潘傳毅
(東北農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)學(xué)院,哈爾濱 150030)
副豬嗜血桿菌病(HPS)是由副豬嗜血桿菌(Hps)引起的一種泛嗜性細(xì)菌性傳染病,1906年由德國(guó)學(xué)者Gllisser發(fā)現(xiàn),故又稱“革拉瑟氏病”[1]。本病以纖維性多漿膜炎、腦膜炎和多關(guān)節(jié)炎為主要特征,并伴有發(fā)熱、咳嗽、呼吸困難、共濟(jì)失調(diào)和被毛粗亂等癥狀。Hps主要侵害仔豬尤其是早期斷奶仔豬,4~8周齡的豬對(duì)Hps也較敏感,本病的發(fā)病率一般為10%~20%,病死率有時(shí)可高達(dá)50%。本病呈世界性分布,據(jù)不完全統(tǒng)計(jì),有38.9%~77.8%的豬攜帶潛在致病菌[2]。我國(guó)也從規(guī)?;B(yǎng)豬場(chǎng)中分離到了該病原菌。Hps感染已經(jīng)成為早期斷奶仔豬和高度健康豬群的威脅,嚴(yán)重的影響了地區(qū)及世界經(jīng)濟(jì)的發(fā)展,本文綜述了HPS的診斷與防治。
Hps是一種極難培養(yǎng)的細(xì)菌,通常很難從患病動(dòng)物的純培養(yǎng)物中分離到該菌,尤其是發(fā)病豬經(jīng)抗生素治療后,該菌的分離更為復(fù)雜。然而,細(xì)菌的分離非常重要,因?yàn)橹挥蟹蛛x到細(xì)菌后才能作進(jìn)一步的檢測(cè)。無(wú)菌采集胸腹腔積水、心包液、心血、關(guān)節(jié)液,分別接種于添加輔酶的副嗜血桿菌培養(yǎng)基平板,于37℃,5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24~48 h,結(jié)果均長(zhǎng)出無(wú)色、透明、濕潤(rùn)、光滑的露珠樣細(xì)小菌落。同時(shí)將該細(xì)菌進(jìn)行革蘭氏染色,結(jié)果呈陰性、小球桿菌,老齡培養(yǎng)物呈多形態(tài)(細(xì)小桿狀、短鏈狀和長(zhǎng)絲狀)。由于存在被其他易生長(zhǎng)細(xì)菌干擾等因素,因此臨床檢驗(yàn)中未分離到細(xì)菌并不代表Hps不存在。Hps在PBS(磷酸鹽緩沖液)中的存活時(shí)間分別為:42℃1 h、37℃2 h、25℃8 h,因此樣品采集后應(yīng)立即培養(yǎng)或低溫運(yùn)送到實(shí)驗(yàn)室。
血清學(xué)方法主要有瓊脂免疫擴(kuò)散試驗(yàn)(AGP)、補(bǔ)體結(jié)合試驗(yàn)(CFT)、間接血凝試驗(yàn)(IHA)以及酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA),血清學(xué)方法具有反應(yīng)靈敏、方便快捷的特點(diǎn),適合于臨床大規(guī)模檢測(cè)。AGP是抗原、抗體在瓊脂凝膠中擴(kuò)散,當(dāng)二者在比例適當(dāng)時(shí)相遇,即發(fā)生沉淀反應(yīng),形成肉眼可見(jiàn)的沉淀帶,目前最常用的是雙向單擴(kuò)散和雙向雙擴(kuò)散。IHA是將可溶性抗原(或抗體)先吸附于一種與免疫無(wú)關(guān)的、一定大小的不溶性顆粒表面,然后與相應(yīng)的抗體(或抗原)作用,在有電解質(zhì)存在的適宜條件下發(fā)生特異性凝集反應(yīng)。魏子貢等將Hps血清4、5型分離菌株經(jīng)超聲波破碎處理后的產(chǎn)物致敏醛化紅細(xì)胞,建立了檢測(cè)Hps抗體的IHA,該法靈敏度高,但特異性差。ELISA是當(dāng)前應(yīng)用最廣、發(fā)展最快的一項(xiàng)新技術(shù)。將抗原(或抗體)吸附于固相載體,在載體上進(jìn)行免疫酶染色反應(yīng),底物顯色后用分光光度計(jì)或肉眼判定結(jié)果[3]。王艷等采用福爾馬林滅活的Hps全菌體作為包被抗原,建立了檢測(cè)Hps抗體的間接ELISA方法,確定Hps全菌體的包被濃度為2.24×107cfu·孔-1、檢測(cè)血清為1:200稀釋,同時(shí)確立了間接ELISA的最佳反應(yīng)條件,結(jié)果表明,該方法有很高的特異性和重復(fù)性,14個(gè)發(fā)病豬場(chǎng)100份血清檢測(cè)結(jié)果Hps抗體陽(yáng)性檢出率為94%[4]。Nedbalcova等用Hps超聲裂解抗原致敏紅血球,建立了Hps抗體間接血凝檢測(cè)方法,具有敏感性高、特異性強(qiáng)、重復(fù)性好等特點(diǎn),可用于疫苗免疫后抗體水平的檢測(cè)及副豬嗜血桿菌的流行病學(xué)調(diào)查[5]。
研究者根據(jù)細(xì)菌染色體上16srRNA基因的高度保守和具有種屬特異性的特點(diǎn),建立了PCR診斷方法,該法具有特異性強(qiáng)、靈敏度高、操作簡(jiǎn)單和省時(shí)等特點(diǎn)。萬(wàn)世平等根據(jù)Hps 16S rRNA基因設(shè)計(jì)了一對(duì)引物,通過(guò)最佳條件摸索擴(kuò)增出大小為821 bp的特異目的基因片段,建立了快速檢測(cè)Hps的PCR方法,該方法最低檢出量達(dá)10-3ng,且對(duì)大腸埃希菌、金黃色葡萄球菌、傳染性胸膜肺炎放線桿菌和巴氏桿菌等均無(wú)交叉反應(yīng)[6]。常規(guī)PCR只能進(jìn)行定性,而不能定量DNA模板的拷貝數(shù)。隨著熒光定量PCR技術(shù)的快速發(fā)展,熒光定量PCR技術(shù)越來(lái)越多地應(yīng)用于疾病的檢測(cè)。熒光實(shí)時(shí)定量PCR技術(shù)就是在PCR反應(yīng)體系中加入熒光基因,利用熒光信號(hào)累計(jì)實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)PCR反應(yīng)過(guò)程,最后通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)位置模板進(jìn)行定量分析的方法。李軍等建立的實(shí)時(shí)熒光PCR方法最低檢測(cè)限是50拷貝·μL-1,重復(fù)性好,變異系數(shù)均<2%,該方法特異性強(qiáng),只能檢測(cè)Hps,不能檢測(cè)到豬鏈球菌2型、金黃色葡萄球菌、大腸桿菌DH5A和豬傷寒沙門氏菌[7]。于江等采用煮沸法從Hps培養(yǎng)物中提取DNA,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,將鑒定正確的目的基因片段克隆入pMD18-T載體中,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5A,經(jīng)PCR及測(cè)序鑒定后得到陽(yáng)性重組質(zhì)粒,作為陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品,結(jié)果表明,該方法對(duì)Hps具有良好的特異性,不與其他豬源細(xì)菌發(fā)生交叉反應(yīng),其敏感性比常規(guī)PCR高100倍,而且非常穩(wěn)定,批間與批內(nèi)重復(fù)試驗(yàn)變異系數(shù)均<2.5%[8]。苗立中等提取Hps基因組,設(shè)計(jì)特異性引物,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,回收目的片段,構(gòu)建陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)模板,建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,建立基于SYBR Green I的快速檢測(cè)Hps的實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法,結(jié)果表明,線性關(guān)系在102~108copies·μL-1檢測(cè)范圍內(nèi)良好;該方法敏感性比常規(guī)PCR高100倍,重復(fù)性試驗(yàn)變異系數(shù)均小于205%,同時(shí)對(duì)Hps具有良好的特異性,建立的Hps SYBR GreenⅠ熒光定量PCR檢測(cè)方法可用于臨床對(duì)Hps的快速診斷和定量檢測(cè)[9]。
由于雜菌滋長(zhǎng)而使Hps分離異常艱難,因此用免疫組化法(IHC)來(lái)診斷Hps感染時(shí),即使Hps已被巨噬細(xì)胞殺滅而遺骸于胞漿中,也可輕易地被檢測(cè)到,但所使用的多克隆抗體與胸膜肺炎放線桿菌有交叉反應(yīng)。曹蕓等利用原核表達(dá)并經(jīng)過(guò)純化的Hps TbpB N端蛋白及人工合成的特異性多肽制備單克隆抗體,經(jīng)碳化二亞胺(EDC)將純化后的單克隆抗體IgG與羧化乳膠共價(jià)偶聯(lián),并對(duì)偶聯(lián)乳膠的IgG含量及偶聯(lián)時(shí)間等條件進(jìn)行合理選擇,建立了快速檢測(cè)Hps的乳膠凝集試驗(yàn)方法,結(jié)果表明,利用該方法檢測(cè)Hps疑似菌株,與16S rRNA-PCR方法的結(jié)果相比,符合率為83.1%,且致敏乳膠不與臨床常見(jiàn)菌株發(fā)生凝集反應(yīng),該方法具有操作簡(jiǎn)便、快速、特異性高的特點(diǎn)[10]。宋鳳香等從山東某繁育豬場(chǎng)送檢的疑似病例中分離到4株革蘭氏陰性細(xì)小桿菌,通過(guò)培養(yǎng)特性試驗(yàn)和生化試驗(yàn)初步診斷為Hps,根據(jù)Hps 16S rRNA序列設(shè)計(jì)引物,進(jìn)行PCR鑒定,結(jié)果表明4株分離菌株為Hps,對(duì)4株分離菌株進(jìn)行小白鼠毒力試驗(yàn)和藥敏試驗(yàn),結(jié)果表明,4株分離菌能致死小白鼠,對(duì)頭孢他啶、頭孢噻呋、氧氟沙星、多西環(huán)素、環(huán)丙沙星敏感,對(duì)土霉素、鏈霉素、林可霉素抵抗[11-13]。
應(yīng)合理配制飼料,保證營(yíng)養(yǎng)充足、平衡供給,特別是蛋白質(zhì)和維生素及礦物質(zhì)的供給。飼喂要做到定時(shí)、定量,提高飼料品質(zhì)。降低飼養(yǎng)密度,加強(qiáng)豬舍通風(fēng)對(duì)流,提高舍內(nèi)空氣質(zhì)量,冬季注意御寒保暖,夏季做好防暑降溫工作,減少斷奶、轉(zhuǎn)群、混群或運(yùn)輸過(guò)程中應(yīng)激對(duì)豬群的傷害。提高豬的抗病能力,減少該病的發(fā)生。
疫苗的使用是預(yù)防Hps造成損失最為有效的方法之一,但是由于該病血清型多,免疫前要弄清該病在主場(chǎng)流行的血清型,選擇相對(duì)應(yīng)血清型的疫苗免疫。有條件的豬場(chǎng)可以采集本豬場(chǎng)的病料做自家苗。種豬用副豬嗜血桿菌多價(jià)滅活苗免疫能有效防止仔豬早期發(fā)病,降低復(fù)發(fā)的可能性。免疫的同時(shí)最好結(jié)合科學(xué)的藥物治療,達(dá)到標(biāo)本兼治的功效。初免母豬產(chǎn)前40 d一免,產(chǎn)前20 d二免。經(jīng)免母豬產(chǎn)前30 d免疫1次即可。受本病嚴(yán)重威脅的豬場(chǎng),仔豬也要進(jìn)行免疫,根據(jù)豬場(chǎng)發(fā)病日齡推斷免疫時(shí)間,仔豬免疫一般安排在7~30日齡內(nèi)進(jìn)行,每次1 mL,最好一免后過(guò)15 d再重復(fù)免疫1次,二免距易發(fā)病日齡要間隔10 d以上。
發(fā)病豬采用頭孢噻呋鈉5 mg·kg-1體重,2%黃芪多糖0.2 mg·kg-1體重,混合肌肉注射;20%氟苯尼考0.05 mg·kg-1體重,中藥制劑(金銀花、黃芩、連翹提取物)0.2 mg·kg-1體重,分別肌肉注射。豬群在日糧中加入阿莫西林400 g·t-1,5%普樂(lè)健1 kg·t-1,金霉素2 kg·t-1,連喂7 d,停3 d,再加喂3 d?;蛉芜x泰妙菌素50~100 mg·kg-1,氟甲砜霉素50~100 mg·kg-1,利高霉素44~1000 mg·kg-1,泰樂(lè)菌素、磺胺二甲嘧啶各100 mg·kg-1,林可霉素200 mg·kg-1,環(huán)丙沙星 150 mg·kg-1等 1~2 種藥物拌料。當(dāng)出現(xiàn)Hps感染時(shí),將豬舍內(nèi)所有病豬隔離,淘汰無(wú)飼養(yǎng)價(jià)值的僵豬或嚴(yán)重病豬;將豬舍沖洗干凈,嚴(yán)格消毒,改善豬舍通風(fēng)條件,疏散豬群,減少密度,嚴(yán)禁混養(yǎng)。
近年來(lái),Hps引起的危害日趨嚴(yán)重,對(duì)于該病的診斷通常依賴于豬群發(fā)病史、臨床癥狀、病理變化和細(xì)菌分離、檢測(cè)等做出診斷。與傳統(tǒng)診斷方法相比,近年來(lái)新引入的各種靈敏度高、專屬性強(qiáng)的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法,使該病的診斷更加客觀和迅速。但是仍有許多問(wèn)題尚未解決,例如許多分離株的血清型還不能分類定型,Hps感染的分子基礎(chǔ)也不十分清楚,在實(shí)踐中PCR和Southern blot方法的應(yīng)用也存在困難,仍需要研究人員進(jìn)一步的研究探討,從而尋找到一種更好的診斷治療方法。
[1] Turni C,Pyke M,Blackall P J.Validation of a real-time PCR for Haemophilus parasuis[J].JAppl Microbiol,2010,108(4):1 323-1 331.
[2] Olvera A,Pina S,Macedo N,et al.Identification of potentiallyviru?lent strains of Haemophilus parasuis using a multiplex PCR for virulence-associated autotransporters(vtaA)[J].Vet J,2012,191(2):313-318.
[3] 魏子貢,蔡旭旺,胡軍勇.副豬嗜血桿菌抗體間接血凝檢測(cè)方法的建立及應(yīng)用[J].中國(guó)獸醫(yī)科學(xué),2006,36(9):713-718.
[4] 王艷,夏萬(wàn)田,柏坤桃,等.副豬嗜血桿菌間接ELISA抗體檢測(cè)方法的建立[J].畜牧與獸醫(yī),2006,38(3):5-7.
[5] Nedbalcova K,Satran P,Jaglic Z,et al.Haemophilus parasuisand glasser's disease in pigs:a review[J].Vet Med,2006(5):168-179.
[6] 萬(wàn)世平,王建,葛菲菲,等.副豬嗜血桿菌PCR檢測(cè)方法的建立與初步應(yīng)用[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2009,30(1):9-12.
[7] 李軍,謝宇舟,禤雄標(biāo),等.副豬嗜血桿菌實(shí)時(shí)熒光PCR快速檢測(cè)方法的建立和應(yīng)用[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,39(6):3 607-3 609,3 629.
[8] 于江,吳家強(qiáng),張玉玉,等.副豬嗜血桿菌熒光定量PCR檢測(cè)技術(shù)的建立與應(yīng)用[J].家畜生態(tài)學(xué)報(bào),2010,31(4):77-81.
[9] 苗立中,沈志強(qiáng),韓文瑜.副豬嗜血桿菌熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2012,33(11):85-89.
[10] 曹蕓,陳品,何啟蓋,等.乳膠凝集試驗(yàn)快速檢測(cè)副豬嗜血桿菌[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2009,30(12):8-13.
[11] 宋鳳香,閆振貴,姜世金.副豬嗜血桿菌的分離鑒定和藥敏試驗(yàn)研究[J].山東畜牧獸醫(yī),2008,29(5):10-12.
[12] 黃美玲,袁遠(yuǎn)華,黃淑堅(jiān).副豬嗜血桿菌分離鑒定和藥敏試驗(yàn)[J].廣東畜牧獸醫(yī),2013,38(1):23-25.
[13] 李俐睿,王印,宋勇,等.副豬嗜血桿菌的分離鑒定和藥敏試驗(yàn)[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2011,132(8):115-118.