李衛(wèi)濤 張煥麗 押輝遠(yuǎn)
摘要:運用LTR-FINDER對葡萄(Vitis vinifera)基因組中的19條染色體LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子進(jìn)行分析。結(jié)果表明,葡萄基因組中19條染色體上共檢索到5 470個LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子,約占葡萄基因組10.7%。LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子分析為進(jìn)一步開展葡萄品種鑒定和遺傳多樣性分析奠定了基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞:葡萄(Vitis vinifera);LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子;基因組
中圖分類號:Q943 文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A 文章編號:0439-8114(2013)08-1953-03
葡萄(Vitis vinifera)屬于葡萄科(Vitaceae)葡萄屬(Vitis),為落葉藤本植物。目前全世界葡萄屬植物有70余種,幾乎占到全世界水果產(chǎn)量的1/4。中國約有38個葡萄品種,其分布之廣、產(chǎn)量之高、種類之多、特性之豐富,為全世界各國少有[1]。葡萄營養(yǎng)價值很高,其重要的用途就是釀制葡萄酒。遺傳多樣性在一定程度上決定了物種分布及數(shù)量多樣性,是生物多樣性研究的核心問題之一。通過對葡萄遺傳多樣性的研究,可以完整地認(rèn)識葡萄的進(jìn)化過程或適應(yīng)機(jī)理,種群的地理分布格局、數(shù)量增長、優(yōu)良品種選育、資源鑒別和利用以及病害檢測和防治等方面問題。
葡萄遺傳多樣性的研究是葡萄資源研究的重要方面。隨著科學(xué)技術(shù)的發(fā)展,葡萄種質(zhì)資源的鑒定和分類研究已經(jīng)從形態(tài)學(xué)[2]、孢粉學(xué)[3]、細(xì)胞學(xué)[4]、酶學(xué)[5]水平發(fā)展到分子生物學(xué)水平上。分子標(biāo)記技術(shù)在植物遺傳多樣性、作物品種純度鑒定、種質(zhì)資源分類、遺傳圖譜構(gòu)建等領(lǐng)域已經(jīng)得到廣泛應(yīng)用[6]。針對葡萄的分子標(biāo)記主要包括基于分子雜交技術(shù)的RFLP標(biāo)記和基于PCR技術(shù)的第一代分子標(biāo)記RAPD,第二代分子標(biāo)記AFLP、SSR以及第三代分子標(biāo)記STS、EST、SNP等[7]。REMAP和IRAP是基于反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子首先開發(fā)出來的兩種分子標(biāo)記方法[8]。REMAP是根據(jù)反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子兩端的LTR保守序列和微衛(wèi)星序列設(shè)計引物來檢測反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子與簡單重復(fù)序列之間的多態(tài)性。IRAP是一種檢測反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子插入位點間多態(tài)性的分子標(biāo)記[9],而LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子在植物中拷貝數(shù)多,且散布于各染色體,非常利于分子標(biāo)記[10]。與常規(guī)分子標(biāo)記如AFLP、SSR、RAPD和ISSR相比,反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子標(biāo)記不是在一個或少數(shù)核苷酸的位置檢測基因組的微小變異,而是檢測基因組中大的變異[11],因而檢測的多態(tài)性信息含量明顯高于AFLP和SSR,特異性及重復(fù)性優(yōu)于RAPD和ISSR,靈敏性強(qiáng)于傳統(tǒng)分子標(biāo)記,尤其適用于遺傳背景高度同源的基因型鑒別[12]。目前反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子標(biāo)記已經(jīng)在柑橘(Citrus reticulata Blanco)、蘋果(Malus domestica)等種質(zhì)鑒定,大麥(Hordeum vulgare)遺傳圖譜構(gòu)建,水稻(Oryza sativa L.)、香蕉(Musa paradisiaca)、棉花(Gossypium spp.)、油橄欖(Olea europea L.)等遺傳多樣性檢測,燕麥(Avena sativa L.)[13]輔助選擇育種以及番茄(Solanum lycopersicum)、辣椒(Capsicum annuum)[14]、煙草(Nicotiana tabacum)[9]等茄科作物遺傳多樣性研究等領(lǐng)域得到應(yīng)用,而基于IRAP和REMAP分子標(biāo)記技術(shù)應(yīng)用于葡萄多態(tài)性的研究報道還比較少見,其主要原因是對葡萄的LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子沒有充分認(rèn)識。
本研究利用LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子分析軟件LTR-FINDER分析了葡萄基因組中LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子,為利用IRAP和REMAP分子標(biāo)記研究葡萄多態(tài)性品種鑒定和遺傳多樣性打下基礎(chǔ)。
1 材料與方法
從NCBI(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/mapview/map_search.cgi?taxid=29760)獲取葡萄基因組序列,根據(jù)LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子基本特征,運用LTR-FINDER(http://tlife.fudan.edu.cn/ltr_finder/)分析葡萄基因組中LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子,完成基因組LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子測序。LTR-FINDER程序參數(shù)按照默認(rèn)值進(jìn)行設(shè)置。
2 結(jié)果與分析
2.1 葡萄基因組LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子的分布特征
通過LTR-FINDER分析,得到LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子在葡萄染色體上的分布情況見表1(堿基長度均不包括其中的gap長度)。由表1可知,葡萄基因組中19條染色體LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子的比例含量最高的染色體是11號染色體(14.6%),比例含量最低的染色體是6和8號染色體(均為6.5%),基因組轉(zhuǎn)座子平均含量為10.7%。LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子頻數(shù)最高的染色體是6號染色體(114 398 bp),頻數(shù)最低的染色體是11號染色體(59 326 bp),19條染色體上平均轉(zhuǎn)座子的頻數(shù)為77 897 bp。LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子數(shù)目最多的染色體是14號染色體(386個),數(shù)目最少的染色體是6號染色體(188個),19條染色體上總的轉(zhuǎn)座子數(shù)目是5 470個。
2.2 葡萄及常見禾本科植物基因組中LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子含量比較
將葡萄基因組LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子含量與其他物種進(jìn)行比較(表2)。由表2可知,葡萄基因組中LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子含量雖然達(dá)到了10.7%,但相對于禾本科植物,其含量仍較低。植物L(fēng)TR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子在基因進(jìn)化中主要通過引起基因突變、基因組重排、改變基因組大小等方式起作用,這些活動可以造成一系列的遺傳學(xué)效應(yīng)。離子束輻射、電離輻射、組織培養(yǎng)可以激活反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子的活性,增強(qiáng)反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子的轉(zhuǎn)座活性[15]。因此,葡萄LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子約占其基因組10.7%,含量相對較低,基因組相對穩(wěn)定,可以通過電離輻射等方式誘導(dǎo)葡萄基因組中LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子轉(zhuǎn)座,引起基因組染色體的不穩(wěn)定性,從而造成表型變化,為作物育種提供新的途徑和物質(zhì)基礎(chǔ)。同時LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子的活動也可能是造成葡萄品種多樣性的遺傳學(xué)基礎(chǔ)。
3 小結(jié)與討論
隨著生物基因組學(xué)和生物信息學(xué)的發(fā)展,正在改變對可轉(zhuǎn)座元件(Transposable element,TE)包括LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子的研究方式。近年來,基因組測序技術(shù)的發(fā)展給LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子研究提供了廣闊的研究方向。如何從海量的序列基因組數(shù)據(jù)中有效而迅速地發(fā)現(xiàn)LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子已經(jīng)成為亟待解決的問題。21世紀(jì)初LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子的發(fā)現(xiàn)和研究一直是試驗方法手工驗證,如印記、原位雜交和聚合酶鏈?zhǔn)綌U(kuò)增等。目前研究者已經(jīng)積累了大量的LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子的知識經(jīng)驗,為構(gòu)建計算機(jī)模型建立了良好的基礎(chǔ)[16,17]。
可轉(zhuǎn)座元件是植物基因組的重要成分甚至是主要成分,它們的活動為植物基因組結(jié)構(gòu)與功能進(jìn)化提供了重要機(jī)制,并參與塑造基因組的組織結(jié)構(gòu)與大小,影響基因的調(diào)控與變異。研究LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子在葡萄基因組中的分布及特征對葡萄的深入研究起到重大作用。據(jù)研究報道,水稻、玉米和小麥中轉(zhuǎn)座子的含量分別為18.0%[16],50.0%~80.0%[17]和90.0%[18],LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子在植物基因組中拷貝數(shù)多,成簇分布。本研究中發(fā)現(xiàn)葡萄基因組中LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子平均含量達(dá)到10.7%,大約每77 897個堿基序列上就有一個LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子,說明葡萄基因組中LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子含量較為豐富。實際上本研究只是針對葡萄基因組上全長LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子進(jìn)行分析,而反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子在進(jìn)化過程中會大片段地缺失從而產(chǎn)生不完整,形成非全長的LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子,如片段LTRs、solo LTRs。因此,葡萄基因組中LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子的成分要高于10.7%。葡萄基因組中有著豐富的LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子,符合IRAP和REMAP分子多態(tài)性技術(shù)研究的基本條件,可以利用基于LTR反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子的分子多態(tài)性技術(shù)研究葡萄的遺傳多態(tài)性,從而對葡萄的遺傳進(jìn)化和遺傳作圖及種質(zhì)資源利用等研究提供更好的分子生物學(xué)方法。
參考文獻(xiàn):
[1] 孔慶山.中國葡萄志[M].北京:中國農(nóng)業(yè)科學(xué)技術(shù)出版社,2004. 16.
[2] 劉崇懷,帖 鋒,潘 興,等. 無核葡萄品種資源性狀的聚類分析[J].果樹學(xué)報,2006,23(4):531-533.
[3] 邵鄰相,范曉萍.幾種蕓香科植物花粉形態(tài)觀察[J].果樹學(xué)報,2003,20(2):146-148.
[4] 陳 俊,郭亞英,李太保.葡萄品種染色體數(shù)目觀察[J]. 山西果樹,1990(1):13-14.
[5] 呂秀蘭,張光倫,龔榮高.22個葡萄品種過氧化物同工酶研究[J]. 四川農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2005,23(2):182-185.
[6] 石運慶,牟秋煥,李 鵬,等. DNA分子標(biāo)記及其在作物遺傳育種中的應(yīng)用[J]. 山東科學(xué),2005,18(2):22-29.
[7] 王 姣,劉崇懷,樊秀彩,等. 葡萄種類和品種鑒定技術(shù)研究進(jìn)展[J].植物遺傳資源學(xué)報,2008,9(3):401-405.
[8] KALENDAR R, GROB T, REGINA M, et al. IRAP and REMAP: Two new retrotransposon based DNA fingerprinting techniques[J]. Theor Appl Genet,1999,98(5):704-711.
[9] 肖炳光,楊本超. 利用IRAP標(biāo)記分析烤煙品種間遺傳差異[J].西北植物學(xué)報,2006,26(6):1119-1124.
[10] 趙海艷,王秋錦,孫清鵬,等. 茄子IRAP分子標(biāo)記體系的建立與優(yōu)化[J].中國農(nóng)學(xué)通報,2008,24(2):75-80.
[11] 沈玉英,高志紅,王 飛,等.梅REMAP分子標(biāo)記技術(shù)體系的優(yōu)化及其應(yīng)用[J].西北植物學(xué)報,2011,31(4):848-855.
[12] TAM S M, MHIRI C,VOGELAAR A, et al. Comparative analyses of genetic diversities with in tomato and pepper collections detected by retrotransposon-based SSAP, AFLP and SSR[J]. Theor Appl Genet,2005,110(5):819-831.
[13] 陳志偉,吳為人. 植物中的反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子及其應(yīng)用[J].遺傳,2004,26(1):122-126.
[14] BI?魪MONT C, VIEIRA C. Genetics: junk DNA as an evolutionary force[J]. Nature, 2006, 443(7111):521-514.
[15] YODER J A, WALSH C P, BESTOR T H. Cytosine methylation and the ecology of intragenomic parasites[J].Trends Genet,1997,13(18):335-340.
[16] FLAVELL R B. Repetitive DNA and chromosome evolution in plants[J]. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci,1986,312 (1154):227-242.
[17] MEYERS B C, TINGEY S V, MORGANTE M. Abundance, distribution and transcriptional activity of repetitive elements in the maize genome[J]. Genome Res, 2001,11(10):1660-1676.
[18] GAO L, MCCARTHY E M, GANKO E W, et al. Evolutionary history of Oryza sativa LTR retrotransposons:a preliminary survey of the rice genome sequences[J]. BMC Genomics, 2004,5(1):18.