蔡琪敏, 莊靜娜, 魏銀文, 吳寒華,崔宇輝, 曹麗凌, 蔣冬花
(浙江師范大學(xué)化學(xué)與生命科學(xué)學(xué)院,浙江金華 321004)
紅曲菌在我國(guó)已經(jīng)有上千年的應(yīng)用歷史,是我國(guó)寶貴的科學(xué)文化遺產(chǎn)[1].現(xiàn)代研究表明,紅曲具有降血脂、降血壓、抗氧化、抗癌、抗菌、抗疲勞等多重功效[2].紅曲菌能產(chǎn)生 Monacolins類、γ-氨基丁酸(GABA)、麥角固醇、色素、淀粉酶等多種生理活性物質(zhì)[3],在食品、釀酒、制醋、中藥等方面都有著廣泛的用途[4].從醫(yī)學(xué)角度看,紅曲菌中含有許多值得研究的基因.但迄今為止,對(duì)紅曲菌的研究主要集中在菌種分類與選育、發(fā)酵條件研究、桔霉素檢測(cè)等方面,關(guān)于其分子生物學(xué)方面的研究才剛剛起步,只在紅曲菌分類、DNA文庫(kù)構(gòu)建、遺傳轉(zhuǎn)化體系建立、Monacolin K和桔霉素代謝調(diào)控途徑相關(guān)基因的研究等方面取得了一定的進(jìn)展[5-9],對(duì)紅曲菌的遺傳背景知識(shí)了解很少,對(duì)紅曲菌的形態(tài)分化、發(fā)育及次生代謝相關(guān)基因信息的報(bào)道也很少.
本實(shí)驗(yàn)以根癌農(nóng)桿菌介導(dǎo)的紅曲菌突變體庫(kù)中538株轉(zhuǎn)化子菌株為材料,通過菌落形態(tài)觀察并結(jié)合顯微特征分析,篩選轉(zhuǎn)化子,進(jìn)行分子驗(yàn)證和穩(wěn)定性檢測(cè),并檢測(cè)了紅曲菌中的主要代謝產(chǎn)物紅曲色素和γ-氨基丁酸(GABA),以期為今后研究紅曲菌代謝產(chǎn)物的合成調(diào)控機(jī)理奠定基礎(chǔ).
出發(fā)菌株:紫色紅曲菌(Monascus purpureus)S菌株,由本實(shí)驗(yàn)室篩選并保藏;
突變菌株:538株轉(zhuǎn)化子菌株來自本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建的紅曲菌T-DNA插入突變庫(kù),由本實(shí)驗(yàn)室保藏.
采用實(shí)驗(yàn)室建立的根癌農(nóng)桿菌介導(dǎo)紅曲菌的高效轉(zhuǎn)化體系構(gòu)建突變體庫(kù):紅曲菌在PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng)21 d后收集孢子,制備紅曲菌孢子懸浮液,孢子濃度為106個(gè)/mL,根癌農(nóng)桿菌溶液的A600為0.5,誘導(dǎo)劑乙酰丁香酮(AS)的濃度為100 μmol/L,農(nóng)桿菌與紅曲菌在25℃共培養(yǎng)3 d.
將轉(zhuǎn)化子活化后轉(zhuǎn)接到PDA培養(yǎng)基上,30℃培養(yǎng)7~14 d,與出發(fā)菌株S比較,根據(jù)菌落形態(tài)、大小、顏色和生長(zhǎng)速度等特征,挑選變異明顯的轉(zhuǎn)化子,拍照,保存?zhèn)溆茫?/p>
將隨機(jī)挑選的20株紅曲菌轉(zhuǎn)化子用無菌牙簽挑取菌絲接種到不含潮霉素的PDA培養(yǎng)基上,30℃培養(yǎng)7 d.連續(xù)轉(zhuǎn)接6次后,再轉(zhuǎn)接到含潮霉素的PDA培養(yǎng)基上,同時(shí)接種出發(fā)菌株S作為對(duì)照,30℃培養(yǎng),觀察轉(zhuǎn)化子的生長(zhǎng)情況和菌落形態(tài),并計(jì)算其穩(wěn)定性.計(jì)算公式為:轉(zhuǎn)化子穩(wěn)定性
1.5.1 轉(zhuǎn)化子基因組DNA的提取
將轉(zhuǎn)化子菌株接種于PDA培養(yǎng)基上活化,按2%的接種量接入裝有40 mL PDA培養(yǎng)基的250 mL錐形瓶中,30℃,200 r/min振蕩培養(yǎng)3 d.過濾收集菌絲體,洗滌,用濾紙及吸水紙盡量吸干水分.取適量菌絲樣品于研缽中,加液氮快速研磨成粉末.采用十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)法提取基因組 DNA[10].
1.5.2 聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)
根據(jù)pATMT1上的潮霉素基因序列設(shè)計(jì)一對(duì)引物HygS1和HygA1,序列為:5'-ATGCCTGAACT CACCGCGAC-3',5'-CTATTCCTTTGCCCTCGGAC-3',50 μL 體系中進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增.PCR 程序?yàn)?4℃ 3 min后進(jìn)入循環(huán):94℃ 20 s,58℃ 60 s,72℃ 2 min,共35個(gè)循環(huán),然后72℃延伸10 min.電泳檢測(cè),拍照記錄.
將活化后的轉(zhuǎn)化子接種到PDA培養(yǎng)基上,30℃培養(yǎng)7~14 d,觀察菌落形態(tài)特征.根據(jù)文獻(xiàn)[11]的方法對(duì)供試菌株進(jìn)行觀察和描述.
用接種環(huán)挑取轉(zhuǎn)化子的菌絲,制成玻片,在顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)化子的顯微特征.
將轉(zhuǎn)化子菌株接種于PDA培養(yǎng)基上活化,按2%接種量接入培養(yǎng)基中,30℃,200 r/min振蕩培養(yǎng)7 d.取培養(yǎng)液加95%乙醇溶液,4℃,8 000 r/min離心15 min,取上清液,稀釋,以相同處理(加95%乙醇溶液)的不接入紅曲菌的培養(yǎng)液為空白對(duì)照,測(cè)定300~600 nm波長(zhǎng)下的吸光度,分析吸收峰值.色價(jià)(U/mL)=稀釋倍數(shù)×吸光度.
將轉(zhuǎn)化子菌株接種于PDA培養(yǎng)基上活化,按2%接種量接入培養(yǎng)基中,30℃,200 r/min振蕩培養(yǎng)48 h.采用改良紙色譜法[12],測(cè)定520 nm處的吸光度,與標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)比,計(jì)算 γ-氨基丁酸(GABA)的產(chǎn)量.
采用實(shí)驗(yàn)室建立的根癌農(nóng)桿菌介導(dǎo)紅曲菌的高效轉(zhuǎn)化體系構(gòu)建突變體庫(kù),共獲得538株轉(zhuǎn)化子.
將538株轉(zhuǎn)化子接種到PDA培養(yǎng)基上,隨機(jī)挑選20株突變株進(jìn)行穩(wěn)定性研究.結(jié)果顯示,連續(xù)轉(zhuǎn)接6次后,對(duì)照菌株不能生長(zhǎng),而20株轉(zhuǎn)化子菌株均能在含有100 μg/mL潮霉素的PDA培養(yǎng)基上正常生長(zhǎng),其遺傳穩(wěn)定性高達(dá)100%,比文獻(xiàn)[8]中的高,表明潮霉素抗性基因已經(jīng)整合到紅曲菌基因組中并能穩(wěn)定遺傳.
如果根癌農(nóng)桿菌Ti質(zhì)粒中的T-DNA成功轉(zhuǎn)移到紫色紅曲菌基因組DNA中,1 106 bp就能擴(kuò)增出潮霉素基因特征條帶,據(jù)此可以鑒定T-DNA是否成功插入到紅曲菌基因組中.
隨機(jī)選取9株具有代表性的轉(zhuǎn)化子菌株進(jìn)行PCR鑒定,并與出發(fā)菌株S比較,結(jié)果見圖1.這9株供試菌株在1 000 bp左右均有條帶,且條帶清晰、無雜帶,說明T-DNA已經(jīng)插入到紫色紅曲菌基因組DNA中.
圖1 紅曲菌轉(zhuǎn)化子的PCR鑒定
2.4.1 菌落形態(tài)
將538株轉(zhuǎn)化子接種到PDA培養(yǎng)基上,30℃培養(yǎng)7 d,比較轉(zhuǎn)化子菌株與出發(fā)菌株S在菌落形態(tài)、顏色等方面的差異.結(jié)果表明,大部分轉(zhuǎn)化子與出發(fā)菌株差別不大,只有少數(shù)轉(zhuǎn)化子發(fā)生了較大變化.選取有代表性的9株轉(zhuǎn)化子菌株與出發(fā)菌株一起觀察,其菌落特征見表1和圖2.
2.4.2 顯微形態(tài)
將9株轉(zhuǎn)化子菌株與出發(fā)菌株S在PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng)7 d,挑取菌絲制成玻片,在顯微鏡下觀察形態(tài)特征.結(jié)果如圖3所示:出發(fā)菌株S的菌絲呈透明膠管狀,隔膜清晰,分生孢子與子囊孢子均較多;轉(zhuǎn)化子S25的菌絲透明且細(xì)小,隔膜不明顯,孢子很少;轉(zhuǎn)化子S18,S29和S30的菌絲中色素顆粒均較多,呈現(xiàn)紅色,不透明,但S29的孢子很少,S30的隔膜清晰,S18與S29的隔膜不清晰;轉(zhuǎn)化子S32和S36的菌絲纖細(xì)透明,分生孢子較多,但S36的菌絲形狀不規(guī)則,旁枝很多;轉(zhuǎn)化子S34的菌絲干凈透明,隔膜明顯;轉(zhuǎn)化子S41和S55的菌絲中內(nèi)容物均較多,前者菌絲中多為色素顆粒,后者菌絲中其他內(nèi)容物居多,且前者的菌絲變異較多.
表1 9株代表性轉(zhuǎn)化子菌株的菌落形態(tài)
圖3 9株代表性菌株的顯微形態(tài)結(jié)構(gòu)
將紅曲菌菌株的乙醇浸提液適當(dāng)稀釋后,于300~600 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度,每個(gè)轉(zhuǎn)化子菌株設(shè)置3個(gè)重復(fù).由表2可見,紅曲菌轉(zhuǎn)化子的紅曲色素不僅色價(jià)發(fā)生了變化,而且吸收波長(zhǎng)也發(fā)生了不同程度的變化.如:出發(fā)菌株S的吸收峰Ⅰ和吸收峰Ⅱ分別為415和495;而色價(jià)明顯下降的S18的吸收峰Ⅰ變?yōu)?90,吸收峰Ⅱ沒變.原因可能是轉(zhuǎn)化子的色素代謝途徑發(fā)生了某些變化,使色素的組成發(fā)生了改變,這對(duì)色素相關(guān)基因的研究有重要意義.
轉(zhuǎn)化子菌株與出發(fā)菌株中GABA含量的紙色譜見圖4.圖4顯色明顯,拖尾現(xiàn)象與背景干擾等情況較少.由圖4可以清楚地看出轉(zhuǎn)化子菌株在GABA含量上的差異,在同樣是5 μL上樣量的情況下,轉(zhuǎn)化子菌株 S18,S25,S30,S32,S36,S41和S55的GABA含量與出發(fā)菌株S相比有明顯的升高,S18和S32更是達(dá)到1 g/L以上.
表2 9株代表性轉(zhuǎn)化子紅曲色素的變化
圖4 9株代表性轉(zhuǎn)化子培養(yǎng)液中GABA的紙色譜分析結(jié)果
9株轉(zhuǎn)化子與出發(fā)菌株S的GABA含量的分析結(jié)果見表3.
表3 9株代表性轉(zhuǎn)化子培養(yǎng)液中GABA含量的變化
T-DNA插入到紅曲菌基因組之后,會(huì)影響某些基因的表達(dá),從而引起突變,這些變化將會(huì)表現(xiàn)在各個(gè)方面,形態(tài)突變是比較直觀的方面,而菌落形態(tài)等的直觀變化又常常和其他的重要改變,如次級(jí)代謝產(chǎn)物的變化相關(guān)聯(lián)[13].
本實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),與出發(fā)菌株相比,轉(zhuǎn)化子菌落形態(tài)發(fā)生的變異主要表現(xiàn)在以下幾個(gè)方面:菌落大小、菌落顏色、氣生菌絲形態(tài)、菌體產(chǎn)孢子能力、菌落發(fā)生隆起突變、出現(xiàn)輻射紋或裂紋等.
微生物的次級(jí)代謝是指在一定的生長(zhǎng)時(shí)期(通常在后期),以初級(jí)代謝物質(zhì)為前體,合成一些對(duì)微生物的生命活動(dòng)無明確功能的物質(zhì)的過程.次級(jí)代謝產(chǎn)物的合成與相關(guān)酶催化的代謝途徑有關(guān),它們多數(shù)是菌株所特有的性質(zhì)[14].紅曲菌在生長(zhǎng)過程中能產(chǎn)生多種次級(jí)代謝產(chǎn)物.盡管有學(xué)者對(duì)紅曲菌部分代謝產(chǎn)物做了研究,如法國(guó)的Hajjaj等的研究表明紅曲菌產(chǎn)桔霉素與紅曲色素的代謝途徑的起點(diǎn)相同[15],但是紅曲菌的各種次級(jí)代謝過程及代謝途徑尚不清楚.
本實(shí)驗(yàn)從538株轉(zhuǎn)化子中挑選了9株代表性菌株,主要對(duì)9株轉(zhuǎn)化子菌株與出發(fā)菌株的紅曲色素與γ-氨基丁酸(GABA)的分泌能力進(jìn)行了分析研究,結(jié)果表明轉(zhuǎn)化子不同代謝產(chǎn)物的分泌能力均發(fā)生了不同程度的變化,推測(cè)可能是T-DNA插入紅曲菌基因組阻斷了不同的調(diào)控途徑或代謝途徑所致.
[1]傅金泉.中國(guó)紅曲及其實(shí)用技術(shù)[M].北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社,1997:1-3.
[2]周禮紅,王正祥,諸葛健.紅曲菌不同轉(zhuǎn)化方法的比較[J].遺傳,2006,28(4):479-485.
[3]張徐蘭,吳天祥,李鵬.紅曲霉有效成分應(yīng)用研究進(jìn)展[J].釀酒科技,2006(9):78-81.
[4]戴偉,李立,劉海波,等.紅曲調(diào)節(jié)血脂作用的研究[J].上海預(yù)防醫(yī)學(xué)雜志,2003,15(8):174.
[5]邢旺興,蘇國(guó)同,王曉明.關(guān)于紅曲霉分類地位的認(rèn)識(shí)[J].解放軍藥學(xué)學(xué)報(bào),2004,20(2):119-121.
[6]葉硯,蔣冬花,嵇豪.響應(yīng)面法優(yōu)化紅曲霉X27液態(tài)發(fā)酵產(chǎn)γ-氨基丁酸工藝條件[J].中國(guó)糧油學(xué)報(bào),2010(9):106-110.
[7]李燕萍,許楊,阮瓊芳,等.紅曲菌Fosmid文庫(kù)的構(gòu)建與分析[J].北京師范大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2008,44(2):188-192.
[8]王汝毅.根癌農(nóng)桿菌介導(dǎo)紅曲霉轉(zhuǎn)化庫(kù)的構(gòu)建及轉(zhuǎn)化子性質(zhì)研究[D].武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,2005.
[9]趙玖,周立平,嘉曉琴.紅曲菌Monacolin K合成基因的研究進(jìn)展[J].中國(guó)釀造,2010(4):5-8.
[10]Stevens R.Mycology Guidebook[M].Seatle:University of Washington Press,1974.
[11]李鐘慶,郭芳.紅曲菌的形態(tài)與分類學(xué)[M].北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社,2003.
[12]蔣冬花,后家衡,李杰,等.紅腐乳中高產(chǎn)γ-氨基丁酸紅曲菌菌株的篩選[J].浙江師范大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2007,30(4):447-452.
[13]Wang Lu,Wang Wu,Xu Ganrong.Promotion of Monacolin K production by Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation in Monascus albidus 9901[J].Curr Microbiol,2011,62(2):501-507.
[14]沈萍,陳向東.微生物學(xué)[M].北京:高等教育出版社,2006.
[15]季宏飛.紅色紅曲菌pksCT基因缺失株的構(gòu)建及其固液態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)紅曲色素的研究[D].江西:南昌大學(xué)中德聯(lián)合研究院,2009.