王 歡,馮紅霞,張雅娜,王 妍,李 楊,江連洲,王 晶
(東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,黑龍江哈爾濱150030)
大豆分離蛋白形成乳化液后,形成的保護(hù)層可以防止油滴聚集和乳化狀態(tài)的破壞,即大豆蛋白乳化穩(wěn)定性[1-3]。蛋白形成的乳化體系性質(zhì)除了受蛋白分子本身的性質(zhì)影響還受各種外界因素的影響[4]。磷脂的疏水的脂肪酸基團(tuán)朝向空氣,親水的甘油磷酸酯基朝向水面排列,降低水油間的界面張力,從而有利于形成均一穩(wěn)定的乳化液[5-6]。磷脂中各組分的含量對(duì)其乳化性有一定影響[7-9]。
磷脂與蛋白復(fù)合,由于磷脂的特殊結(jié)構(gòu),可以改變蛋白在水中的分散性能,防止結(jié)團(tuán)[10-11]。Comas[12]提出不同存在狀態(tài)的大豆蛋白質(zhì)單獨(dú)存在或與卵磷脂交聯(lián);Taha采用不同的變性劑,高壓滅菌和極端pH處理,在添加變性蛋白質(zhì)的氧化油中會(huì)形成更多的脂質(zhì)-蛋白質(zhì)復(fù)合物[13-14]。
近年來(lái),我國(guó)豆制品行業(yè)不斷發(fā)展,大豆食品作為健康食品在全球市場(chǎng)的消費(fèi)趨熱。由于大豆蛋白質(zhì)與磷脂均具有良好的乳化性能,使傳統(tǒng)豆制品如豆腐、豆奶、豆?jié){等在加工中極易形成乳化體系,乳化體系界面特征直接關(guān)系到產(chǎn)品口感、貨架期、應(yīng)用等。而在實(shí)際生產(chǎn)加工過程中,pH對(duì)產(chǎn)品的質(zhì)量有一定的顯著影響。因此,全面探究pH對(duì)大豆蛋白-磷脂乳化體系的共建機(jī)制的影響,為有效解決傳統(tǒng)豆制品加工中產(chǎn)生的“乳化體系調(diào)控”瓶頸問題提供理論指導(dǎo)。
本文以大豆分離蛋白、大豆磷脂及葵花油為原料,制備復(fù)合乳化體系,經(jīng)不同pH環(huán)境處理下對(duì)復(fù)合乳化體系的影響。
大豆(東農(nóng)42) 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)大豆研究中心;大豆磷脂 KAYON,上??笊锛夹g(shù)有限公司;葵花油 超市購(gòu)買;電泳Marker 無(wú)錫同創(chuàng)生化試劑公司;Tris 無(wú)錫同創(chuàng)生化試劑公司;NaHSO3、NaOH、Na2HPO4、鄰苯二甲酸氫鉀 分析純。
LW-1600FC紫外可見分光光度計(jì) 上海菁華科技儀器有限公司;熒光正置顯微日本Nikon;激光粒度分析儀 BECKMAN COULTER;ES-2030冷凍干燥機(jī) HITACHI4;PHS-3C雷磁pH計(jì) 上海精科;均質(zhì)機(jī) 鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;LGR20-w高速低溫離心機(jī) 北京京立離心機(jī)有限公司;M ini-ProteinⅢ電泳儀 美國(guó)伯樂公司。
1.2.1 制備大豆分離蛋白 大豆分離蛋白的傳統(tǒng)提取方法為堿提酸沉法[15-16],主要利用大豆蛋白在高pH的情況下溶解度大,在等電點(diǎn)pH時(shí)溶解度最小的特點(diǎn)將其凝聚沉淀。
稱取足量的大豆,放入烘箱中烘干55℃干燥30m in;取出烘干后的大豆進(jìn)行剝皮,用Polymix A10高速粉碎機(jī)粉碎,倒出粉碎大豆粉過篩(40目)。把過篩后的大豆粉均分在幾個(gè)三角瓶中,按1∶3比例加入正己烷,放在磁力攪拌器上攪拌30min。時(shí)間到后,將三角瓶中的固液混合物全部倒入大離心筒中,配平,用低速離心機(jī)離心(4000×g,15m in)。重復(fù)上述的磁力攪拌和離心操作三次以上,除去上層液體將固形物全部倒入大燒杯中,再置于通風(fēng)櫥中使正己烷完全揮發(fā),既得脫脂豆粉備用。取適量脫脂豆粉與蒸餾水按1∶10比例在三角瓶中混合,加入NaOH調(diào)節(jié)pH至9,然后放在磁力加熱攪拌器上加熱攪拌50m in(50℃)。攪拌停止后,將三角瓶?jī)?nèi)的混合物倒入離心筒中,配平,離心15m in(4000×g)。將離心筒中的上清液倒入燒杯中,逐滴加入HCl調(diào)至pH4.6,再將混合物離心分離,取沉淀,用NaOH調(diào)節(jié)pH至7,攪拌40m in,將調(diào)節(jié)完pH的蛋白均勻置于平皿內(nèi),放入冷凍干燥機(jī)中進(jìn)行冷凍干燥,既得成品大豆分離蛋白。
1.2.2 蛋白含量測(cè)定 采用凱氏定氮法測(cè)蛋白質(zhì)含量[17]。
1.2.3 凝膠電泳分析 采用SDS-PAGE電泳方法[17-20]。
1.2.4 大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系的制備 根據(jù)國(guó)內(nèi)外研究確定大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系中蛋白:磷脂(w/w)為10∶1。將一定量的大豆蛋白溶解在pH為7的緩沖液中[12,21],常溫、磁力攪拌1h,加入大豆磷脂,繼續(xù)攪拌0.5h,將大豆蛋白、磷脂混合液倒入燒杯中,加入一定量的葵花油,在高速均質(zhì)機(jī)的作用下得到大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系[22]。測(cè)定乳化活性指數(shù)(EAI)和乳化穩(wěn)定性(ESI)。
1.2.4.1 大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系中蛋白濃度的確定 蛋白:磷脂(w/w)為10∶1,均質(zhì)條件:60s、20000r/m in,油相體積分?jǐn)?shù):25%,蛋白濃度:1、2、4、6、8、10、12、14、16mg/m L。
1.2.4.2 大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系中油相體積分?jǐn)?shù)的確定 蛋白:磷脂(w/w)為10∶1,均質(zhì)條件:60s、20000r/m in,蛋白濃度:10mg/m L,油相體積分?jǐn)?shù):10%、15%、25%、30%、35%、40%。
1.2.4.3 大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系中均質(zhì)時(shí)間的確定 蛋白:磷脂(w/w)為10∶1,均質(zhì)轉(zhuǎn)數(shù):20000r/m in,蛋白濃度:10mg/m L,油相體積分?jǐn)?shù):25%,均質(zhì)時(shí)間:20、30、40、50、60、120s。
1.2.5 理化因素指標(biāo)(pH)的選擇 制備pH 3~11的緩沖溶液[23]。pH 3~6緩沖液配制:檸檬酸-Na2HPO4(Mollvaine)緩沖液;pH7~9緩沖液配制:三羥甲基甲烷(Tris)-鹽酸緩沖液;pH 10緩沖液配制:甘氨酸-NaOH緩沖液;pH11緩沖液配制:磷酸緩沖液。
1.2.6 乳化體系性能指標(biāo)測(cè)定
1.2.6.1 乳化性的測(cè)定 將均質(zhì)后的乳狀液立即用0.1%的SDS溶液稀釋250倍,在500nm波長(zhǎng)的紫外分光光度計(jì)測(cè)定吸光值計(jì)算乳化活性指數(shù)(EAI)[12,24-25],靜置30m in后測(cè)定吸光值計(jì)算乳化穩(wěn)定性(ESI),公式如下:
式中:N:稀釋倍數(shù)(250);C:乳化液形成前蛋白質(zhì)水溶液中蛋白質(zhì)濃度(g/m L);φ:乳化液中油相體積分?jǐn)?shù);A0:0min時(shí)吸光值;A30:30min時(shí)吸光值。
1.2.6.2 粒徑分析 立即將均質(zhì)后的乳狀液慢慢滴入Malvern激光粒度分析儀的采樣裝置中測(cè)定粒度分布,測(cè)定溫度25℃[12]。
1.2.6.3 顯微鏡觀察 均質(zhì)后,立即將乳狀液至于載玻片上,蓋上蓋玻片,放置于熒光正置顯微鏡下,在100倍目鏡條件下觀察乳狀液的大小。
1.2.7 數(shù)據(jù)分析 所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均為“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”,n=3,采用ORIGIN 8.5和SPSS統(tǒng)計(jì)分析軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。
根據(jù)凱氏定氮方法測(cè)得制備的大豆分離蛋白中蛋白含量為85.78%。圖1是大豆分離蛋白的SDSPAGE電泳圖譜。由圖1可知,1號(hào)譜帶為蛋白Marker,2號(hào)譜帶為制備的大豆分離蛋白,根據(jù)Scion Image掃描分析軟件分析得到大豆分離蛋白7S亞基含量約為37.1,11S亞基含量約為60.7。大豆分離蛋白中7S和11S比例約為2∶3。
圖1 大豆分離蛋白的SDS-PAGE圖譜Fig.1 SDS-polyacrylamide gel electrophoresis of SPI fractions
2.2.1 蛋白濃度的確定 圖2、圖3分別為蛋白濃度對(duì)大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系的乳化活性指數(shù)和乳化穩(wěn)定性的影響。如圖2、圖3可見,隨著蛋白濃度的增加,復(fù)合乳化體系的乳化活性指數(shù)和穩(wěn)定性均增強(qiáng),但當(dāng)?shù)鞍诐舛冗_(dá)到10mg/m L時(shí),幅度趨于平緩,蛋白含量逐漸增多,磷脂的親水基團(tuán)-甘油磷酸酯基朝向水面排列,可以降低水油間的界面張力,提高了復(fù)合體系的乳化性,當(dāng)?shù)鞍走_(dá)到一定濃度后蛋白和磷脂的混合達(dá)到了飽和狀態(tài),乳化性能趨于平緩,在高濃度蛋白體系下,絮凝粒子之間間距很小,會(huì)通過氫鍵和膠體作用等方式相互作用。所以蛋白濃度選擇10mg/m L。
圖2 蛋白濃度對(duì)復(fù)合乳化體系EAI的影響Fig.2 The effectof protein concentration on the EAIof complex emulsion system
圖3 蛋白濃度對(duì)復(fù)合乳化體系ESI的影響Fig.3 The effect of protein concentration on the ESIof complex emulsion system
圖4 油相體積分?jǐn)?shù)對(duì)復(fù)合乳化體系EAI的影響Fig.4 The effectof the oil phase volume fraction on the EAIof complex emulsion system
2.2.2 油相體積分?jǐn)?shù)的確定 圖4、圖5為油相體積分?jǐn)?shù)對(duì)大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系的乳化活性指數(shù)和乳化穩(wěn)定性的影響。如圖4、圖5可見,隨著油相體積的增加,復(fù)合乳化體系的乳化活性指數(shù)和乳化穩(wěn)定性增強(qiáng),但當(dāng)?shù)鞍诐舛冗_(dá)到25%時(shí),乳化活性指數(shù)趨于平緩,在40%時(shí)有所下降;穩(wěn)定性幅度趨于平緩,在35%處略有降低,40%時(shí)又有所升高;是由于隨著油相體積的增多,蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系中蛋白和磷脂分子中親油基團(tuán)更緊密的連接油相增加乳化體系的穩(wěn)定性。所以油相體積選擇25%。
圖5 油相體積分?jǐn)?shù)對(duì)復(fù)合乳化體系ESI的影響Fig.5 The effectof the oil phase volume fraction on the EAIof complex emulsion system
2.2.3 均質(zhì)時(shí)間的確定 圖6、圖7分別為均質(zhì)時(shí)間對(duì)蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系乳化活性指數(shù)和乳化穩(wěn)定性的影響。從圖6、圖7中可以看出,隨著均質(zhì)時(shí)間的延長(zhǎng)乳化活性指數(shù)和乳化穩(wěn)定性均增強(qiáng),當(dāng)達(dá)到30s后乳化穩(wěn)定性略有變化但趨于穩(wěn)定,和Comas等[12]研究結(jié)果相似。所以均質(zhì)時(shí)間選擇30s。
圖6 均質(zhì)時(shí)間對(duì)復(fù)合乳化體系的EAI的影響Fig.6 The effectof homogeneous time on the EAIof complex emulsion system
圖7 均質(zhì)時(shí)間對(duì)復(fù)合乳化體系的ESI的影響Fig.7 The effect of homogeneous time on the ESIof complex emulsion system
圖8、圖9為pH對(duì)蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系的乳化活性和乳化穩(wěn)定性的影響。從圖8、圖9可見,在pH小于7時(shí),乳化活性及乳化穩(wěn)定性均較低,在pH4時(shí)出現(xiàn)最低值;當(dāng)pH大于7時(shí),隨著pH的增大,乳化活性及穩(wěn)定性均呈現(xiàn)緩慢增長(zhǎng)趨勢(shì),在pH11時(shí)又有小幅度的降低。在pH 4左右的乳化活性及穩(wěn)定性較低是因?yàn)榇朔秶诖蠖狗蛛x蛋白的等電點(diǎn)附近,蛋白沉降聚集,電荷幾乎為0,親水和親油基團(tuán)幾乎完全不能吸附水相和油相,此復(fù)合乳化體系中磷脂受pH影響較小,但磷脂含量較少所以不能抵制等電點(diǎn)對(duì)復(fù)合乳化體系的顯著影響。當(dāng)pH在中性及弱堿性環(huán)境下,乳化活性及穩(wěn)定性較好,在pH 11時(shí),堿性較強(qiáng),強(qiáng)堿環(huán)境開始對(duì)蛋白及磷脂結(jié)構(gòu)造成影響,故有下降趨勢(shì)。
圖8 pH對(duì)乳化活性指數(shù)(EAI)的影響Fig.8 The effectof different pH on the EAIof Soy protein-phospholipid complex emulsion system
圖9 pH對(duì)乳化穩(wěn)定性(ESI)的影響Fig.9 The ESIof Soy protein-phospholipid complex emulsion system with different pH
圖10 不同pH條件下大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系的粒徑分布Fig.1 0 The effectofdifferent pH on the particle size distribution of Soy protein-phospholipid complex emulsion system
圖10為不同pH條件下大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系的粒徑分布,由圖8、圖9可知pH對(duì)大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系乳化性的影響,而粒徑分布是評(píng)價(jià)乳化性的另一個(gè)指標(biāo),乳化活性越好,粒徑就越小。隨著pH的增大,粒徑曲線逐漸向左遷移,從圖10可見,在pH 3~6范圍內(nèi)粒徑大小在100~200μm內(nèi)較多,且pH 4時(shí)最多,在pH 7時(shí)粒徑大小多集中在40~50μm范圍內(nèi),而pH8~11范圍內(nèi)時(shí),粒徑均分布較小,且出現(xiàn)部分重疊現(xiàn)象,這些都與圖8、圖9的結(jié)論相似。
圖11為不同pH條件下大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系的顯微鏡觀察,由圖11可見,pH 3~6時(shí)乳化體系顆粒較大,小圓珠為油相,流動(dòng)相為水相,蛋白和磷脂吸附在油水界面上,pH 7時(shí)的顆粒小于pH 3~6時(shí)的顆粒,且大于pH 8,pH 9~10顆粒最小,pH 11的顆粒略大于pH 9~10的。這些均與圖10的粒徑分布相符合。
圖11 不同pH條件下大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系的顯微鏡觀察Fig.1 1 Themicroscope of Soy protein-phospholipid complex emulsion system with different pH
綜上,乳化活性與乳化穩(wěn)定性均在pH小于7時(shí)較低,尤其是在pH 4左右最低,主要原因是此范圍處于大豆分離蛋白的等電點(diǎn)附近,電荷為0;pH大于7時(shí),隨著pH的增加,乳化活性及乳化穩(wěn)定性呈現(xiàn)緩慢增加趨勢(shì),通過粒徑分布圖及顯微鏡觀察也同時(shí)對(duì)上述現(xiàn)象進(jìn)行了印證。
本實(shí)驗(yàn)中大豆分離蛋白,與大豆磷脂、葵花油在均質(zhì)機(jī)作用下制備復(fù)合乳化體系,以乳化活性指數(shù)和乳化穩(wěn)定性為指標(biāo)經(jīng)單因素實(shí)驗(yàn)確定復(fù)合乳化體系制備參數(shù):大豆分離蛋白∶大豆磷脂(w/w)=10∶1,水相∶油相(v/v)=3∶1,大豆分離蛋白含量為10mg/m L,均質(zhì)時(shí)間30s,均質(zhì)速度20000r/m in。乳化活性、乳化穩(wěn)定性、粒徑分析及顯微鏡觀察發(fā)現(xiàn),大豆蛋白-磷脂復(fù)合乳化體系在pH≥7環(huán)境下,乳化體系較穩(wěn)定,這種環(huán)境下的豆制品性能較好,為豆制品生產(chǎn)加工提供理論依據(jù)。
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