劉穎坤,蔡莎藝,喻衛(wèi)武,冷華南,桂仁意
(1.浙江農(nóng)林大學(xué) 亞熱帶森林培育國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室培育基地,浙江 臨安 311300;2.浙江省湖州市林業(yè)局,浙江 湖州 313000)
毛竹Phyllostachys pubescens可以隔年連續(xù)采伐及永續(xù)利用,生長(zhǎng)速度快,經(jīng)濟(jì)用途非常廣泛,是當(dāng)?shù)剞r(nóng)民經(jīng)濟(jì)收入的重要來(lái)源[1]。鋁不是植物必需的營(yíng)養(yǎng)元素,微量的鋁(3~13 mg·L-1)可以刺激一些植物的生長(zhǎng),質(zhì)量濃度偏高便會(huì)發(fā)生毒害作用[2]。鋁的毒害是酸性土壤限制作物產(chǎn)量的主要因子之一[3]。土壤中的鋁多數(shù)通常以硅酸鹽態(tài)或氧化態(tài)存在,對(duì)植物沒(méi)有毒害作用[4]。當(dāng)土壤的酸堿度低于pH 5.0時(shí),鋁的可溶性狀態(tài)便會(huì)增強(qiáng),形成 Al3+,Al(OH)2+和 Al(OH)2+等離子,對(duì)植物產(chǎn)生毒害作用[5]?,F(xiàn)行的集約經(jīng)營(yíng)方式使得浙江省的毛竹林地酸堿度低至pH 4.8左右[6],已有明顯導(dǎo)致土壤鋁活化的趨勢(shì)[7]。因此,對(duì)毛竹鋁脅迫方面的研究在當(dāng)前具有較強(qiáng)的實(shí)際意義。在植物根系分泌物中最常見(jiàn)的有機(jī)酸有:檸檬酸、草酸、琥珀酸、酒石酸、蘋(píng)果酸、乙酸和丙二酸等,它們的測(cè)定方法通常有高效液相色譜法[8]和毛細(xì)管電泳法[9]等。這類(lèi)物質(zhì)在植物中具有調(diào)節(jié)細(xì)胞代謝的功效,能活化和固定植物根際潛在的養(yǎng)分[10],并且植物根系在鋁脅迫下分泌有機(jī)酸被認(rèn)為是植物重要的耐鋁機(jī)制之一[11]。小麥Triticum aestivum,水稻Oryza sativa等植物的根系分泌有機(jī)酸的研究比較詳細(xì)[10,12-14],但毛竹根系分泌物中有機(jī)酸方面的研究未見(jiàn)報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)采用水培法培養(yǎng)毛竹種子2~3周;用ACQUITYTMUltra Performance LC超高效液相色譜系統(tǒng),以體積分?jǐn)?shù)為 3%的甲醇-磷酸二氫鉀(0.01 mol·L-1)(pH 2.6)溶液作流動(dòng)相,經(jīng) HSS T3 C18柱分離,選取前述植物根系分泌物中最常見(jiàn)的 4種有機(jī)酸為研究組分,考察流動(dòng)相的 pH值及分離溫度等因素對(duì)草酸、檸檬酸、琥珀酸、蘋(píng)果酸4種有機(jī)酸分離效果的影響。本研究所建立的方法精密度、準(zhǔn)確度和再現(xiàn)性均符合痕量組分測(cè)定的要求,并且具有樣品用量少,分析速度快等特點(diǎn),用于鋁脅迫時(shí)植物根系分泌物中有機(jī)酸的分析與研究,結(jié)果令人滿意。
ACQUITYTMUltra Performance LC超高效液相色譜系統(tǒng)(美國(guó)Waters公司),包含二元溶劑管理器、樣品管理器、柱溫箱和光電二陣管陣列檢測(cè)器,ACQUITY UPLC HSS T3 C18柱(2.1 mm×100 mm,1.8 μm);電子分析天平(瑞士梅特勒-托利多);Milli-Q超純水裝置;循環(huán)水式真空泵(中國(guó)河南鞏義市峪華儀器廠);旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(中國(guó)上海亞榮生化儀器廠),人工氣候箱(中國(guó)寧波萊福科技有限公司),高壓滅菌鍋(日本三洋電器有限公司),酸度計(jì),鑷子,培養(yǎng)皿等。
供試的毛竹種子于2006年采自廣西桂林市;采后存放于密封袋,于4℃冰箱中保存。草酸、檸檬酸、琥珀酸、蘋(píng)果酸對(duì)照品(色譜純,中國(guó)上海君創(chuàng)生物科技有限公司),甲醇(色譜純,美國(guó)TEDIA公司),試驗(yàn)用水為超純水,氫氧化鈉,鹽酸等試劑均為分析純。
ACQUITY UPLC HSS T3 C18柱(2.1 mm×100 mm,1.8 μm),流動(dòng)相為體積分?jǐn)?shù)為 3%的甲醇-磷酸二氫鉀(0.01 mol·L-1)(pH 2.6)流速為 0.15 mL·min-1的等度洗脫,分析時(shí)間為 6 min,柱溫為 30 ℃,檢測(cè)波長(zhǎng)為 210 nm,進(jìn)樣體積為 5.0 μL。
精確稱量草酸、檸檬酸、琥珀酸、蘋(píng)果酸對(duì)照品各11 mg,用超純水溶于5 mL容量瓶得質(zhì)量濃度2.2 g·L-1草酸溶液為作為對(duì)照品母液,然后稀釋10倍得0.22 g·L-14種有機(jī)酸的標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別進(jìn)樣5.0,2.5,1.0,0.5,0.1 μL做4種有機(jī)酸的標(biāo)準(zhǔn)曲線。
配制 0,100,500,1 000,2 000 μmol·L-1氯化鋁溶液(用氫氧化鈉溶液或鹽酸調(diào)酸堿度至 pH 4.5);2.0 g·kg-1的高錳酸鉀,1 mol·L-1氫氧化鈉溶液,1 mol·L-1鹽酸,體積分?jǐn)?shù)為 75%乙醇水溶液等。
①在2.0 g·kg-1的高錳酸鉀中消毒0.5 h,常溫下在溫水中浸泡24 h。②分別采用0,100,500,1 000,2 000 μmol·L-1等5種不同濃度氯化鋁溶液作為培養(yǎng)液,各濃度下采用5個(gè)培養(yǎng)皿(內(nèi)置濾紙2片·培養(yǎng)皿-1,并高溫滅菌),加培養(yǎng)液20 mL·培養(yǎng)皿-1,用鑷子(經(jīng)體積分?jǐn)?shù)為75%乙醇消毒)分散放入30顆飽滿的種子。然后將培養(yǎng)皿放入人工氣候箱中(28℃左右,濕度80%左右)。③隔3 d更換1次培養(yǎng)液,培養(yǎng)2周,合并同一試驗(yàn)單元下5個(gè)培養(yǎng)皿中培養(yǎng)液,在旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀上濃縮至2 mL左右,用超純水定容至5 mL,過(guò)0.22 μm微孔濾膜后作為供試品溶液。
2.1.1 檢測(cè)波長(zhǎng)的確定 為了考察檢測(cè)波長(zhǎng)對(duì)有機(jī)酸檢測(cè)靈敏度的影響,用光電二極管陣列檢測(cè)器在190~400 nm(紫外)下采集4種有機(jī)酸的紫外吸收光譜圖,4種有機(jī)酸均在210 nm附近有較大的吸收,重復(fù)性好,不易受流動(dòng)相中其他物質(zhì)的干擾,故以下實(shí)驗(yàn)均采用210 nm波長(zhǎng)進(jìn)行檢測(cè)。
2.1.2 色譜柱的選擇 本實(shí)驗(yàn)所用的色譜柱在美國(guó)Waters公司的BEH C18色譜柱、BEH Shield C18色柱、HSS T3 C18色譜柱,小分子有機(jī)酸極性比較大,多數(shù)做小分子有機(jī)酸的文獻(xiàn)都是用純水相作為流動(dòng)相。前2種UPLC柱都不可以用純水相洗脫,且無(wú)法將4種有機(jī)酸分離。因此,我們選擇專門(mén)用于做極性較大的成分,可以用純水相洗脫的HSS T3 C18色譜柱。
2.1.3 流動(dòng)相的選擇 有機(jī)酸為弱酸,在水系流動(dòng)相易解離,故采用抑制電離的方法,使它們變?yōu)榉肿討B(tài)的酸在柱子上保留而得到分離。本實(shí)驗(yàn)流動(dòng)相在硫酸、甲酸、磷酸二氫鉀之間選擇。硫酸是強(qiáng)酸,不適合作流動(dòng)相的改性劑;用2.0 g·kg-1的甲酸作為流動(dòng)相時(shí),基線漂移,且在目標(biāo)峰附近出現(xiàn)倒峰。磷酸鹽緩沖溶液作為一種弱酸電離抑制劑在紫外區(qū)幾乎無(wú)吸收,用其作為測(cè)定有機(jī)酸的流動(dòng)相有利于有機(jī)酸的分離而不影響檢測(cè)。由于較高濃度的鹽緩沖溶液對(duì)泵和柱子都有影響,而較低濃度的鹽緩沖溶液又對(duì)分離有影響,故選擇0.01 mol·L-1的磷酸二氫鉀緩沖溶液作流動(dòng)相的主要成分。
2.1.4 流動(dòng)相 pH值的選擇 以不同pH值(用磷酸調(diào)節(jié))的0.01 mol·L-1的磷酸二氫鉀溶液作流動(dòng)相,測(cè)定各有機(jī)酸的保留時(shí)間。結(jié)果顯示,流動(dòng)相pH值對(duì)有機(jī)酸的分離影響很大。當(dāng)pH 2.0時(shí),琥珀酸和檸檬酸不能完全分離;逐步提高pH值,4種有機(jī)酸逐漸得到分離,但草酸和酒石酸、蘋(píng)果酸的分離度卻逐漸減??;當(dāng)pH>3.0時(shí),檸草酸和酒石酸不能有效分離;當(dāng)pH 3.2時(shí),部分有機(jī)酸的出峰順序發(fā)生變化。由于pH<2.5的溶液會(huì)影響色譜柱的壽命,經(jīng)綜合考慮,最后選擇pH 2.6磷酸鹽緩沖溶液。
2.1.5 流動(dòng)相中甲醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)的選擇 在流動(dòng)相中加入少量甲醇,能有效地改善峰形。以0.01 mol·L-1的 K2HPO4(pH 2.6)溶液作流動(dòng)相,對(duì)不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)的甲醇(0,10 ,20,30,40,50 g·kg-1)對(duì)色譜分離的影響進(jìn)行了比較。結(jié)果表明:隨著流動(dòng)相中甲醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)增加,有機(jī)酸的疏水端基與固定相的相互作用減弱,保留時(shí)間變短,30 g·kg-1的甲醇-緩沖溶液分離度和峰形較好。
2.1.6 其他條件選擇 以體積分?jǐn)?shù)為3%的甲醇-磷酸二氫鉀(pH 2.6)溶液作流動(dòng)相比較了流速、柱溫對(duì)保留時(shí)間的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn):流速0.2 mL·min-1時(shí),分離度降低,草酸和酒石酸不能有效分離,流速0.1 mL·min-1時(shí),由于流速太小,當(dāng)進(jìn)樣量較大時(shí),影響分離效果;而柱溫增高則會(huì)加快傳質(zhì)過(guò)程,縮小分離度。因此,選擇在0.15 mL·min-1流速下及室溫(30℃)進(jìn)行測(cè)定。
用HSS T3 C18柱,體積分?jǐn)?shù)為3%的甲醇-磷酸二氫鉀(pH 2.6)緩沖溶液作為混合流動(dòng)相,分析物可以在6 min內(nèi)得到很好的分離。草酸、蘋(píng)果酸、檸檬酸、琥珀酸的保留時(shí)間分別為:1.507±0.089,2.310±0.078,3.900±0.46,5.243±0.065 min,標(biāo)品的色譜圖如圖1所示。
取500 μmol·L-1氯化鋁的培養(yǎng)液4份,其中1份作本底(樣品色譜圖見(jiàn)圖1),另3份各添加不同量的有機(jī)酸標(biāo)品溶液按1.4(3)中的處理樣品方法處理后測(cè)定各成分,平行測(cè)定5次·樣品-1,考察方法的回收率和精密度。根據(jù)3.3中所述的方法將混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)樣,以峰面積(mV·s)積分值為縱坐標(biāo),標(biāo)品溶液的濃度(μg)為橫坐標(biāo),求得線性回歸方程,結(jié)果見(jiàn)表1。4種分析物的峰面積相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)均小于2%;回收率均為95%~105%,表明該分析方法有很好的精密度和準(zhǔn)確度。
樣品預(yù)處理后,按照已優(yōu)化的色譜方法注入超高效液相色譜儀中,根據(jù)分析物的保留時(shí)間及光譜圖對(duì)樣品中的色譜峰進(jìn)行定性,水培毛竹根系分泌物中可以檢出的有機(jī)酸為草酸和蘋(píng)果酸,另外2種有機(jī)酸未檢出。樣品色譜圖見(jiàn)圖2。結(jié)果表明:本方法測(cè)定不同濃度鋁處理的毛竹根系分泌物中的草酸和蘋(píng)果酸含量,結(jié)果如表2所示。
表1 有機(jī)酸的標(biāo)準(zhǔn)曲線Table 1 Calibration curve of organic acids
圖1 4種有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)品色譜圖Figure 1 Liquid chromatogram of standard of 4 organic acids
圖2 500 μmol·L-1氯化鋁處理毛竹培養(yǎng)液中有機(jī)酸色譜圖Figure 2 Liquid chromatogram of organic acids in culture solution containing 500 μmol·L-1AlCl3
表2 不同濃度氯化鋁處理毛竹分根系泌出有機(jī)酸的量Table 2 Content of organic acids of culture solution containing different concentrations of AlCl3
采用超高效液相色譜法測(cè)定毛竹根系分泌物中的痕量有機(jī)酸,樣品制備簡(jiǎn)便,分離效果好,方法的線性范圍及分析結(jié)果的精密度、準(zhǔn)確度和回收率都能滿足毛竹根系分泌物中痕量有機(jī)酸定性和定量分析的要求,并且具有樣品用量少,分析快速等特點(diǎn),為植物根系分泌物中痕量有機(jī)酸的研究,以及植物根際環(huán)境中有機(jī)酸作用機(jī)理的探尋提供了重要的實(shí)驗(yàn)手段。結(jié)果表明:毛竹根系分泌的有機(jī)酸只有草酸和蘋(píng)果酸,并且草酸和蘋(píng)果酸的含量與鋁離子的濃度有一定的相關(guān)性,鋁離子的存在對(duì)毛竹根系有機(jī)酸的分泌有促進(jìn)作用。特別是當(dāng)氯化鋁濃度在 500 μmol·L-1時(shí),促進(jìn)作用最明顯,在 1 000~ 2 000 μmol·L-1時(shí),促進(jìn)作用相對(duì)減弱。
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