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RP-HPLC法同時(shí)測定釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I

2012-01-09 05:09:46李會品趙謀明俞志敏雷宏杰趙海鋒
關(guān)鍵詞:胞內(nèi)輔酶腺苷

李會品, 趙謀明, 俞志敏, 雷宏杰, 趙海鋒

(華南理工大學(xué) 輕工與食品學(xué)院,廣東 廣州 510640)

RP-HPLC法同時(shí)測定釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I

李會品, 趙謀明, 俞志敏, 雷宏杰, 趙海鋒*

(華南理工大學(xué) 輕工與食品學(xué)院,廣東 廣州 510640)

為準(zhǔn)確監(jiān)控釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I的代謝情況,作者建立了釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I的高效液相色譜分析方法。胞內(nèi)代謝物經(jīng)液氮研磨提取后,采用Agilent Zorbax SB-Aq色譜柱(5μm,4.6 mm×150 mm)分離,流動(dòng)相0.025 mmol/L三乙胺-磷酸緩沖液(p H 6.0)與乙腈梯度洗脫,流速1 m L/mim,檢測波長254 nm。在此條件下,3種磷酸腺苷和兩種輔酶I達(dá)到了較好的分離效果?;厥章试?8.30%~103.42%之間,RSD<3.00%。結(jié)果表明,本法靈敏、準(zhǔn)確、重現(xiàn)性好,可用于釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I摩爾質(zhì)量濃度的測定。

高效液相色譜;釀酒酵母;磷酸腺苷;輔酶I

啤酒作為世界性飲料,是世界上產(chǎn)量最大的飲 料酒[1]。啤酒釀造過程中,酵母將麥汁中的糖分發(fā)酵生成乙醇、二氧化碳和其他副產(chǎn)物。這一過程包括諸多代謝反應(yīng),其反應(yīng)活性直接決定啤酒的品質(zhì)[2]。酵母代謝活性受胞內(nèi)磷酸腺苷(ATP、ADP和AMP)和輔酶I(NADH和NAD+)含量和狀態(tài)的調(diào)控[3-4]。ATP是釀酒酵母細(xì)胞合成的含有高能磷酸鍵的化合物,參與機(jī)體內(nèi)蛋白質(zhì)、脂肪及糖類的代謝,是生物體重要的能量物質(zhì),對生物體正常機(jī)能的維持有著無可替代的作用。ATP可水解生成ADP和AMP,三者之間的相互轉(zhuǎn)化使ATP在機(jī)體內(nèi)達(dá)到動(dòng)態(tài)平衡,以維持機(jī)體代謝的需要[5]。NAD+、NADH是輔酶I在細(xì)胞內(nèi)存在的兩種形式。細(xì)胞代謝過程中,氧化型和還原型輔酶I之間的相互轉(zhuǎn)換,起著調(diào)節(jié)能量代謝和物質(zhì)代謝的核心作用[6]。

目前,測定ATP、ADP和AMP的方法較多,主要有試劑盒法、電化學(xué)分析法、層析法、生物發(fā)光法、高效液相色譜(HPLC)法、毛細(xì)管區(qū)帶電泳法及熒光光譜法[7]。其中試劑盒法、電化學(xué)分析法、生物發(fā)光法及毛細(xì)管區(qū)帶電泳法存在操作繁瑣、精度低、雜質(zhì)干擾等缺點(diǎn),HPLC法則具有操作簡便、靈敏度高、精確度高等特點(diǎn)[8-9]。但準(zhǔn)確分析檢測酵母胞內(nèi)的磷酸腺苷和輔酶I,并監(jiān)測其在發(fā)酵過程中的代謝情況,尚未見相關(guān)報(bào)道。因此,作者在以前研究的基礎(chǔ)上,建立了利用RP-HPLC法測定釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I的方法,該方法不僅操作簡便,而且穩(wěn)定性、重現(xiàn)性好,準(zhǔn)確度、靈敏度高,能為啤酒釀造者監(jiān)控釀酒酵母的代謝活性提供可靠依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 菌株

下面釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)FBY0095,上面釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)FBY0099:由作者所在實(shí)驗(yàn)室保藏。

1.2 儀器與試劑

Waters 600高效液相色譜儀,Waters 2418紫外檢測器,Agilent Zorbax SB-Aq色譜柱(5μm,4.6 mm×150 mm);p HS-2C型數(shù)字酸度計(jì):上海精科儀器有限公司;3-18K高速冷凍離心機(jī):Sigma儀器有限公司;XO-650D超聲細(xì)胞破碎儀:南京先歐生物科技有限公司;三乙胺、乙腈、磷酸:迪馬試劑有限公司,色譜純;ATP-Na2、ADP-Na2、AMPNa2、NAD+、NADH:Sigma試劑有限公司,色譜純;其他試劑均為分析純。

1.3 酵母細(xì)胞猝滅

取10 m L對數(shù)期發(fā)酵液,加入40 m L、-40℃、體積分?jǐn)?shù)72%甲醇溶液,在-20℃下保藏10 min,每兩分鐘劇烈振蕩一次,以猝滅酵母胞內(nèi)代謝。在4℃下以6 000 r/min離心10 min,收集菌體,再用冰甲醇溶液洗滌兩遍,離心后收集菌體[10]。

1.4 胞內(nèi)物提取

1.4.1 超聲提取向菌體中加入5 m L pH 6.0的磷酸鈉緩沖液,超聲處理10 min(功率300 W,工作1 s,間歇0.5 s),離心后收集上清液[11]。

1.4.2 熱乙醇提取向菌體中加入一定量熱乙醇,在沸水浴中將乙醇蒸干,然后加入5 m L pH 6.0的磷酸鈉緩沖液,煮沸10 min,離心后收集上清液[10]。

1.4.3 液氮提取向菌體中加入2 m L pH 6.0的磷酸鈉緩沖液,用石英砂研磨5 min,再加入3 m L磷酸鈉緩沖液洗滌,離心后收集上清液,并于-20℃下保藏。

1.5 色譜條件

流動(dòng)相:0.025 mmol/L三乙胺溶液(用磷酸調(diào)p H至6.0)和乙腈梯度洗脫,流速1 m L/min,洗脫時(shí)間40 min,在0~20 min,流動(dòng)相中三乙胺緩沖液與乙腈的比例由99∶1降低到95∶5,保持5 min,接下來15 min內(nèi),流動(dòng)相比例再由95∶5變化為99∶1,紫外檢測波長254 nm,柱溫30℃,進(jìn)樣量20μL。

2 結(jié)果與分析

2.1 提取方法的選擇

釀酒酵母細(xì)胞經(jīng)甲醇猝滅處理后,用不同提取方法對胞內(nèi)代謝物進(jìn)行提取,然后進(jìn)行HPLC檢測。由表1可知,液氮研磨法對胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I的提取效果最好,該法提取的總磷酸腺苷和總輔酶I濃度均為最高。超聲提取法提取效果次之,熱乙醇提取法提取效果最差。這說明液氮研磨法對酵母細(xì)胞有較好的破碎作用,使胞內(nèi)代謝物完全釋放出來。超聲處理對酵母細(xì)胞產(chǎn)生空化作用,使細(xì)胞膜產(chǎn)生裂隙,胞內(nèi)物質(zhì)不完全釋放[12]。乙醇對細(xì)胞膜起溶解作用,但酵母細(xì)胞膜較堅(jiān)固,所以只有部分胞內(nèi)物被提取出來。超聲提取法對ATP和NADH的水解作用較明顯,使細(xì)胞能荷(EC)和還原度(NADH/NAD+)最低,不能準(zhǔn)確反映酵母細(xì)胞的代謝狀況。液氮研磨提取后,酵母細(xì)胞的EC和還原度均為最高,可能是由于在低溫條件下能較好地防止ATP和NADH的水解。因此,液氮研磨法對酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I的提取效果較好。

表1 不同提取方法對釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I提取的影響Tab.1 Effects of different methods on extraction of intracellular adenosine phosphate and coenzyme I from Saccharomyces cerevisiae(μmol/g)

2.2 流動(dòng)相條件選擇

2.2.1 流動(dòng)相種類選擇磷酸鹽緩沖液-乙腈和三乙胺緩沖液-乙腈系統(tǒng)是分離磷酸腺苷和輔酶I時(shí)應(yīng)用較廣泛的流動(dòng)相[13-14]。作者選擇 Na2HPO4-Na H2PO4緩沖液-乙腈和三乙胺-磷酸緩沖液-乙腈作為流動(dòng)相,比較5種物質(zhì)的分離情況。結(jié)果表明,這兩種流動(dòng)相都能較好的分離磷酸腺苷和輔酶I,相同濃度條件下,當(dāng)三乙胺緩沖液作為流動(dòng)相時(shí),磷酸腺苷和輔酶I的響應(yīng)值較大。此外,由于磷酸鹽緩沖液的本底吸收較高,故選擇三乙胺緩沖液作為流動(dòng)相。

緩沖液濃度直接影響緩沖能力大小,影響流動(dòng)相穩(wěn)定性,從而影響色譜柱分離效果。0.025、0.03、0.035、0.04 mmol/L 4種濃度的緩沖液對磷酸腺苷和輔酶I的分離效果都較好。而高濃度緩沖液會增加流動(dòng)相的本底吸收,降低靈敏度,影響分離效果,并縮短色譜柱壽命。因此,選擇0.025 mmol/L的三乙胺緩沖液[15]。

2.2.2 流動(dòng)相p H選擇由于流動(dòng)相p H值對磷酸腺苷的保留時(shí)間有較大影響,因此考察不同流動(dòng)相p H 值(p H 5.0、5.5、6.0、6.5、7.0)對磷酸腺苷和輔酶I分離的影響,結(jié)果見圖1。由圖1知,AMP、ADP、ATP和NADH的保留時(shí)間隨p H值的增加而減小,NADH的降低幅度較大,而NAD+的保留時(shí)間隨p H的增加而增加。p H值為5.0時(shí),5種物質(zhì)保留時(shí)間差異較大,較易分離,但NADH的保留時(shí)間過大對分離不利。p H 為5.5時(shí),NAD+與 AMP不能分離開來。p H 為6.5時(shí),NAD+與ADP的保留時(shí)間較接近,不易分離。p H為7時(shí),5種胞內(nèi)物分離效果較好,但ATP和NADH在酸性條件下穩(wěn)定性較好,在堿性或中性條件下較易水解[16]。p H 為6.0時(shí),5種物質(zhì)保留時(shí)間差異較大,較易分離。故流動(dòng)相p H選為6.0。

圖1 流動(dòng)相p H值對磷酸腺苷和輔酶I保留時(shí)間的影響Fig.1 Effects of pH value on the retention time of intracellular adenosine phosphate and coenzyme I

2.2.3 流動(dòng)相配比選擇考察等度洗脫條件(乙腈體積分?jǐn)?shù)分別為1%、2%、3%、4%和5%)對磷酸腺苷和輔酶I的分離效果,結(jié)果見圖2。磷酸腺苷和輔酶I的保留時(shí)間隨乙腈比例的增加而減小,乙腈比例較低(<2%)時(shí),NADH難以洗脫出來。當(dāng)乙腈體積分?jǐn)?shù)為5%時(shí),磷酸腺苷和輔酶I在15 min內(nèi)被全部洗脫出來,但AMP、NAD+、ADP無法達(dá)到良好分離??梢姷榷认疵摵茈y滿足分離要求。因此作者選擇梯度洗脫,發(fā)現(xiàn)在0~20 min,流動(dòng)相中三乙胺緩沖液與乙腈的比例由99∶1降低到95∶5,保持5 min,接下來15 min內(nèi),流動(dòng)相比例再由95∶5變化為99∶1時(shí),5種標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)和樣品均有較好的分離效果,結(jié)果見圖3。

圖2 流動(dòng)相中乙腈體積分?jǐn)?shù)對磷酸腺苷和輔酶I保留時(shí)間的影響Fig.2 Effects of different acetonitrile proportion on the retention time of intracellular adenosine phosphate and coenzyme I

圖3 磷酸腺苷和輔酶I標(biāo)準(zhǔn)品的HPLC圖譜(a)和樣品的HPLC圖譜(b)Fig.3 HPLC chromatograms of standards(a)and sample(b)

2.3 工作曲線

分別以各組分峰面積A對標(biāo)準(zhǔn)工作溶液質(zhì)量濃度c(g/L)進(jìn)行線性回歸分析,磷酸腺苷和輔酶I的回歸方程、相關(guān)系數(shù)及檢出限見表2。由表2知,在所測范圍內(nèi),線性關(guān)系良好。

2.4 精密度和回收率

取一定量待測樣品3份,其中一份做本底,另外兩份分別添加一定量磷酸腺苷和輔酶I的標(biāo)準(zhǔn)混合液,然后按照優(yōu)化的方法進(jìn)行檢測。每份樣品進(jìn)行3次平行測定,計(jì)算回收率和精密度,結(jié)果表明該方法回收率高,重現(xiàn)性好,見表2。

表2 回歸分析、檢測限、精密度和回收率Tab.2 Regression analysis,detection limit,precision and recovery of the RP-HPLC method

2.5 發(fā)酵過程中釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I含量的變化

在上述確定的色譜條件下,檢測發(fā)酵過程中下面釀酒酵母和上面釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I的摩爾質(zhì)量濃度,結(jié)果見圖4、5。

ATP普遍存在于生物細(xì)胞內(nèi),為細(xì)胞新陳代謝提供能量,是細(xì)胞生存的必要因素。Guimaraes P M R等人用生物發(fā)光法研究了厭氧發(fā)酵過程中釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷摩爾質(zhì)量濃度和EC的變化,測得ATP摩爾質(zhì)量濃度為1.7~4.2μmol/g,ADP摩爾質(zhì)量濃度為0.1~1.8μmol/g,AMP摩爾質(zhì)量濃度為0.1~1.8μmol/g,EC 為0.47~0.95[17]。由圖4(A)及圖5(A)可知,本法測定的下面釀酒酵母胞內(nèi)ATP摩爾質(zhì)量濃度為1.57~5.32μmol/g,ADP摩爾質(zhì)量濃度為0.75~1.32μmol/g,AMP摩爾質(zhì)量濃度為0.54~1.10μmol/g,EC為0.56~0.85。上面釀酒酵母胞內(nèi)ATP摩爾質(zhì)量濃度為1.36~5.10μmol/g,ADP摩爾質(zhì)量濃度為0.36~1.11μmol/g,AMP摩爾質(zhì)量濃度為0.24~0.88 μmol/g,EC為0.57~0.90,與 Guimaraes P M R測定的結(jié)果基本一致。發(fā)酵過程中下面釀酒酵母和上面釀酒酵母胞內(nèi)ATP摩爾質(zhì)量濃度都是先升高后降低,ADP和AMP摩爾質(zhì)量濃度都呈升高趨勢。下面釀酒酵母胞內(nèi)EC在發(fā)酵0~3 d內(nèi)基本不變,而后逐漸降低,而上面釀酒酵母胞內(nèi)EC在發(fā)酵過程中呈逐漸降低趨勢。發(fā)酵過程中下面釀酒酵母和上面釀酒酵母胞內(nèi)ATP、ADP、AMP摩爾質(zhì)量濃度和EC的變化趨勢都基本一致。由于在發(fā)酵開始時(shí),酵母細(xì)胞利用麥汁中的營養(yǎng)物質(zhì)維持代謝,同時(shí)合成ATP貯存起來,此時(shí)細(xì)胞代謝活性較高,ATP摩爾質(zhì)量濃度較高,EC較高。隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,發(fā)酵液中營養(yǎng)物質(zhì)逐漸被消耗,溶氧量逐漸降低,酵母細(xì)胞分解胞內(nèi)ATP生成ADP、AMP,以供代謝需要,所以胞內(nèi)ATP摩爾質(zhì)量濃度逐漸降低,ADP和AMP摩爾質(zhì)量濃度逐漸升高。此時(shí)細(xì)胞代謝活性降低,使EC逐漸降低。

圖4 發(fā)酵過程中下面釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷(a)及輔酶I(b)摩爾質(zhì)量濃度的變化Fig.4 Time course of the intracellular adenosine phosphate(a)and coenzyme I(b)during larger Saccharomyces cerevisiae fermentation process

圖5 發(fā)酵過程中上面釀酒酵母胞內(nèi)磷酸腺苷(a)及輔酶I(b)摩爾質(zhì)量濃度的變化Fig.5 Time course of the the intracellular adenosine phosphate(a)and coenzyme I(b)during ale Saccharomyces cerevisiae fermentation process

NAD+/NADH反映細(xì)胞的氧化還原狀態(tài),其水平直接影響著細(xì)胞的節(jié)律、衰老、癌變和死亡等生命過程[18]。由圖4(b)及圖5(b)可知,發(fā)酵過程中下面釀酒酵母和上面釀酒酵母胞內(nèi)NAD+、NADH摩爾質(zhì)量濃度和NADH/NAD+都是先升高后降低,下面釀酒酵母和上面釀酒酵母胞內(nèi)NAD+、NADH摩爾質(zhì)量濃度和NADH/NAD+的變化趨勢都基本一致。在發(fā)酵初期,細(xì)胞代謝旺盛,合成較多的輔酶I,細(xì)胞還原度較高,但隨著發(fā)酵液中的營養(yǎng)物質(zhì)逐漸被消耗,細(xì)胞代謝逐漸減弱,輔酶I摩爾質(zhì)量濃度逐漸下降,還原度逐漸降低。

3 結(jié)語

液氮研磨法能較好地提取胞內(nèi)代謝物,并能很好地防止ATP和NADH的水解。經(jīng)過優(yōu)化,確定0.025 mmol/L pH 6.0的三乙胺-磷酸緩沖液-乙腈作為流動(dòng)相,梯度洗脫程序?yàn)椋?~20 min,流動(dòng)相中三乙胺-磷酸緩沖液與乙腈的比例由99:1降低到95:5,保持5 min,接下來15 min,流動(dòng)相的比例再由95∶5變化為99∶1。此條件能對胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I進(jìn)行較好地分離,且該方法回收率高,重現(xiàn)性好,可以準(zhǔn)確監(jiān)控發(fā)酵過程中酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I的代謝情況。結(jié)果表明,用液氮研磨法提取,高效液相色譜法測定酵母胞內(nèi)磷酸腺苷和輔酶I,準(zhǔn)確度和精密度均較高,是一種簡便、快速、準(zhǔn)確、易于推廣的檢測方法。

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Simultaneous Determination of Adenosine Phosphate and Coenzyme I in Cells ofSaccharomyces cerevisiaeby RP-HPLC

LI Hui-pin,ZH AO Mou-ming,YU Zhi-min,LEI Hong-jie,ZH AO Hai-feng*

(College of Light Industry and Food Sciences,South China University of Technology,Guangzhou 510640,China)

In this manuscript,an RP-HPLC method was developed to determine simultaneously adenosine phosphate and coenzyme I in Saccharomyces cerevisiae,in order to monitor metabolic state.The intracellular metabolites extracted by the method of rubbing with liquid nitrogen were separated on an Agilent Zorbax SB-Aq column (5μm,4.6 mm×150 mm).A 0.025 mmol/L triethylamine-phosphoric acid buffer solution(p H 6.0)and acetonitrile mixture was used as mobile phase,with a flow rate of 1 m L/min.Detection wavelength was set at 254 nm.Under these conditions,three kinds of adenosine phosphate and two kinds of coenzyme I could be well separated.The recoveries were between 98.30%and 103.42%,and the RSD of the method was less than 3%.The results showed that this method is sensitive,accurate,reproducible and can be applied to determinate the content of intracellular adenosine phosphate and coenzyme I ofS.cerevisiae.

HPLC,Saccharomyces cerevisiae,adenosine phosphate,coenzyme I

TS 201.2

A

1673-1689(2012)05-0492-07

2011-05-03

國家“十一五”科技支撐計(jì)劃項(xiàng)目(2008BAI63B06);廣東省科技計(jì)劃工業(yè)攻關(guān)項(xiàng)目(2009A010700004,2010A010500002)。

趙海鋒(1977-),男,河南焦作人,工學(xué)博士,講師,主要從事發(fā)酵工程與食品生物技術(shù)方面的研究。E-mail:hfzhao@scut.edu.cn

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