国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

木質(zhì)素次生代謝工程的研究概況和進(jìn)展

2011-08-05 04:50胡永勝陳萬生第二軍醫(yī)大學(xué)長征醫(yī)院藥學(xué)部上海0003第二軍醫(yī)大學(xué)生藥學(xué)教研室上海00433第二軍醫(yī)大學(xué)現(xiàn)代中藥研究中心上海00433解放軍第118醫(yī)院藥械科浙江溫州35000
藥學(xué)實(shí)踐雜志 2011年4期
關(guān)鍵詞:輔酶肉桂木質(zhì)素

胡永勝,肖 瑩,邸 鵬,張 磊,陳萬生(1.第二軍醫(yī)大學(xué)長征醫(yī)院藥學(xué)部,上海 0003;.第二軍醫(yī)大學(xué)生藥學(xué)教研室,上海 00433;3.第二軍醫(yī)大學(xué)現(xiàn)代中藥研究中心,上海 00433;4.解放軍第118醫(yī)院藥械科,浙江 溫州 35000)

木質(zhì)素(lignin)是一種由肉桂醇等單體聚合而成的酚類多聚體,是維管植物細(xì)胞壁的重要組成成分[1,2]。木質(zhì)素與半纖維素以共價(jià)鍵結(jié)合,具有加固細(xì)胞壁的機(jī)械強(qiáng)度,增強(qiáng)植物的抗倒伏性,提高植物細(xì)胞運(yùn)輸能力以及抵御病原菌微生物侵害的生物學(xué)功能[3]。木質(zhì)素在造紙業(yè)制漿、飼料易消化性、植物燃料等方面有著廣泛的研究需求,急需解決的難題是,如何減少植物中木質(zhì)素的含量或者改變其種類使之容易降解。在過去的二十年間,越來越多的研究基于調(diào)控木質(zhì)素單體次生代謝通路中某個(gè)基因的表達(dá),來改變木質(zhì)素的含量與組成,以及改良植物的應(yīng)用特性。本文對(duì)近年來在木質(zhì)素次生代謝工程方面的新概念、新趨勢,以及木質(zhì)素研究中的系統(tǒng)生物學(xué)做一簡要綜述。

1 木質(zhì)素結(jié)構(gòu)及生源合成途徑

木質(zhì)素是一類組成和結(jié)構(gòu)十分復(fù)雜的高分子量肉桂醇脫氫聚合物,其單體主要有對(duì)-香豆醇(ρcoumaryl alcohol)、松柏醇(coniferyl alcohol)與芥子醇(sinapyl alcohol)[1]。裸子植物中木質(zhì)素主要為愈創(chuàng)木基木質(zhì)素(guaiacyl lignin,簡稱G型),由松柏醇聚合而成,而被子植物木質(zhì)素主要為G型和紫丁香基木質(zhì)素(syringyl lignin,簡稱S型),分別由對(duì)-香豆醇和芥子醇聚合而成。單子葉植物中木質(zhì)素除了 G型和 S型外,還有對(duì)-羥基苯基木質(zhì)素(hydroxyphenyl lignin,簡稱 H型),由對(duì)-香豆醇聚合而成。

植物中木質(zhì)素單體的生源合成途徑已經(jīng)探明(圖 1)[4,5],木質(zhì)素合成以苯丙氨酸解氨酶(phenylalanine ammonia-lyase,PAL)催化苯丙氨酸脫氨形成肉桂酸起始,再經(jīng)肉桂酸-4-羥基化酶(cinnamic acid 4-hydroxylase,C4H)催化生成對(duì)香豆酸,4-香豆酸:輔酶A連接酶(4-coumarate coenzyme A ligase,4CL)催化對(duì)香豆酸生成對(duì)香豆酰輔酶A,在莽草酸/奎寧酸羥基肉桂酰轉(zhuǎn)移酶(ρ-hydroxycinnamoyl-CoA:quinate shikimate ρ-hydroxycinnamoyl-transferase,HCT)與香豆酸-3-羥基化酶(Coumarate 3-hydroxylase,C3H)的催化下生成咖啡酰輔酶A,在咖啡酰輔酶A氧甲基轉(zhuǎn)移酶(Caffeoyl-CoA O-methyltransferase,CCoAOMT)咖啡酸氧甲基轉(zhuǎn)移酶(Caffeic acid/5-hydroxyconiferaldehyde O-methyltransferase,COMT)催化下發(fā)生甲基化,及在阿魏酸-5-羥基化酶(Ferulate-5-hydroxylase,F(xiàn)5H)催化下羥基化,經(jīng)肉桂酰輔酶A還原酶(Cinnamoyl-CoA reductase,CCR)催化還原成相應(yīng)的肉桂醛,最終經(jīng)肉桂醇脫氫酶(Cinnamyl alcohol dehydrogenase,CAD)還原為3種肉桂醇,它們分別是對(duì)-香豆醇(ρ-Coumaryl alcohol)、松柏醇(Coniferyl alcohol))和芥子醇(Sinapyl alcohol)。然后三種木質(zhì)素單體在某種機(jī)制下轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞壁,在過氧化酶(Peroxidase)和漆酶(Laccase)的作用下脫氫聚合成木質(zhì)素。研究表明,H/G/S型木質(zhì)素的含量可以被調(diào)控。HCT、C3H低表達(dá)會(huì)使在天然木質(zhì)素占較小比例的H型木質(zhì)素增多[6,7];F5H低表達(dá)則會(huì)使木質(zhì)素主要為G型,高表達(dá)主要S型;COMT低表達(dá)會(huì)減少S型木質(zhì)素的比例,同時(shí)使木質(zhì)素中5-羥基松柏醇的含量增多;CAD的低表達(dá)會(huì)使天然木質(zhì)素中肉桂醛的含量增多[1,8];這些都佐證了木質(zhì)素單體的生源合成途徑。

圖1 木質(zhì)素的生源合成途徑

2 相關(guān)酶基因的研究進(jìn)展

2.1 苯丙氨酸解氨酶(PAL)是木質(zhì)素單體生源合成中的第一個(gè)關(guān)鍵酶,催化苯丙氨酸脫氨生成肉桂酸,是木質(zhì)素單體化合物生源合成途徑的起始,是整個(gè)苯丙烷類代謝途徑中的關(guān)鍵酶和限速酶[9]。植物中PAL一般認(rèn)為屬于多基因家族,至少有3到4個(gè)亞型[10]。PAL參與植物應(yīng)激與防御生理,是最早被鑒定的植物防御性基因之一,受病原和環(huán)境脅迫等因素誘導(dǎo)表達(dá)[11]。

2.2 肉桂酸-4-羥基化酶(C4H)屬于細(xì)胞色素單加氧酶P450超家族,是公共苯丙烷途徑中的第二個(gè)關(guān)鍵酶,催化反式肉桂酸轉(zhuǎn)變?yōu)棣?羥基肉桂酸。利用反義技術(shù)將C4H酶活性抑制后,轉(zhuǎn)基因植物的木質(zhì)素含量明顯減少,調(diào)控該基因的表達(dá)還可以改變木質(zhì)素的構(gòu)成。通過上調(diào)C4H的表達(dá),促進(jìn)木質(zhì)素、防衛(wèi)性植保素的合成,可以增強(qiáng)植物的抗病性、抗逆性和抗倒伏性。C4H處于木質(zhì)素整個(gè)代謝途徑的較上游,與PAL、4CL 2個(gè)酶組成苯丙烷類代謝公共途徑,是調(diào)控木質(zhì)素生源合成的重要酶基因。

2.3 4-香豆酸 輔酶A連接酶(4CL)是苯丙烷代謝途徑的最后一個(gè)酶,在苯丙烷代謝途徑中處于終端位置,催化4-香豆酸生成4-香豆酰輔酶A,后者是多個(gè)代謝途徑的重要前體,繼而合成植物體內(nèi)重要的多種天然產(chǎn)物,如黃酮、類黃酮、木質(zhì)素、色素、芪類以及其它酚酸類化合物[12]。這些次生代謝產(chǎn)物在植物體內(nèi)起著重要的作用,如黃酮是防止紫外對(duì)植物的損傷,或者作為花粉發(fā)育和植物與微生物相互作用的信號(hào)分子;芪類可以保護(hù)植物細(xì)胞抗病蟲侵襲;木質(zhì)素是具有多種藥理活性的物質(zhì),具有重要的藥用價(jià)值。已有開展4CL轉(zhuǎn)基因的報(bào)道,如利用反義技術(shù)抑制了楊樹中4CL酶的活性,使轉(zhuǎn)基因楊樹木質(zhì)素含量降低50%,纖維素提高了15%,而木質(zhì)素的成分和纖維素的形態(tài)沒有變化[13]。

2.4 莽草酸/奎寧酸羥基肉桂酰轉(zhuǎn)移酶(HCT)、香豆酸-3-羥基化酶(C3H)共同作用下將底物4-香豆酰輔酶A酯的3位羥基化。HCT與C3H的作用有協(xié)同效應(yīng),HCT屬于轉(zhuǎn)移酶系,催化莽草酸/奎寧酸與4-香豆酰輔酶A酯發(fā)生轉(zhuǎn)移置換,其產(chǎn)物為香豆??鼘幩岷拖愣辊CР菟?。C3H屬于P450氧化酶系,CYP98A3基因編碼C3H,實(shí)驗(yàn)證明C3H對(duì)香豆??鼘幩岷拖愣辊CР菟岜憩F(xiàn)出很高的催化活性[14]。以后又從火炬松(AAV36 223.1)、落葉松(ACA35 323.1)中分離得到C3H。

2.5 肉桂酰輔酶A還原酶(CCR)是木質(zhì)素特異合成途徑的第一個(gè)關(guān)鍵酶,可催化3種羥基肉桂酸的輔酶A酯的還原成相應(yīng)的肉桂醛。苯丙烷公共途徑可以產(chǎn)生黃酮、類黃酮、原花青素、木質(zhì)素等次生代謝產(chǎn)物,CCR催化生成木質(zhì)素特異合成途徑是一個(gè)分支途徑,CCR可能對(duì)木質(zhì)素合成途徑的碳流具有潛在的調(diào)控作用,對(duì)木質(zhì)素單體的生源合成起著重要作用。

2.6 肉桂醇脫氫酶(CAD)催化肉桂醛生成肉桂醇,處于對(duì)-香豆醇、松柏醇和芥子醇生源合成最終位置,是木質(zhì)素單體生源合成途徑的關(guān)鍵酶基因。已經(jīng)從多種植物中分離得到肉桂醇脫氫酶基因,例如歐洲云杉(AJ868 574)、藍(lán)桉(AF038 561)、黑麥草(AJ585 090)、柳葉桉(AF294 793)、草莓(U63 534)、美洲山楊(AF217 957)、甘蔗(AJ231 135)和紫花苜蓿(Z19 573)。

2.7 咖啡酸氧甲基轉(zhuǎn)移酶(COMT)、咖啡酰輔酶A氧甲基轉(zhuǎn)移酶(CCoAOMT)都是底物甲基化酶,木質(zhì)素單體生源合成需經(jīng)3'和5'位置的兩步甲基化反應(yīng),COMT與CCoAOMT是兩個(gè)不同底物水平上的甲基化酶,與木質(zhì)素單體的特異合成有關(guān)。COMT催化S型木質(zhì)素單體合成,是S型木質(zhì)素單體合成的重要的調(diào)控基因[15]。CCoAOMT則是催化G型木質(zhì)素單體合成,是G型木質(zhì)素單體合成的重要調(diào)控基因[3]。COMT與CCoAOMT基因調(diào)控在S/G型木質(zhì)素比例的基因調(diào)控中具有重要的意義。

2.8 阿魏酸-5-羥基化酶(F5H)隸屬于細(xì)胞色素P450酶系,催化阿魏酸5位羥基化。研究表明,缺乏F5H活性的擬南芥fah1突變體重幾乎全部為G型木質(zhì)素;相應(yīng)地,過量表達(dá)F5H的轉(zhuǎn)基因擬南芥、煙草和楊樹中S型木質(zhì)素的含量顯著增加,G型木質(zhì)素相對(duì)減少[16,17]。可以推測,F(xiàn)5H 是 G 型與S型木質(zhì)素的生源合成途徑上重要的導(dǎo)向性調(diào)控基因。

2.9 過氧化酶、漆酶可以有效地催化木質(zhì)素單體脫氫聚合形成木質(zhì)素。最初證明漆酶在有氧條件下能夠催化產(chǎn)生木質(zhì)素,以后又發(fā)現(xiàn)過氧化酶也可有效催化木質(zhì)素的聚合反應(yīng)。

3 木質(zhì)素系統(tǒng)生物學(xué)研究

對(duì)木質(zhì)素突變體的轉(zhuǎn)錄水平及代謝特征的研究表明,木質(zhì)素生源合成途徑中任何一個(gè)基因的表達(dá)改變都會(huì)對(duì)植物的次生代謝產(chǎn)生深遠(yuǎn)的影響。

首先,木質(zhì)素次生代謝通路中某個(gè)基因的表達(dá)下調(diào),或多或少地會(huì)影響到該基因家族中的基因或是木質(zhì)素代謝通路中的相關(guān)基因的表達(dá)[18,19]。整個(gè)代謝通路是一個(gè)網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),局部的改變會(huì)影響到整個(gè)代謝流的變化。

其次,越來越多的研究表明,木質(zhì)素的次生代謝與參與植物細(xì)胞壁形成的其它多聚物具有重要的聯(lián)系[20,21]。例如,CCR 低表達(dá)的轉(zhuǎn)基因楊樹中,與前期的木質(zhì)素次生代謝研究結(jié)論相同,木質(zhì)素含量減少了;然而通過轉(zhuǎn)錄組學(xué)及代謝組學(xué)分析表明,CCR的低表達(dá)也能導(dǎo)致植物細(xì)胞中木糖的合成量減少[22]。因此,探究木質(zhì)素途徑中基因的功能多樣性與植物細(xì)胞壁的形成特性之間的關(guān)系,對(duì)闡述植物細(xì)胞壁的屬性及如何改造植物便于農(nóng)業(yè)、工業(yè)應(yīng)用,具有重要的意義。

第三,采用系統(tǒng)生物學(xué)方法提示了木質(zhì)素次生代謝與環(huán)境代謝之間的互動(dòng)性,例如研究植物的正常代謝及在環(huán)境脅迫下應(yīng)激代謝[23]。如CCR低表達(dá)的轉(zhuǎn)基因煙草,淀粉代謝及光呼吸作用增強(qiáng),釋放的二氧化碳增多,體內(nèi)的碳?xì)浠衔锵脑龆啵?4]。深入研究木質(zhì)素次生代謝工作調(diào)控中的植物分子生理學(xué)響應(yīng),有利用采用基因工程策略(如基因疊加技術(shù))來消除這些不良的應(yīng)激反應(yīng)[25]。

第四,對(duì)木質(zhì)素突變體植株的轉(zhuǎn)錄水平分析發(fā)現(xiàn)了一些新基因,其功能與木質(zhì)素的次生代謝有重要關(guān)聯(lián)。各種各樣的轉(zhuǎn)錄譜研究表明,有大量的調(diào)控基因參與木質(zhì)素的次生代謝過程[22,26],但得到確證的基因數(shù)量還不多。然而可以確信的是MYB和LIM家族的轉(zhuǎn)錄因子對(duì)植物中木質(zhì)素次生代謝途徑中基因具有間接的調(diào)控作用,是一類重要的調(diào)控因子。

4 木質(zhì)素調(diào)控新策略

植物木質(zhì)素生源合成調(diào)控的研究熱點(diǎn)在于如何使木質(zhì)素更易于去除,從而利于造紙業(yè)制漿、飼料易消化性、植物燃料等方面的應(yīng)用。參與木質(zhì)素合成的酶有許多,常規(guī)的調(diào)控方法在于獲得該途徑上的酶基因,隨后構(gòu)建其表達(dá)載體,并利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)入植物體內(nèi)進(jìn)行表達(dá),最后采用分析技術(shù)監(jiān)測木質(zhì)素含量及組成的變化。此類方法的弊端在于植物體內(nèi)的代謝是一個(gè)復(fù)雜的過程,單轉(zhuǎn)高表達(dá)某個(gè)基因的作用可能并不明顯。近年來,出現(xiàn)了以轉(zhuǎn)錄因子為研究對(duì)象的新的調(diào)控策略。

木質(zhì)素生源合成途徑中基因的AC因子發(fā)現(xiàn)有與玉米MYB相關(guān)P蛋白結(jié)合位點(diǎn)CCT/AACC。此外,金魚草的MYB305可以與AC因子結(jié)合,因而能激活扁豆PAL2的啟動(dòng)子中AC因子序列,上調(diào)PAL2 的表達(dá)[27,28]。可以推論,木質(zhì)素生源合成途徑的基因調(diào)控中,與AC因子結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子也是MYB蛋白。對(duì)金魚草中的MYB308蛋白和MYB330蛋白研究表明MYB蛋白參與調(diào)控木質(zhì)素的生源合成[29]。在轉(zhuǎn)基因煙草中過量表達(dá)金魚草MYB蛋白,能夠下調(diào)木質(zhì)素途徑中的基因的表達(dá)和減少木質(zhì)素的含量,提示金魚草MYB蛋白可以調(diào)控木質(zhì)素生源合成。此后,從擬南芥[30]中獲得許多的MYB蛋白,過量表達(dá)這些MYB蛋白也能改變苯丙素的次生代謝途徑。Kawaoka等[31]報(bào)道轉(zhuǎn)錄因子LIM1對(duì)木質(zhì)素的生物合成也具有重要的調(diào)控作用,利用反義技術(shù)構(gòu)建的擬南芥植株NtLIM1突變體,發(fā)現(xiàn)木質(zhì)素途徑中相關(guān)合成酶的轉(zhuǎn)錄處于較低的水平,總木質(zhì)素的含量下降了27%。以轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控可以在代謝途徑中的多個(gè)位點(diǎn)發(fā)揮調(diào)控作用,與傳統(tǒng)單一位點(diǎn)調(diào)控措施相比,具有更好的調(diào)控效果。

5 植物木質(zhì)素的研究展望

近年來伴隨植物新能源的研究逐漸深入,木質(zhì)素日益成為研究重點(diǎn)。木質(zhì)素的代謝是一個(gè)復(fù)雜的過程,人們對(duì)其代謝通路確證經(jīng)過多次修正,木質(zhì)素單體的結(jié)構(gòu)類型也遠(yuǎn)遠(yuǎn)不止3種類型。木質(zhì)素作為植物對(duì)抗外界環(huán)境脅迫的重要的抗逆物質(zhì),在植物的正常發(fā)育中具有重要的作用,在對(duì)木質(zhì)素次生代謝工程調(diào)控時(shí)需要考慮到對(duì)植物生理的影響。木質(zhì)素系統(tǒng)生物學(xué)是一個(gè)新興的研究領(lǐng)域,采用系統(tǒng)論的觀點(diǎn),綜合考慮了木質(zhì)素次生代謝各種影響因素,利用傳統(tǒng)的基因過量或抑制表達(dá)具有一定的局限性,采用RNAi和轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控手段來進(jìn)行植物木質(zhì)素次生代謝工程調(diào)控將是大勢所趨。

[1]Boerjan W,Ralph J,Baucher M.Lignin biosynthesis[J].Annu Rev Plant Biol,2003,54:519.

[2]Ralph J,Lundquist K,Brunow G,et al.Lignins:natural polymers from oxidative coupling of 4-hydroxyphenyl-propanoids[J].Phytochemistry Reviews,2004,3(1):29.

[3]Guo D,Chen F,Inoue K,et al.Downregulation of caffeic acid 3-O-methyltransferase and caffeoyl CoA 3-O-methyltransferase in transgenic alfalfa:impacts on lignin structure and implications for the biosynthesis of G and S lignin[J].The Plant Cell Online,2001,13(1):73.

[4]Bayindir U,Alfermann AW,F(xiàn)uss E.Hinokinin biosynthesis in Linum corymbulosum Reichenb[J].Plant J,2008,55(5):810.

[5]Vanholme R,Morreel K,Ralph J,et al.Lignin engineering[J].Curr Opin Plant Biol,2008,11(3):278.

[6]Ralph J,Akiyama T,Kim H,et al.Effects of coumarate 3-hydroxylase down-regulation on lignin structure[J].J Biol Chem,2006,281(13):8843.

[7]Wagner A,Ralph J,Akiyama T,et al.Exploring lignification in conifers by silencing hydroxycinnamoyl-CoA:shikimate hydroxycinnamoyltransferase in Pinus radiata[J].Proceedings of the National Academy of Sciences,2007,104(28):11856.

[8]Baucher M,Halpin C,Petit-Conil M,et al.Lignin:genetic engineering and impact on pulping[J].Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology,2003,38(4):305.

[9]Butland SL,Chow ML,Ellis BE.A diverse family of phenylalanine ammonia-lyase genes expressed in pine trees and cell cultures[J].Plant Mol Biol,1998,37(1):15.

[10]Kumar A,Ellis BE.The phenylalanine ammonia-lyase gene family in raspberry.Structure,expression,and evolution[J].Plant Physiol,2001,127(1):230.

[11]Lee BK,Park MR,Srinivas B,et al.Induction of phenylalanine ammonia-lyase gene expression by paraquat and stress-related hormones in Rehmannia glutinosa[J].Mol Cells,2003,16(1):34.

[12]Ehlting J,Shin JJ,Douglas CJ.Identification of 4-coumarate:coenzyme A ligase(4CL)substrate recognition domains[J].Plant J,2001,27(5):455.

[13]Hu WJ,Harding SA,Lung J,et al.Repression of lignin biosynthesis promotes cellulose accumulation and growth in transgenic trees[J].Nat Biotechnol,1999,17(8):808.

[14]Schoch G,Goepfert S,Morant M,et al.CYP98A3 from Arabidopsis thaliana is a 3'-hydroxylase of phenolic esters,a missing link in the phenylpropanoid pathway[J].J Biol Chem,2001,276(39):36566.

[15]Anterola A,Lewis N.Trends in lignin modification:a comprehensive analysis of the effects of genetic manipulations/mutations on lignification and vascular integrity[J].Phytochemistry,2002,61(3):221.

[16]Chen F,Yasuda S,F(xiàn)ukushima K.Evidence for a novel biosynthetic pathway that regulates the ratio of syringyl to guaiacyl residues in lignin in the differentiating xylem of Magnolia kobus DC[J].Planta,1999,207(4):597.

[17]Ruegger M,Meyer K,Cusumano J,et al.Regulation of ferulate-5-hydroxylase expression in Arabidopsis in the context of sinapate ester biosynthesis[J].Plant Physiology,1999,119(1):101.

[18]Dauwe R,Morreel K,Goeminne G,et al.Molecular phenotyping of lignin-modified tobacco reveals associated changes in cellwall metabolism,primary metabolism,stress metabolism and photorespiration[J].Plant Journal,2007,52(2):263.

[19]Wadenback J,von Arnold S,Egertsdotter U,et al.Lignin biosynthesis in transgenic Norway spruce plants harboring an antisense construct for cinnamoyl CoA reductase(CCR)[J].Transgenic Res,2008,17(3):379.

[20]Abdulrazzak N,Pollet B,Ehlting J,et al.A coumaroyl-ester-3-hydroxylase insertion mutant reveals the existence of nonredundant meta-hydroxylation pathways and essential roles for phenolic precursors in cell expansion and plant growth[J].Plant Physiol,2006,140(1):30.

[21]Sibout R,Eudes A,Mouille G,et al.Cinnamyl alcohol dehydrogenase-C and-D are the primary genes involved in lignin biosynthesis in the floral stem of Arabidopsis[J].The Plant Cell Online,2005,17(7):2059.

[22]Leple J,Dauwe R,Morreel K,et al.Downregulation of cinnamoyl-coenzyme A reductase in poplar:multiple-level phenotyping reveals effects on cell wall polymer metabolism and structure[J].The Plant Cell Online,2007,19(11):3669.

[23]Leple JC,Dauwe R,Morreel K,et al.Downregulation of cinnamoyl-coenzyme A reductase in poplar:multiple-level phenotyping reveals effects on cell wall polymer metabolism and structure[J].Plant Cell,2007,19(11):3669.

[24]Rohde A,Morreel K,Ralph J,et al.Molecular phenotyping of the pal1 and pal2 mutants of Arabidopsis thaliana reveals farreaching consequences on phenylpropanoid,amino acid,and carbohydrate metabolism[J].Plant Cell,2004,16(10):2749.

[25]Halpin C,Boerjan W.Stacking transgenes in forest trees[J].Trends Plant Sci,2003,8(8):363.

[26]Koutaniemi S,Warinowski T,K rk nen A,et al.Expression profiling of the lignin biosynthetic pathway in Norway spruce using EST sequencing and real-time RT-PCR[J].Plant Molecular Biology,2007,65(3):311.

[27]Sablowski R,Baulcombe D,Bevan M.Expression of a flowerspecific Myb protein in leaf cells using a viral vector causes ectopic activation of a target promoter[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1995,92(15):6901.

[28]Sablowski R,Moyano E,Culianez-Macia F,et al.A flower-specific Myb protein activates transcription of phenylpropanoid biosynthetic genes[J].The EMBO Journal,1994,13(1):128.

[29]Tamagnone L,Merida A,Parr A,et al.The AmMYB308 and AmMYB330 transcription factors from Antirrhinum regulate phenylpropanoid and lignin biosynthesis in transgenic tobacco[J].The Plant Cell Online,1998,10(2):135.

[30]Borevitz JO,Xia Y,Blount J,et al.Activation tagging identifies a conserved MYB regulator of phenylpropanoid biosynthesis[J].Plant Cell,2000,12(12):2383.

[31]Kawaoka,A,Kaothien P,Yoshida K,et al.Functional analysis of tobacco LIM protein Ntlim1 involved in lignin biosynthesis[J].Plant J,2000.22(4):289.

猜你喜歡
輔酶肉桂木質(zhì)素
◎維美德為Mercer Rosenthal公司交付木質(zhì)素提取生產(chǎn)線
國家藥監(jiān)局關(guān)于修訂輔酶Q10注射劑說明書的公告(2022年第11號(hào))
肉桂精油和肉桂醛的抑菌、抗氧化和酪氨酸酶抑制活性研究
雙鹽離子液體處理過程中木質(zhì)素的結(jié)構(gòu)變化
體寒的人吃點(diǎn)肉桂
木質(zhì)素低共熔溶劑分離、功能材料制備及應(yīng)用研究進(jìn)展
吃輔酶Q10有禁忌
木質(zhì)素清潔高效分離研究進(jìn)展
肉桂全身都是寶
吃輔酶Q10有禁忌
平潭县| 喀喇| 舟山市| 吴堡县| 两当县| 陆良县| 神木县| 佛山市| 抚顺县| 夹江县| 庆阳市| 兴城市| 奇台县| 彭泽县| 施秉县| 镇宁| 榆社县| 响水县| 天镇县| 岚皋县| 四川省| 德州市| 东乌珠穆沁旗| 宁都县| 万年县| 弋阳县| 虎林市| 睢宁县| 海城市| 灌阳县| 宜兰县| 柘荣县| 康乐县| 平阴县| 白水县| 乌拉特后旗| 韩城市| 澄江县| 田阳县| 遂溪县| 黔江区|