李婷婷 綜述 吳本儼 審校
解放軍總醫(yī)院 南樓消化內科,北京 100853
轉錄因子CUTL1作為轉錄激活因子和轉錄抑制因子參與許多細胞基因的轉錄調節(jié),從而調節(jié)細胞的生長、分化和發(fā)育[1]。1999年,Zeng等[2]進行雜合性缺失研究,認為CUTL1可能作為腫瘤抑制基因的候選基因。2002年,Goulet等[3]的體外實驗表明,CUTL1的高表達可促進乳腺癌的發(fā)生。細胞周期蛋白A-cdk1和蛋白激酶C在多個位點對CUTL1進行磷酸化的調節(jié),抑制其DNA結合活性[4]。CUTL1還是TGFβ信號轉導通路的一個靶標,介導TGFβ的促遷移活性并在促進細胞運動和腫瘤細胞侵襲性生長方面發(fā)揮重要作用[5],下調CUTL1的表達有望成為腫瘤治療的新靶點。CUTL1(Cut like1),又稱CutX1或CCAAT置換蛋白(cux/CDP),屬于在進化上高度保守的同源結構域轉錄因子CDP家族[1]。熒光原位雜交證實CUTL1定位于7q22,參與細胞的生長、分化和發(fā)育,該區(qū)域在多種腫瘤中表達缺失[1,6]。
1.1 CUTL1與腫瘤發(fā)生 2011年,Hanahan和Weinberg[7]在Cell上發(fā)表文章指出腫瘤細胞有十個重要特點: 自給自足的生長信號,抗生長信號的不敏感,回避凋亡,潛力無限的復制能力,持續(xù)的血管生成,組織浸潤和轉移避免免疫摧毀,促進腫瘤的炎癥,細胞能量異常以及基因組不穩(wěn)定和突變。研究表明CUTL1可提高腫瘤細胞的腫瘤特性,如持續(xù)的血管生成,抗凋亡能力等。Vadnais等[8]研究表明轉錄因子CUTL1不僅可以調控細胞周期進展和DNA修復,還有利于維持基因組的完整性。Siam等[9]在小鼠模型中發(fā)現過表達或敲除其靶基因Lats1均可導致腫瘤發(fā)生。
1.2 CUTL1與腫瘤的侵襲轉移 腫瘤細胞的運動、遷移和侵襲以及抗凋亡能力與CUTL1緊密相關,CUTL1作為原癌基因促進腫瘤細胞的侵襲和轉移。Michl等指出CUTL1的活性和多種癌細胞系的遷徙、轉移相關,并受TGF-β調控,從而激活細胞運動、遷徙和細胞外基質中的有關基因[5,10]。Aleksic等[11]研究發(fā)現CUTL1可促進腫瘤細胞遷移,指出CUTL1可穩(wěn)定Src并通過上調Csk減少蛋白酶介導的蛋白降解。Kedinger等[12]探討了促進癌細胞運動能力的另一可能機制,發(fā)現CUTL1的同種型p110 CUTL1在CUTL1引起的癌細胞遷移運動中發(fā)揮作用,同時發(fā)現p110 CUTL1可以刺激細胞播散和黏附。研究顯示,多個CUTL1靶基因的表達與腫瘤細胞浸潤周圍組織有關[13]。用RNAi的方法下調CUTL1的表達能顯著削弱腫瘤細胞在實驗性轉移模型中的肺克隆形成率,提示CUTL1的轉錄活性在腫瘤侵襲轉移中發(fā)揮重要作用,并可能增加腫瘤的去分化能力[8]。
2.1 在轉錄調控中發(fā)揮作用 Cut重復子和Cut同源結構域的不同組合可產生不同的DNA結合活性,其活性與細胞增殖和細胞周期進展有關,在增殖細胞中增加,終末分化時下降,并能調節(jié)參與終末分化的基因。實驗證實用Cux-1同系物進行敲除實驗后的小鼠,其肺上皮細胞生長發(fā)育遲緩、毛囊缺陷、雄性個體生殖能力下降、T細胞和B細胞功能缺陷。與此相反,轉Cux 1基因小鼠則表現為器官肥大和多器官增生[14]。CDP/Cut功能可集中于轉錄后修飾如磷酸化和乙?;?。蛋白酶L通過加工處理轉錄因子CDP/Cux產生較短的異構體,從而參與細胞周期的調控[8]。
2.2 為TGFβ信號轉導通路的一個靶標 CUTL1可促進細胞的運動和侵襲能力。已知TGFβ為調節(jié)腫瘤細胞遷移、侵襲和上皮間質轉變的主要因子。通過研究腫瘤相關信號途徑對CUTL1的作用,顯示CUTL1為TGFβ的一個靶標,介導TGFβ的促遷移活性[15]。TGFβ可促進CUTL1的表達[16-17]。作為重要的轉錄因子,CUTL1參與調控多個生理病理過程。除了PI3K/Akt和TGFβ兩個重要的信號轉導通路,Liu等認為CUTL1在其他信號通路如WNT/β-catenin和JAK/STAT3中也發(fā)揮作用,WNT5A是WNT基因家族成員分泌的信號蛋白,是CUTL1的下游分子,同時,CDP和Sox2可以相互作用,Sox2是重要的轉錄因子,在細胞的自我更新、多潛能分化以及未分化胚胎干細胞發(fā)育過程中發(fā)揮重要作用,參與JAK/STAT3信號通路; CUTL1在WNT/β-catenin和JAK/STAT3信號通路中發(fā)揮作用,同時分別通過TNF、Src和shh(Sonic hedgehog)參與TNF、MAPK/ERK以及Hedgehog信號通路,據此推斷,CUTL1可以參與和整合多個信號通路; 轉錄因子CUTL1在腫瘤發(fā)生發(fā)展中的作用目前存在爭議,部分研究者認為CUTL1可以通過降低表達抑制腫瘤發(fā)生,然而,更多的研究者認為CUTL1過表達可以促進腫瘤進展[18-20]。
現有數據顯示,CUTL1在建立腫瘤細胞偏愛運動和侵襲行為的模式中起關鍵作用[21]。由TGFβ誘導的CUTL1的表達對TGFβ促進細胞運動是必要的,但其精確機制還有待進一步研究,CUTL1可能是晚期腫瘤中TGFβ腫瘤促進效應的一個關鍵介導者[8]。研究發(fā)現CUTL1在胃癌耐藥細胞和組織中表達下調[22],通過促進細胞多極分裂導致染色體不穩(wěn)定[23],其靶標谷氨酸受體 GRIA3在胰腺癌進展中發(fā)揮一定作用[24]。迄今為止,僅有一篇文獻報道CUTL1在翻譯水平的調控作用。Xu等[25]通過熒光報告基因表達等研究發(fā)現,肝臟特異性的microRNA miR122,在小鼠肝胚胎發(fā)育中表達,可對CUTL1的翻譯起抑制作用,在小鼠胎肝和人肝的癌細胞中,四類肝細胞高表達的轉錄因子(包括HNF1α,HNF3β,HNF4α以及C/EBPα)共同調控miR122的表達,同時,通過過表達和基因敲除等方式,在肝臟發(fā)育的轉錄后水平,CUTL1的表達逐漸被靜止。
轉錄因子CUTL1在腫瘤發(fā)生發(fā)展中起重要作用,有望成為阻斷腫瘤進展的新靶點和腫瘤化療的新星。檢測其在腫瘤發(fā)生發(fā)展過程中的表達,與其他腫瘤相關轉錄因子的相互作用,及其靶基因和已知腫瘤相關基因的關系網絡是未來研究的主要方向。新的靶向研究技術如適體-siRNA結合體將有助于進一步探討轉錄因子CUTL1在腫瘤發(fā)生發(fā)展及腫瘤治療中的作用。
1 Harada R, Bérubé G, Tamplin OJ, et al. DNA-binding specificity of the cut repeats from the human cut-like protein[J]. Mol Cell Biol, 1995, 15(1): 129-140.
2 Zeng WR, Watson P, Lin J, et al. Refined mapping of the region of loss of heterozygosity on the long arm of chromosome 7 in human breast Cancer defines the location of a second tumor suppressor gene at 7q22 in the region of the CUTL1 gene[J]. Oncogene, 1999, 18(11): 2015-2021.
3 Goulet B, Watson P, Poirier M, et al. Characterization of a tissuespecific CDP/Cux isoform, p75, activated in breast tumor cells[J].Cancer Res, 2002, 62(22): 6625-6633.
4 Goulet B, Baruch A, Moon NS, et al. A cathepsin L isoform that is devoid of a signal peptide localizes to the nucleus in S phase and processes the CDP/Cux transcription factor[J]. Mol Cell, 2004, 14(2): 207-219.
5 Michl P, Ramjaun AR, Pardo OE, et al. CUTL1 is a target of TGF(beta) signaling that enhances cancer cell motility and invasiveness[J]. Cancer Cell, 2005, 7(6):521-532.
6 Nepveu A. Role of the multifunctional CDP/Cut/Cux homeodomain transcription factor in regulating differentiation, cell growth and development[J]. Gene, 2001, 270(1-2): 1-15.
7 Hanahan D, Weinberg RA. Hallmarks of Cancer: the next Generation[J]. Cell, 2011, 144(5): 646-674.
8 Vadnais C, Davoudi S, Afshin M, et al. CUX1 transcription factor is required for optimal ATM/ATR-mediated responses to DNA damage[J]. Nucleic Acids Res, 2012, 40(10): 4483-4495.
9 Siam R, Harada R, Cadieux C, et al. Transcriptional activation of the Lats1 tumor suppressor gene in tumors of CUX1 transgenic mice[J].Mol Cancer, 2009, 8:60.
10 Michl P, Downward J. CUTL1: a key mediator of TGFbeta-induced tumor invasion[J]. Cell Cycle, 2006, 5(2):132-134.
11 Aleksic T, Bechtel M, Krndija D, et al. CUTL1 promotes tumor cell migration by decreasing proteasome-mediated Src degradation[J].Oncogene, 2007, 26(40): 5939-5949.
12 Kedinger V, Sansregret L, Harada R, et al. p110 CUX1 homeodomain protein stimulates cell migration and invasion in part through a regulatory cascade culminating in the repression of e-cadherin and occludin[J]. J Biol Chem, 2009, 284(40):27701-27711.
13 Joyce JA, Baruch A, Chehade K, et al. Cathepsin cysteine proteases are effectors of invasive growth and angiogenesis during multistage tumorigenesis[J]. Cancer Cell, 2004, 5(5): 443-453.
14 Luong MX, van der Meijden CM, Xing D, et al. Genetic ablation of the CDP/Cux protein C terminus results in hair cycle defects and reduced male fertility[J]. Mol Cell Biol, 2002, 22(5): 1424-1437.
15 Sun J, Deng WM. Notch-dependent downregulation of the homeodomain gene cut is required for the mitotic cycle/endocycle Switch and cell differentiation in Drosophila follicle cells[J].Development, 2005, 132(19): 4299-4308.
16 Martin-Soudant N, Drachman JG, Kaushansky K, et al. CDP/cut DNA binding activity is down-modulated in granulocytes,macrophages and erythrocytes but remains elevated in differentiating megakaryocytes[J]. Leukemia, 2000, 14(5): 863-873.
17 Sansregret L, Nepveu A. The multiple roles of CUX1: insights from mouse models and cell-based assays[J]. Gene, 2008, 412(1-2):84-94.
18 Liu KC, Lin BS, Zhao M, et al. Cutl1: a potential target for Cancer therapy[J]. Cell Signal, 2013, 25(1): 349-354.
19 Engelen E, Akinci U, Bryne JC, et al. Sox2 cooperates with Chd7 to regulate genes that are mutated in human syndromes[J]. Nat Genet, 2011, 43(6): 607-611.
20 Ripka S, K?nig A, Buchholz M, et al. WNT5A--target of CUTL1 and potent modulator of tumor cell migration and invasion in pancreatic Cancer[J]. Carcinogenesis, 2007, 28(6): 1178-1187.
21 Hulea L, Nepveu A. CUX1 transcription factors: from biochemical activities and cell-based assays to mouse models and human diseases[J]. Gene, 2012, 497(1): 18-26.
22 Li T, Wang H, Sun Y, et al. Transcription factor CUTL1 is a negative regulator of drug resistance in gastric Cancer[J]. J Biol Chem,2013, 288(6): 4135-4147.
23 Sansregret L, Vadnais C, Livingstone J, et al. Cut homeobox 1 causes chromosomal instability by promoting bipolar division after cytokinesis failure[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011, 108(5):1949-1954.
24 Ripka S, Riedel J, Neesse A, et al. Glutamate receptor GRIA3--target of CUX1 and mediator of tumor progression in pancreatic Cancer[J]. Neoplasia, 2010, 12(8): 659-667.
25 Xu H, He JH, Xiao ZD, et al. Liver-enriched transcription factors regulate microRNA-122 that targets CUTL1 during liver development[J]. Hepatology, 2010, 52(4): 1431-1442.