態(tài)學(xué)。20世紀(jì)90年代以來，微生物分子生態(tài)學(xué)技術(shù)層出不窮，大大加速了微生物生態(tài)學(xué)的發(fā)展。近年來，第2代測(cè)序技術(shù)的出現(xiàn)使得微生物生態(tài)學(xué)的研究更加深入和便捷。以Sanger法(雙脫氧核苷酸末端終止法)為代表的第1代測(cè)序技術(shù)幫助人們完成了從噬菌體基因組到人類基因組的大量測(cè)序工作，但由于其成本高、速度慢、通量低等不足，已不能滿足后基因組時(shí)代的測(cè)序要求［2］。因此，第2代測(cè)序技術(shù)應(yīng)運(yùn)而生。第2代測(cè)序技術(shù)主要包括454公司的GS FLX測(cè)序平臺(tái)、Illumina公司的Solexa Genome Analyzer測(cè)序平臺(tái)和ABI公司的SOLiD測(cè)序平臺(tái)［3］。目前，在微生物生態(tài)學(xué)研究中應(yīng)用最廣泛的是GS FLX測(cè)序平臺(tái)。這種高通量低成本的測(cè)序方法為環(huán)境微生物多樣性研究提供了新的手段，大大推動(dòng)了環(huán)境基因組研究的快速發(fā)展，使得大規(guī)模的環(huán)境基因組研究相繼展開，大量的新的微生物種群和新的基因得以發(fā)現(xiàn)。應(yīng)用454測(cè)序技術(shù)的研究論文每月數(shù)以百計(jì)地發(fā)表，本文結(jié)合本實(shí)驗(yàn)室的研究成果，對(duì)近年來運(yùn)用454測(cè)序技術(shù)在微生物生態(tài)學(xué)研究中的進(jìn)展進(jìn)行綜述，并對(duì)其研究前景進(jìn)行介紹。

1 454測(cè)序技術(shù)原理

GS FLX系統(tǒng)的測(cè)序流程概括起來就是“1個(gè)片段=1個(gè)磁珠=1條讀長(zhǎng)(One fragment=One bead=One read)”。特別設(shè)計(jì)的DNA捕獲磁珠與獨(dú)特的短的DNA片段結(jié)合，并被擴(kuò)增試劑乳化，形成油包水的混合物，這樣就形成了只包含1個(gè)磁珠和1個(gè)獨(dú)特片段的微反應(yīng)器。每個(gè)獨(dú)特的片段在自己的微反應(yīng)器里進(jìn)行獨(dú)立的擴(kuò)增。隨后，乳液混合物被打破，擴(kuò)增的片段仍然結(jié)合在磁珠上。攜帶短的PCR產(chǎn)物片段的捕獲磁珠隨后放入只能容納1個(gè)磁珠的PTP板中進(jìn)行測(cè)序。放置在4個(gè)單獨(dú)的試劑瓶里的4種堿基，依照T、A、C、G的順序依次循環(huán)進(jìn)入PTP板，每次只進(jìn)入1個(gè)堿基。如果發(fā)生堿基配對(duì)，就會(huì)釋放1個(gè)焦磷酸。這個(gè)焦磷酸在ATP硫酸化酶和熒光素酶的作用下，釋放出光信號(hào)，并實(shí)時(shí)地被儀器配置的高靈敏度CCD捕獲到。有1個(gè)堿基和測(cè)序模板進(jìn)行配對(duì)，就會(huì)捕獲到一分子的光信號(hào)，由此一一對(duì)應(yīng)，就可以準(zhǔn)確、快速地確定待測(cè)模板的堿基序列。GS FLX系統(tǒng)在10 h的運(yùn)行當(dāng)中可獲得100多萬個(gè)讀長(zhǎng)，讀取超過4～6億個(gè)堿基信息。除GS FLX系統(tǒng)提供的生物信息學(xué)工具外，目前也有很多程序包和數(shù)據(jù)庫可用于大規(guī)模測(cè)序數(shù)據(jù)的分析，如CAMERA［4］、Mothur［5］、FastUnifac［6］等。

2 454測(cè)序技術(shù)在環(huán)境微生物多樣性研究中的應(yīng)用

454測(cè)序技術(shù)適于對(duì)短序列的測(cè)序分析，其可重復(fù)性和精確性能與Sanger測(cè)序法相媲美，而速度和數(shù)據(jù)量卻大大提高，無需文庫構(gòu)建，沒有克隆的誤差，能最大程度地節(jié)約人力、物力。目前，該技術(shù)在土壤、海洋、活性污泥、廢水、食品、化妝品、礦井和鹽湖等環(huán)境微生物多樣性研究中都有應(yīng)用。

2.1 454測(cè)序技術(shù)在土壤微生物多樣性研究中的應(yīng)用

土壤由固體、液體和氣體3類物質(zhì)組成，土壤微生物一般包括細(xì)菌、真菌、藻類、原生動(dòng)物、病毒及類病毒。土壤微生物種類和數(shù)量隨成土環(huán)境及土層深度的不同而變化。Roesch等［7］利用454技術(shù)研究了位于西半球一個(gè)橫斷面的4類土壤中微生物的多樣性，結(jié)果顯示，這4類土壤中，最豐富的微生物類群是擬桿菌門(Bacteroidetes)、α-變形菌門和β-變形菌門。與農(nóng)業(yè)土壤相比，森林土壤的微生物多樣性更為豐富，然而森林土壤中的古菌多樣性較少。此研究證實(shí)，是否采取農(nóng)業(yè)化管理對(duì)于土壤中古菌和細(xì)菌多樣性的影響是顯著的。這一結(jié)論也得到了Campbell等的證實(shí)。Campbell［8］的研究表明，長(zhǎng)期施肥的北極凍土帶土壤微生物不僅多樣性較低，而且被其利用的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)也會(huì)發(fā)生變化，這與土壤中所含碳氮的可利用性以及表層植物的變化有關(guān)。除了應(yīng)用于原核生物的研究，Lim等［9］也應(yīng)用454技術(shù)研究韓國(guó)黃海3個(gè)島嶼的土壤真菌多樣性。他們不僅發(fā)現(xiàn)此前未知的土壤真菌豐富的多樣性，還證明454測(cè)序技術(shù)也適于土壤真菌多樣性的研究。同樣，454測(cè)序技術(shù)在功能微生物的研究中也表現(xiàn)出巨大的應(yīng)用價(jià)值。例如研究含高CO2土壤里微生物群落的結(jié)構(gòu)及功能［10］以及農(nóng)用土壤里氨單加氧酶基因(amoA)豐度［11］。這些研究更深刻地揭示了功能微生物在土壤生態(tài)系統(tǒng)中的重要作用。由此可見，應(yīng)用454測(cè)序技術(shù)對(duì)土壤微生物的研究大大擴(kuò)展了對(duì)土壤微生物多樣性的認(rèn)識(shí)，大量未知的微生物及其在土壤中的功能得以了解，周圍土壤環(huán)境對(duì)微生物的影響作用得以證實(shí)，隨著454技術(shù)的發(fā)展，該技術(shù)在土壤微生物多樣性研究中將會(huì)起到越來越重要的作用。

2.2 454測(cè)序技術(shù)在海洋微生物多樣性研究中的應(yīng)用

海洋堪稱為地球上最龐大的恒化器，能承受巨大的沖擊(如污染)而仍保持其生命力和生產(chǎn)力，而微生物是其中不可缺少的活躍因素。盡管海洋中存在著豐富的微生物，但是研究手段的限制成為當(dāng)代海洋微生物學(xué)研究和海洋資源開發(fā)的障礙。所以，近幾年，許多科學(xué)家開始采用高通量測(cè)序法來研究海洋微生物。Sogin等［12］檢測(cè)深海和未探索的稀有生物圈(rare biosphere)，即位于大西洋東部海山中軸熱泉中的微生物多樣性。454測(cè)序結(jié)果顯示，大西洋海底和熱泉中的微生物比以前報(bào)道的數(shù)量要高1～2個(gè)數(shù)量級(jí)，并且微生物類群也比以前報(bào)道的要復(fù)雜得多。此未探索的稀有生物圈中的微生物是非常古老的，它們不僅可以提供新的基因組數(shù)據(jù)，在地球歷史的不同時(shí)期，還對(duì)地球的演變進(jìn)程產(chǎn)生過深刻的影響。Hube等［13］研究?jī)舌徑詈崛形⑸锒鄻有院头N群結(jié)構(gòu)，檢測(cè)到了許多細(xì)菌新類群，結(jié)果表明，這2眼熱泉微生物種群結(jié)構(gòu)的不同與當(dāng)?shù)氐牡乩砬闆r相關(guān)。由此說明獲取成千上萬條序列是有必要的，這將極大地促進(jìn)海洋微生物資源的開發(fā)。作為海洋生態(tài)系統(tǒng)的重要組分，珊瑚的健康向來受到研究者的關(guān)注。Gaidos等［14］采用454測(cè)序法，研究夏威夷島深海珊瑚礁微生物的群落空間結(jié)構(gòu)及其多樣性，發(fā)現(xiàn)最豐富的細(xì)菌類群是變形菌門、厚壁菌門、放線菌門，最豐富的古菌類群是亞硝化侏儒菌目(Nitrosopumilales)、廣古菌門(Euryarchaeota)、泉古菌門(Crenarchaeota)。針對(duì)珊瑚礁與微生物之間的關(guān)系，Elizabeth［15］研究位于萊恩群島北部的4個(gè)環(huán)狀珊瑚礁島的微生物多樣性，分析微生物對(duì)珊瑚礁的影響作用。發(fā)現(xiàn)微生物對(duì)珊瑚礁的生態(tài)系統(tǒng)功能具有顯著影響，是維持珊瑚健康生長(zhǎng)的一個(gè)重要因素。

Dos Santos等［16］為研究石油對(duì)紅樹林沉積物中微生物多樣性的影響作用，模擬石油泄漏，污染紅樹林沉淀物，然后進(jìn)行454測(cè)序。結(jié)果顯示，污染前后相比，污染后的紅樹林沉積物中微生物類群明顯較多，而γ-變形菌綱(Gammaproteobacteria)和δ-變形菌綱(Deltaproteobacteria)都廣泛存在。污染后的紅樹林沉積物中，Chromatiales和Haliea的數(shù)量減少2%～5%，海桿菌屬(Marinobacter)、海細(xì)菌屬(Marinobacterium)和解環(huán)菌屬(Cycloclasticus)的數(shù)量增多，該結(jié)果暗示，這些微生物都可以作為石油污染的生物監(jiān)測(cè)指標(biāo)。

除了原核生物，海洋中還含有數(shù)量巨大，多種多樣的病毒。Angly［17］對(duì)從4大洋的68個(gè)樣點(diǎn)采集到的樣品進(jìn)行454測(cè)序，分析得到了184個(gè)病毒群，這些病毒是典型的海洋病毒系，具有豐富的多樣性，與現(xiàn)有數(shù)據(jù)庫中的病毒序列并不相似。病毒總體的多樣性非常高，大概有成百上千個(gè)物種，而且區(qū)域豐度隨著南北緯度而變化。

海洋微生物資源是一個(gè)十分巨大的有待深入開發(fā)的資源庫，采用高通量深度測(cè)序?qū)⑻峁└嗟暮Ｑ笪⑸镄畔?，這些信息在第2代測(cè)序技術(shù)出現(xiàn)前是很難獲得的，這為今后的海洋資源開發(fā)和持續(xù)利用奠定良好的基礎(chǔ)。

2.3 454測(cè)序技術(shù)在沼氣發(fā)酵和活性污泥微生物研究中的應(yīng)用

沼氣是可再生的清潔能源，既可替代秸稈、薪柴等傳統(tǒng)生物質(zhì)能源，也可替代煤炭等商品能源，而且能源效率明顯高于秸稈、薪柴、煤炭等。早在18世紀(jì)科學(xué)家們就開始研究沼氣了，對(duì)于發(fā)酵沼氣的微生物研究也越來越多。Jaenicke等［18］采用第2代454測(cè)序系統(tǒng)分析沼氣發(fā)酵罐中微生物的多樣性，檢測(cè)出之前未出現(xiàn)的Streptococcus(鏈球菌屬)、Acetivibrio(醋弧菌屬)、Garciella、Tissierella(泰氏菌屬)和Gelria，它們?cè)诎l(fā)酵罐中對(duì)于沼氣的形成起著重要作用。與之前采用第1代454測(cè)序系統(tǒng)研究沼氣發(fā)酵罐中微生物的多樣性結(jié)果相比，采用新1代454測(cè)序技術(shù)可以獲得更多的微生物組成信息。由于454測(cè)序技術(shù)的驚人發(fā)展速度，同樣的樣品進(jìn)行多次分析，可以提供更為豐富的結(jié)果。

活性污泥(active sludge)是微生物群體及它們所依附的有機(jī)物質(zhì)和無機(jī)物質(zhì)的總稱。Sanapareddy［19］對(duì)廢水處理廠的活性污泥提取的總DNA進(jìn)行454測(cè)序，這些序列只有0.3%組裝成有意義的重疊群。猜測(cè)其中117個(gè)大于500 bp的重疊群可能為轉(zhuǎn)座酶和蛋白。通過將所得的序列與已知微生物基因組進(jìn)行比較，得知污水處理廠中的絕大多數(shù)微生物與先前描述的分類單元親緣關(guān)系較遠(yuǎn)。Kwon等［20］運(yùn)用同樣的測(cè)序技術(shù)研究污水的懸浮樣本和IFAS system(Integrated fixed-film activated sludge system，集成固定膜活性污泥體系)膜上的微生物組成和多樣性。比較發(fā)現(xiàn)，懸浮樣本中最豐富的微生物類群是β-變形菌綱、γ-變形菌綱、擬桿菌門等，而FAS system膜上樣本中最豐富的微生物類群是放線菌門、厚壁菌門、擬桿菌門等，系統(tǒng)發(fā)育表明樣本中微生物大都為稀有物種。這些研究中獲得的信息將為以后關(guān)于活性污泥微生物群落結(jié)構(gòu)的研究以及對(duì)IFAS系統(tǒng)功能的了解奠定基礎(chǔ)。

2.4 454測(cè)序技術(shù)在食品和化妝品微生物中的應(yīng)用

隨著454測(cè)序技術(shù)的成熟，該技術(shù)的運(yùn)用范圍越來越廣。Li等［21］采用454測(cè)序技術(shù)研究中國(guó)傳統(tǒng)酒發(fā)酵過程中的細(xì)菌與真菌的多樣性。檢測(cè)到的細(xì)菌分屬于15個(gè)科，多于91%的16S rRNA基因序列歸屬于乳酸桿菌科;真菌分屬于6個(gè)科，60%的真菌ITS1(Internal transcribed spacer region 1)序列歸屬于酵母科。Lopez-Velasco等［22］采用454測(cè)序技術(shù)，研究菠菜在冷藏前后所含微生物的變化。得知菠菜冷藏后包含了許多與冷藏前不同的微生物類群，冷藏后微生物群落的豐富性、多樣性、均一度都降低。Telias［23］采用2種不同的水資源，即地下水和地表水，灌溉西紅柿研究其表面微生物的多樣性。454結(jié)果顯示，與地表水相比，地下水中細(xì)菌的多樣性更為豐富，采用這2種水資源對(duì)西紅柿噴灑灌溉不會(huì)對(duì)西紅柿表面細(xì)菌群落組成產(chǎn)生影響，即西紅柿表面細(xì)菌群落組成無差異。目前，隨著454測(cè)序技術(shù)的不斷完善，以其強(qiáng)大的信息量作為優(yōu)勢(shì)，與日常生活息息相關(guān)的各類食品開始被嘗試采用此技術(shù)對(duì)其所含微生物進(jìn)行檢測(cè)。Maiuta等［24］運(yùn)用454測(cè)序技術(shù)研究化妝品制劑碳酸鈣中微生物多樣性。結(jié)果表明，化妝品制劑碳酸鈣中不存在金黃色釀膿葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、綠膿假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa)、沙門氏菌(Salmonella spp.)、大腸埃希菌(Escherichia coli)。此研究不僅可以用于確定化妝品制劑碳酸鈣中微生物的多樣性，還明確了化妝品或原材料中指示微生物的存在。這一研究確保一些潛在的重要微生物在危險(xiǎn)評(píng)估中不被遺漏，為以后化妝品制劑碳酸鈣中微生物的進(jìn)一步研究奠定了基礎(chǔ)。

2.5 454測(cè)序技術(shù)在其他方面的應(yīng)用

近幾年，454測(cè)序技術(shù)開始被運(yùn)用于極端環(huán)境微生物的研究，Hollister［25］采用該方法研究La Sal del Rey鹽湖底部沉積物中微生物群落結(jié)構(gòu)。與克隆方法相比，454測(cè)序發(fā)現(xiàn)了許多新的類群。結(jié)合這2種方法，使得實(shí)驗(yàn)結(jié)果更具可靠性。此研究不僅證實(shí)了微生物群落結(jié)構(gòu)與所在湖泊位置、磷、有機(jī)碳濃聚物及pH值有密切關(guān)系，而且顯示了運(yùn)用高通量測(cè)序技術(shù)研究復(fù)雜生態(tài)系統(tǒng)的價(jià)值。除此之外，Edwards［26］對(duì)美國(guó)明尼蘇達(dá)州Soudan礦井中2個(gè)位點(diǎn)的水和沉積物的宏基因組進(jìn)行分析，此2個(gè)位點(diǎn)地理位置鄰近而化學(xué)和水文地質(zhì)差異顯著。454測(cè)序結(jié)果顯示，2個(gè)位點(diǎn)的微生物代謝能力差異顯著，大多數(shù)微生物的新陳代謝能力與所在環(huán)境的地化條件有關(guān)，該礦井中的微生物群落與其他環(huán)境中的微生物群落是完全不同的。

科學(xué)家們相信，極端微生物是這個(gè)星球留給人類獨(dú)特的生物資源和極其珍貴的研究材料。開展極端微生物的研究，對(duì)于揭示生物圈起源的奧秘，闡明生物多樣性形成的機(jī)制，認(rèn)識(shí)生命的極限及其與環(huán)境的相互作用的規(guī)律等，都具有極為重要的科學(xué)意義。454測(cè)序技術(shù)為極端環(huán)境微生物的研究也帶來了極大的便利，使得那些極端環(huán)境中的稀有微生物得以被描述，為了解生命極限和微生物適應(yīng)機(jī)制，以及嗜極微生物資源的開發(fā)奠定了基礎(chǔ)。

3 結(jié)語與展望

到目前為止，大量的研究者應(yīng)用454測(cè)序技術(shù)對(duì)多種環(huán)境樣品的微生物多樣性進(jìn)行了深入研究，這些研究大大增長(zhǎng)了人類對(duì)微生物的存在和種類的認(rèn)識(shí)。針對(duì)不同的研究對(duì)象，454測(cè)序技術(shù)不僅為研究提供了大量數(shù)據(jù)，證實(shí)研究對(duì)象所含微生物具有較高的多樣性，而且還建立了一種研究復(fù)雜生態(tài)系統(tǒng)里的微生物多樣性方法。云南大學(xué)云南省微生物研究所始終致力于極端環(huán)境微生物資源的挖掘。目前，結(jié)合傳統(tǒng)克隆文庫法和454測(cè)序技術(shù)深入系統(tǒng)地研究云南多種高鹽環(huán)境中微生物的多樣性，發(fā)現(xiàn)454測(cè)序技術(shù)獲得了大量克隆方法無法檢測(cè)到的新的細(xì)菌類群和古菌類群，而所需的時(shí)間縮短到原來的1/3，獲得的數(shù)據(jù)量是同等經(jīng)費(fèi)下采用克隆方法所得數(shù)據(jù)量的近50倍，建立了應(yīng)用454測(cè)序技術(shù)研究極端高鹽環(huán)境的方法體系。

截止到2011年9月，羅氏公布了1 400多篇利用Genome Sequencer系統(tǒng)的、經(jīng)同行評(píng)議發(fā)表的高水平論文［27］。這些文章中許多發(fā)表于Nature、Science、Cell、Genome Research、PNAS等高水平雜志上。研究人員正利用454測(cè)序的高準(zhǔn)確率和超長(zhǎng)序列讀長(zhǎng)來迅速獲得高質(zhì)量DNA序列。這些研究跨越了測(cè)序應(yīng)用的多個(gè)方面，包括比較基因組學(xué)的從頭測(cè)序和重測(cè)序;小分子RNA研究;宏基因組測(cè)序;轉(zhuǎn)錄組圖譜分析(包括全轉(zhuǎn)錄組拼接和表達(dá)圖譜);染色體結(jié)構(gòu)和表觀遺傳學(xué);有關(guān)稀有變異檢測(cè)的超深度測(cè)序;研究古老DNA;微生物大規(guī)模鑒定、分型和突變的研究等。

多種多樣的應(yīng)用彰顯出454測(cè)序系統(tǒng)應(yīng)對(duì)重要研究領(lǐng)域的能力。但由于該技術(shù)剛剛起步因此也存在一些有待改善的問題，如在測(cè)定一連串相同核苷酸時(shí)容易產(chǎn)生錯(cuò)誤;由于其依賴于包含一系列酶的焦磷酸檢測(cè)，與其他第2代測(cè)序技術(shù)相比，其試劑價(jià)格相對(duì)較高。同時(shí)，序列讀長(zhǎng)較短也是限制該技術(shù)應(yīng)用的原因之一。

雖然存在許多不足，454測(cè)序技術(shù)仍以其強(qiáng)大的測(cè)序能力滲透到生命科學(xué)研究的方方面面，包括那些此前無法用測(cè)序來解決的領(lǐng)域。在微生物生態(tài)學(xué)領(lǐng)域，憑借著454測(cè)序技術(shù)各方面的優(yōu)勢(shì)，終究將成為未來研究環(huán)境基因組的主導(dǎo)測(cè)序技術(shù)，同時(shí)，隨著454技術(shù)的不斷完善，該技術(shù)將為微生物生態(tài)學(xué)研究注入新的動(dòng)力，成為微生物生態(tài)學(xué)研究新的亮點(diǎn)，大大加速微生物生態(tài)學(xué)的發(fā)展，增長(zhǎng)人類對(duì)微生物生態(tài)學(xué)的認(rèn)識(shí)，為人類探索廣袤的微生物資源提供無限遐想。

［1］ Oliver JD.The viable but nonculturable state in bacteria［J］.Journal of Microbiology，2005，(43)：93-100.

［2］ Sanger F，Nicklen S，Coulson AR.DNA sequencing with chain-terminating inhibitors［J］.Proceedings of the National A-cademy of Sciences of the United State of America，1977，74(12)：5463-5467.

［3］ Shendure J，Ji H.Next-generation DNA sequencing［J］.Nature Biotechnology，2008，26(10)：1135-1145.

［4］ http：//camera.calit2.net/.

［5］ http：//www.mothur.org/.

［6］ http：//bmf2.colorado.edu/fastunifrac/index.Psp

［7］ Roesch LF，F(xiàn)ulthorpe RR，Riva A，et al.Pyrosequencing enumerates and contrasts soil microbial diversity［J］.The ISME Journal，2007，1(4)：283-290.

［8］ Campbell BJ，Polson SW，Hanson TE，et al.The effect of nutrient deposition on bacterialcommunities in Arctic tundra soil［J］.Environmental Microbiology，2010，12(7)：1842-1854.

［9］ Lim YM，Kim BK，Kim C，et al.Assessment of soil fungal communities using pyrosequencing［J］.Journal of Microbiology，2010，48(3)：284-289.

［10］ He ZL，Xu MY，Deng Y，et al.Metagenomic analysis reveals a marked divergence in the structure of belowground microbial communities at elevated CO2［J］.Ecology Letters，2010，13(5)：564-575.

［11］ Leininger S，Urich T，Schloter M，et al.Archaea predominate among ammonia-oxidizing prokaryotes in soils［J］.Nature，2006，442(7104)：806-809.

［12］ Sogin ML，Morrison HG，Huber JA，et al.Microbial diversity in the deep sea and the underexplored“rare biosphere”［J］.Proceedings of the National Academy of Sciences of the United State of America，2008，103(32)：12115-12120.

［13］ Huber JA，Mark Welch DB，Morrison HG，et al.Microbial population structures in the deep marine biosphere［J］.Science，2007，318(5847)：97-100.

［14］ Gaidos E，Rusch A，Ilardo M.Ribosomal tag pyrosequencing of DNA and RNA from benthic coral reef microbiota：community spatial structure，rare members and nitrogen-cycling guilds［J］.Environmental Microbiology，2011，13(5)：1138-1152.

［15］ Dinsdale EA，Pantos O，Smriga S，et al.Microbial ecology of four coral atolls in the northern line islands［J］.PLoS ONE，2008，3(2)：e1584.

［16］ Dos Santos HF，Cury JC，Do Carmo FL，et al.Mangrove bacterial diversity and the impact of oil contamination revealed by pyrosequencing：bacterial proxies for oil pollution［J］.PLoS ONE，2011，6(3)：e16943.

［17］ Angly FE，F(xiàn)elts B，Breitbart M，et al.The marine viromes of four oceanic regions［J］.PLOS BIOLOGY，2006，4：e3681.

［18］ Jaenicke S，Ander C，Bekel T，et al.Comparative and joint analysis of two metagenomic datasets from a biogas fermenter obtained by 454-Pyrosequencing［J］.PLoS ONE，2011，6(1)：e14519.

［19］ Sanapareddy N，Hamp TJ，Gonzalez LC，et al.Molecular diversity of a North Carolina wastewater treatment plant as revealed by pyrosequencing［J］.Applied and Environmental Microbiology，2009，75(6)：1688-1696.

［20］ Kwon，Soondong，Kim TS，et al.Bacterial community composition and diversity of a Full-Scale Integrated Fixed-Film Activated Sludge System as investigated by Pyrosequencing［J］.Journal of Microbiology and Biotechnology，2010，20(12)：1717-1723.

［21］ Li XR，Ma EB，Yan LZ，et al.Bacterial and fungal diversity in the traditional Chinese liquor fermentation process［J］.International Journal of Food Microbiology，2011，146(1)：31-37.

［22］ Lopez-Velasco G，Welbaum GE，Boyer RR，et al.Changes in spinach phylloepiphytic bacteria communities following minimal processing and refrigerated storage described using pyrosequencing of 16S rRNA amplicons［J］.Journal of Applied Microbiology，2011，110(5)：1203-1204.

［23］Telias A，White JR，Pahl DM，et al.Bacterial community diversity and variation in spray water sources and the tomato fruit surface［J］.BMC Microbiology，2011，11：81.

［24］ Maiuta N，Schwarzentruber P.Molecular detection of bacteria in calcium carbonate powder used in cosmetic formulations［J］.International Journal of Cosmetic Science，2011.Article first published online：8 MAR 2011 DOI：10.1111/j.1468-2494.2011.00648.x

［25］ Hollister EB，Engledow SA，Hammett AJM，et al.Shifts in microbial community structure along an ecological gradient of hypersaline soils and sediments［J］.The ISME Journal，2010，4：829-838.

［26］ Edwards RA，Rodriguez-Brito B，Wegley L，et al.Using pyrosequencing to shed light on deep mine microbial ecology［J］.BMC Genomics，2006，7：57.

［27］ http：//www.my454.com/.