李廷春,楊華應(yīng)
(安徽省農(nóng)業(yè)科學(xué)院煙草研究所,合肥 230031)
煙草經(jīng)甲基磺酸乙酯(EMS)誘變處理可以分離得到多種突變體,這些突變體的獲得將為揭示煙草生長發(fā)育規(guī)律奠定基礎(chǔ)。煙草突變體的篩選已成為許多重要理論問題得以解決的前體,而篩選方法是突變體篩選成敗的關(guān)鍵。
干旱是影響植物生長發(fā)育的主要環(huán)境因子之一[1]。煙草在生長過程中,特別是從團(tuán)棵期進(jìn)入旺長期常常遭遇干旱,干旱已經(jīng)成為影響其營養(yǎng)生長的重要因素。利用突變體材料篩選煙草抗旱突變體,不僅可為抗旱基因克隆及功能分析奠定基礎(chǔ),還對于進(jìn)一步探索水分脅迫信號轉(zhuǎn)導(dǎo)及應(yīng)答干旱脅迫的分子機(jī)制具有重要的意義。
對擬南芥突變體的研究表明,每5萬株經(jīng)EMS誘變的擬南芥M2代,其基因中的每一個(gè)基因至少有一次發(fā)生突變的機(jī)會[2]。對于如此大規(guī)模的突變體篩選工作,尤其對煙草這種植株較大的植物,建立一種快速、有效的篩選方法是獲得具備優(yōu)良性狀突變體的關(guān)鍵。
煙草抗干旱篩選根據(jù)其處理方式可分為自然干旱和高滲溶液處理模擬干旱,由于自然干旱所需時(shí)間周期長,個(gè)體差異較難控制,誤差較大,所以采用高滲溶液處理模擬干旱是較為常用的方法。目前,常用于模擬干旱的高滲溶液是PEG6000溶液,PEG6000是一種高分子量的非滲透調(diào)節(jié)劑,對水分表現(xiàn)出強(qiáng)烈的親和性,由于其對植物無毒害的特點(diǎn),已被廣泛用于模擬干旱逆境條件,進(jìn)行抗旱材料篩選與干旱響應(yīng)機(jī)制的研究[3-7]。根據(jù)PEG6000溶液處理時(shí)期的不同,抗旱篩選主要有:(1)發(fā)芽期抗旱試驗(yàn),采用PEG6000溶液處理煙草種子,根據(jù)發(fā)芽率、發(fā)芽勢篩選抗旱突變體;(2)煙草種子發(fā)芽后,待子葉完全展開時(shí),采用PEG6000溶液處理煙草小苗,根據(jù)植株萎蔫狀態(tài)、生長量變化篩選抗旱突變體;(3)苗期抗旱試驗(yàn),待煙草幼苗長至6~8片葉時(shí),采用PEG6000溶液處理,根據(jù)葉片生長狀態(tài)、相關(guān)生理指標(biāo)(相對含水量、脯氨酸含量等)篩選抗旱突變體。試驗(yàn)結(jié)果表明,發(fā)芽期抗旱試驗(yàn)受種子活力影響較大,苗期抗旱試驗(yàn)存在周期長、工作量大等缺點(diǎn),因此,采用25%PEG6000處理發(fā)芽后小苗進(jìn)行抗旱篩選是篩選煙草抗旱突變體較為理想的方法。具體方法如下:精選大小一致、籽粒飽滿、無破損的種子,采用9 cm濾紙作為載體,種子發(fā)芽后,待子葉完全展開時(shí),加入25%PEG6000的水溶液,連續(xù)培養(yǎng)5 d后,依據(jù)小苗萎蔫、根長生長情況篩選抗旱的煙草突變體材料。
煙草抗干旱是個(gè)復(fù)雜的生理過程,與氣孔蒸騰、根系活力、脯氨酸積累等均存在密切的關(guān)系,植株的抗旱性可通過田間表型、細(xì)胞組織學(xué)鑒定、生理生化指標(biāo)測定以及抗旱相關(guān)基因的克隆與表達(dá)分析來進(jìn)行驗(yàn)證[8-11]。
結(jié)合田間和旱棚,對抗干旱突變體材料進(jìn)行至少2年以上的表型鑒定,包括農(nóng)藝性狀測量、干物質(zhì)積累測定和計(jì)產(chǎn)試驗(yàn)等。
采用顯微技術(shù),對正常、干旱條件下的抗干旱突變體材料葉片組織的氣孔特征進(jìn)行觀察,并對細(xì)胞組織鑒定。
通過測定干旱條件下,抗干旱突變體材料的抗氧化酶系統(tǒng)、脯氨酸含量、相對含水量、蒸騰速率、根系活力等生理指標(biāo),進(jìn)行煙草抗干旱突變體的生理生化鑒定。
采用圖位克隆、TILLING技術(shù)、基因芯片技術(shù)等篩選、克隆抗旱相關(guān)基因,并采用半定量PCR與實(shí)時(shí)熒光PCR技術(shù),對干旱條件下煙草抗干旱突變體材料的滲透調(diào)節(jié)基因、抗旱相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子,以及逆境應(yīng)答信號因子基因的表達(dá)特性進(jìn)行研究、分析,鑒定煙草突變體的抗旱性。
[1]劉浩,王棚濤,安國勇,等.擬南芥干旱相關(guān)突變體的遠(yuǎn)紅外篩選及基因克隆[J].植物學(xué)報(bào),2010,45(2):220-225.
[2]趙淑清.一種篩選擬南芥突變體的有效方法[J].遺傳,2001,22(3):260-262.
[3]Mohammadkhani N, Heidari R.Water stress induced by polyethylene glycol 6000 and sodium chloride in two maize cultivars[J].Pak J Biol Sci, 2008, 11: 92-97.
[4]張燕,方立,李天飛,等.煙草幼苗根系抗氧化系統(tǒng)對滲透脅迫的生理響應(yīng)[J].西南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2003,25(5):440-444.
[5]王玉萍,劉慶昌,李愛賢,等.甘薯耐旱突變體的離體篩選與鑒定[J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2003,36(9):100-105.
[6]Misra A N, Misra M, Singh R.Nitric oxide ameliorates stress responses in plants[J].Plant Soil Environ, 2011, 57: 95-100.
[7]Fan H H, Li T C, Guan L, et al.Effects of exogenous nitric oxide on antioxidation and DNA methylation of Dendrobium huoshanense grown under drought stress[J].Plant Cell Tissue Organ Cult, 2012, 109: 307-314.
[8]Xiong L M, Wang R G, Mao, G H, et al.Identification of drought tolerance determinants by genetic analysis of root response to drought stress and abscisic acid[J].Plant Physiol, 2006, 142: 1065-1074.
[9]Huang X Y, Chao D Y, Gao J P, et al.A previously unknown zinc finger protein, DST, regulates drought and salt tolerance in rice via stomatal aperture control[J].Genes Dev, 2009, 23: 1805-1817.
[10]Stephenson P, Baker D, Girin T, et al.A rich TILLING resource for studying gene function in Brassica rapa[J].BMC Plant Biol,2010, 10: 62.
[11]Gong J M, Waner D A, Horie T, et al.Microarray-based rapid cloning of an ion accumulation deletion mutant in Arabidopsis thaliana[J].Proc Natl Acad Sci USA, 2004, 101: 15404-15409.