国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

大花蕙蘭原球莖的誘導(dǎo)、增殖及植株再生研究

2012-04-29 17:57:43季華吳偉劍吳華
湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2012年15期
關(guān)鍵詞:原球莖組織培養(yǎng)

季華 吳偉劍 吳華 等

摘要:從大花蕙蘭(Cymbidium hybridum)試管苗取材,誘導(dǎo)原球莖,建立植株再生體系,分析了不同激素及其濃度對(duì)原球莖誘導(dǎo)、增殖和植株生根的影響。結(jié)果表明,不定芽比葉片更容易誘導(dǎo)出原球莖;生長(zhǎng)素NAA對(duì)原球莖的誘導(dǎo)效果好于2,4-D,最適合原球莖誘導(dǎo)的激素組合為1.0 mg/L BA+1.0 mg/L NAA;原球莖增殖培養(yǎng)基中添加1.0 mg/L BA+0.5 mg/L NAA增殖效果較好,增殖系數(shù)可達(dá)7.90;最適生根培養(yǎng)基為1/2 MS+0.5 mg/L NAA+30 g/L蔗糖。

關(guān)鍵詞:大花蕙蘭(Cymbidium hybridum);原球莖;組織培養(yǎng);植株再生

中圖分類號(hào):S682.31;S603.6文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A文章編號(hào):0439-8114(2012)15-3369-03

Study on Protocorm Induction, Proliferation and Plantlet Formation of

Cymbidium hybridum

JI Hua1,WU Wei-jian2,WU Hua1,CHEN Long-qing1

(1.Key Laboratory of Hoticultural Plant Biology, Ministry of Education/ College of Horticulture and Forestry, Huazhong Agricultural University, Wuhan 430070,China; 2.Wuhu Farm, Huangpi District, Wuhan 430345,China)

Abstract: Explants were drawing from Cymbidium hybridum plantlet for protocorm induction and plantlet regeneration. Effects of the kind and concentration of plant growth regulators on protocorms induction, proliferation and root formation were analyzed. The results showed that introducing protocorm from adventitious bud was more easily than from leaf primordial. NAA was more effective for protocorm induction than 2,4-D. The optimum hormone combination for protocorm induction was 1.0 mg/L BA+1.0 mg/L NAA. The multiplication coefficient of protocorm was the highest (7.90) in medium adding 1.0 mg/L BA+0.5 mg/L NAA. The optimal medium for root formation was 1/2 MS+0.5 mg/L NAA+ 30 g/L sucrose.

Key words: Cymbidium hybridum; protocorm; tissue culture; plant regeneration

大花蕙蘭(Cymbidium hybridum)是蘭科蘭屬中大花型附生種類的雜交種,具有花大色艷、花多且花期長(zhǎng)的特點(diǎn),深受大眾喜愛(ài)[1]。大花蕙蘭的繁殖方式主要以分株為主,由于長(zhǎng)期無(wú)性繁殖,造成帶病毒植株日益增多,使蘭花的品質(zhì)下降;同時(shí)新品種的培育也對(duì)繁殖方式和快繁技術(shù)提出了需求。目前,蘭屬植物的組織快繁主要是以原球莖(Protocorm-like body,PLB)為外植體誘導(dǎo)出愈傷組織或胚性愈傷組織,進(jìn)而獲得小植株[2-8]。國(guó)內(nèi)對(duì)大花蕙蘭組織培養(yǎng)[9-16]多數(shù)是采用莖尖、側(cè)芽為外植體,通過(guò)誘導(dǎo)原球莖獲得小植株。本實(shí)驗(yàn)以大花蕙蘭試管苗的不定芽和葉片為外植體,誘導(dǎo)和增殖原球莖,建立大花蕙蘭的快速繁殖體系,以達(dá)到加大試管苗繁殖系數(shù)、簡(jiǎn)化繁殖步驟的目的。

1材料與方法

1.1材料

供試材料為華中農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝林學(xué)學(xué)院種質(zhì)資源實(shí)驗(yàn)室的大花蕙蘭試管苗。

1.2方法

1.2.1原球莖的誘導(dǎo)從長(zhǎng)勢(shì)良好的大花蕙蘭試管苗上取大小一致、高2~3 mm的不定芽及葉片作為外植體,將葉片切割成0.5~1.0 cm2的小塊。外植體接種在MS+30 g/L蔗糖+6 g/L瓊脂培養(yǎng)基上。培養(yǎng)基中添加不同濃度的BA、NAA或2,4-D,激素濃度組合見(jiàn)表1。每處理接種6個(gè)外植體,重復(fù)3次。在培養(yǎng)室中培養(yǎng),培養(yǎng)溫度(25±2) ℃,光照14 h/d,光照度2 000 lx,30 d后統(tǒng)計(jì)各處理原球莖的誘導(dǎo)率。

1.2.2原球莖的增殖以MS為基本培養(yǎng)基,附加30 g/L蔗糖和6 g/L瓊脂,pH 5.5~5.8,添加不同濃度的BA和NAA(表2)。每處理接種15個(gè)不定芽,重復(fù)3次,培養(yǎng)條件同1.2.1,培養(yǎng)40 d后統(tǒng)計(jì)外植體增殖系數(shù)。

1.2.3生根培養(yǎng)生根培養(yǎng)以1/2MS為基本培養(yǎng)基,附加6 g/L瓊脂和質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.5%的活性炭,添加不同濃度的NAA與蔗糖(表3),pH 5.5~5.8。每處理接種15個(gè)不定芽,重復(fù)3次,培養(yǎng)條件同1.2.1。60 d后統(tǒng)計(jì)外植體的苗高、根長(zhǎng)大于1 cm的根數(shù)目、根長(zhǎng)和生根率。

1.2.4煉苗移栽將生根培養(yǎng)得到的大花蕙蘭試管苗煉苗移栽,以水苔為栽培基質(zhì),移栽前用無(wú)菌水將植株根部的培養(yǎng)基沖洗干凈,再植入穴盤(pán),移入遮陰棚中培養(yǎng)。每天向葉片噴水?dāng)?shù)次,每周澆施1~2次稀釋的營(yíng)養(yǎng)液。

2結(jié)果與分析

2.1原球莖的誘導(dǎo)

將大花蕙蘭葉片和不定芽接種到含不同激素配比的培養(yǎng)基,30 d后原球莖的誘導(dǎo)結(jié)果見(jiàn)表1。誘導(dǎo)30 d后,處理A1~A4的葉片有腫脹膨大的現(xiàn)象,但沒(méi)有誘導(dǎo)出原球莖;而處理A5~A8的腋芽周?chē)芯G色半透明顆粒狀組織產(chǎn)生并逐漸長(zhǎng)大,即誘導(dǎo)產(chǎn)生的原球莖(圖1),說(shuō)明不定芽較葉片易發(fā)生再分化產(chǎn)生原球莖。其中A6處理的原球莖誘導(dǎo)效果最好,誘導(dǎo)率達(dá)76.9%。培養(yǎng)基中BA濃度相同時(shí),1.0 mg/L NAA的誘導(dǎo)效果要好于0.5 mg/L 2,4-D;隨著BA濃度的增高,兩種生長(zhǎng)素的誘導(dǎo)率都有所增加??梢?jiàn)實(shí)驗(yàn)范圍內(nèi)原球莖誘導(dǎo)的最佳激素濃度組合為1.0 mg/L BA+1.0 mg/L NAA。

2.2原球莖的增殖培養(yǎng)

增殖培養(yǎng)40 d后,不定芽周邊長(zhǎng)出新的原球莖(圖2),一般產(chǎn)生5~8?jìng)€(gè),最多達(dá)到15個(gè)(表2)。激素BA和NAA的濃度不同,增殖系數(shù)也會(huì)發(fā)生變化。B5處理,即BA和NAA的濃度分別為1.0 mg/L和0.5 mg/L時(shí)增殖系數(shù)最高,為7.90。BA和NAA濃度過(guò)高或過(guò)低均不利于原球莖的增殖。

2.3生根培養(yǎng)

將增殖培養(yǎng)獲得的大花蕙蘭原球莖轉(zhuǎn)移到含不同濃度NAA和蔗糖的生根培養(yǎng)基上,20 d后各處理陸續(xù)有根形成,并有新的葉片展開(kāi)。培養(yǎng)60 d后各處理生根及苗生長(zhǎng)情況見(jiàn)表3和圖3。

由表3可知,大花蕙蘭原球莖的生根情況較好,除C1處理外,其他處理的生根率均達(dá)到100.0%。在相同的蔗糖濃度條件下,NAA濃度對(duì)各處理之間苗高、葉片數(shù)和根長(zhǎng)的影響不顯著。而NAA為0.5 mg/L時(shí),較高的蔗糖濃度對(duì)植株苗高有顯著的促進(jìn)作用。各處理中,C4(0.5 mg/L NAA+30 g/L蔗糖)處理的幼苗生長(zhǎng)情況最好,試管苗苗高、葉片數(shù)、根長(zhǎng)均大于其他處理,其中苗高和根長(zhǎng)顯著大于其他處理。

2.4煉苗移栽

移栽培養(yǎng)7 d后,幼苗未出現(xiàn)死亡現(xiàn)象,但部分移栽苗葉尖變黃,且大多發(fā)生于較小的植株,較大的植株則生長(zhǎng)良好。說(shuō)明試管苗個(gè)體越大、越健壯,移栽后的生長(zhǎng)狀況越好,移栽越易成活。一般適于移栽的植株要求苗高5 cm以上、具有展開(kāi)葉3~5片,以及2條以上長(zhǎng)度大于1 cm的根。

3討論

在以葉片為外植體誘導(dǎo)原球莖時(shí),葉片雖有膨大的現(xiàn)象,但生長(zhǎng)30 d左右后葉片逐漸死亡,沒(méi)有原球莖產(chǎn)生,與Teixeira da silva等[17]的報(bào)道一致,葉片誘導(dǎo)原球莖不成功可能與激素的種類有關(guān)[18]。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)2,4-D的誘導(dǎo)效果沒(méi)有NAA好,與Huan等[5,6]的報(bào)道是一致的,實(shí)驗(yàn)濃度范圍內(nèi)1.0 mg/L NAA+1.0 mg/L BA對(duì)原球莖的誘導(dǎo)效果好,這與徐宏英等[11]的結(jié)果略有差異,可能與試管苗體內(nèi)的激素濃度變化有關(guān)。傳統(tǒng)的增殖方式主要是由原球莖直接獲得生根的小植株;也有的以初次誘導(dǎo)的原球莖或原球莖薄層細(xì)胞為外植體誘導(dǎo)出愈傷組織或胚性愈傷組織,獲得增殖的原球莖后再獲得小植株[19,20]。本實(shí)驗(yàn)中以不定芽為外植體,有原球莖的形成,但未見(jiàn)愈傷組織形成。增殖培養(yǎng)40 d后增殖系數(shù)均在4.67以上,1.0 mg/L BA+0.5 mg/L NAA的增殖效果最好,增殖系數(shù)達(dá)7.90,高于以往的報(bào)道[21]。在生根實(shí)驗(yàn)中,較高濃度的NAA和蔗糖有利于根的生長(zhǎng)和植株伸長(zhǎng),可適當(dāng)縮短生根時(shí)間,對(duì)移栽后植株的生長(zhǎng)有利。

參考文獻(xiàn):

[1] 胡松華. 熱帶蘭花[M]. 北京:中國(guó)林業(yè)出版社,2002.

[2] BEGUM A, TAMAKI M, TAHARA M, et al. Somatic embryogenesis in cymbidium through in vitro culture of inner tissue of protocorm-like bodies[J]. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science,1994,63(2):419-427.

[3] LIN Y H, CHANG C, CHANG W C. Plant regeneration from callus culture of a Paphiopedilum hybrid[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture,2000,62(1):21-25.

[4] 李杰,黃敏仁,王明庥,等. 植物外源激素對(duì)大花蕙蘭體胚發(fā)生影響的研究[J]. 北京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2005,27(4):65-68.

[5] HUAN L V T, TAKAMURA T, TANAKA M. Callus formation and plant regeneration from callus through somatic embryo structures in Cymbidium orchid[J]. Plant Science,2004,166(6):1443-1449.

[6] HUAN L V T, TANAKA M. Callus induction from protocorm-like body segments and plant regeneration in Cymbidium(Orchidaceae)[J]. Journal of Horticultural Science & Biotechnology,2004,79(3):406-410.

[7] ROY J, BANERJEE N. Induction of callus and plant regeneration from shoot-tip explants of Dendrobium fimbriatum Lindl. var. oculatum Hk. f[J].Scientia Horticulturae,2003,97(3):333-340.

[8] ZHAO P, WU F, FENG F S, et al. Protocorm-like body (PLB) formation and plant regeneration from the callus culture of Dendrobium candidum Wall ex Lindl.[J]. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 2008, 44(3):178-185.

[9] 劉園,王四清.大花蕙蘭(Cymbidium hybridum)的研究動(dòng)向[J]. 園藝學(xué)報(bào),2005,32(4):748-752.

[10] 譚文澄,戴策剛.觀賞植物組織培養(yǎng)技術(shù)[M].北京:中國(guó)林業(yè)出版社,1991.237-278

[11] 徐宏英,趙玉明,謝海軍,等.大花蕙蘭組培快繁影響因素分析[J]. 園藝學(xué)報(bào),2002,29(2):183-185.

[12] BEGUM A, TAKAMI M, KAKO S. Formation of protocorm-like bodies (PLB) and shoot development through in vitro culture of outer tissue of Cymbidium PLB[J]. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science,1994,63(3):663-673.

[13] CHANG C,CHANG W C. Plant regeneration from callus culture of Cymbidium ensifolium var. misericors[J]. Plant Cell Reports,1998,17(4):251-255.

[14] KUSUMOTO M. Effects of coconut milk, agar and sucrose concentrations and medium pH on the proliferation of Cymbidium protocor

m-like bodies cultured in vitro[J]. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science,1980,48(4):503-509.

[15] MOREL G M. Tissue culture: A new means of clonal propagation of orchids[J]. Am Orchid Soc Bull,1964,33:473-478.

[16] DA SILVA J A T, YAM T, FUKAI S, et al. Establishment of optimum nutrient media for in vitro propagation of Cymbidium sw.(Orchidaceae) using protocorm-like body segments[J]. Propagation of Ornamental Plants,2005,5(3):129-136.

[17] TEIXEIRA DA SILVA J A, TANAKA M. Multiple regeneration pathways via thin cell layers in hybrid Cymbidium (Orchidaceae)[J]. Journal of Plant Growth Regulation,2006,25(3):203-210.

[18] GOW W P, CHEN J T, CHANG W C. Influence of growth regulators on direct embryo formation from leaf explants of Phalaenopsis orchids[J]. Acta Physiologiae Plantarum,2008, 30(4):507-512.

[19] TEIXEIRA DA SILVA J A, CHAN M T, CHAI M L, et al. Priming abiotic factors for optimal hybrid Cymbidium (Orchidaceae) PLB and callus induction, plantlet formation, and their subsequent cytogenetic stability analysis[J]. Scientia Horticulturae,2006,109(4):368-378.

[20] SILVA J A T, SINGH N, TANAKA M. Priming biotic factors for optimal protocorm-like body and callus induction in hybrid Cymbidium(Orchidaceae), and assessment of cytogenetic stability in regenerated plantlets[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture,2006,84(2):100119-100128.

[21] 楊玉珍,孫天洲,孫廷,等. 大花蕙蘭組織培養(yǎng)和快速繁殖技術(shù)研究[J].北京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2002,24(2):86-88.

猜你喜歡
原球莖組織培養(yǎng)
鐵皮石斛原球莖富硒懸浮培養(yǎng)條件優(yōu)化
秋水仙素對(duì)澤林考蘭原球莖生長(zhǎng)及分化的影響
杜鵑蘭類原球莖快速增殖研究
種子(2021年6期)2021-07-16 06:02:42
天然有機(jī)物對(duì)鐵皮石斛原球莖生長(zhǎng)及有效成分的影響
紅花木蓮組織培養(yǎng)外植體消毒方法初步研究
文心蘭切花無(wú)病毒種苗組培快繁生產(chǎn)技術(shù)
東方百合“甜夢(mèng)”花器官組織培養(yǎng)再生植株研究
瀕危植物南川木菠蘿組織培養(yǎng)技術(shù)研究
天然植物激素對(duì)鐵皮石斛組培苗誘導(dǎo)芽分化的影響
科技視界(2016年22期)2016-10-18 14:55:15
迷你觀賞植物的組織培養(yǎng)與銷(xiāo)售
锦屏县| 沛县| 文昌市| 灌阳县| 建平县| 论坛| 峡江县| 宜君县| 平和县| 娄底市| 双桥区| 阿合奇县| 永兴县| 麦盖提县| 浑源县| 海伦市| 张家川| 喀喇| 巴东县| 长寿区| 桓台县| 微山县| 庄河市| 顺义区| 晋宁县| 云安县| 高安市| 广灵县| 泾源县| 胶州市| 海兴县| 定陶县| 三穗县| 鞍山市| 邵阳县| 措勤县| 凤山市| 常州市| 南昌县| 绥芬河市| 厦门市|