朱長強,李治國,劉勇,丁興華,楊樹廣,劉少君
抑郁癥是一種常見的慢性易復(fù)發(fā)精神疾病。目前抑郁癥及其復(fù)發(fā)的真正病因尚未闡明,高復(fù)發(fā)性是抑郁癥治療面臨的巨大難題[1-2]。研究表明,經(jīng)治療恢復(fù)后的患者約50%會在停藥后復(fù)發(fā),而在持續(xù)藥物治療過程中復(fù)發(fā)率亦達20%~37%[3-4]。國內(nèi)外研究證實抑郁癥患者及抑郁模型動物的體內(nèi)存在氧化應(yīng)激,伴有氧自由基代謝異常及抗氧化酶活性改變[5-7]。Stefanescu等[8]在首發(fā)和復(fù)發(fā)抑郁癥患者的血清中均發(fā)現(xiàn)過氧化脂質(zhì)水平升高和谷胱甘肽過氧化物酶(GPX)活性降低。但目前尚未見有關(guān)首發(fā)及再發(fā)抑郁動物模型血清中GPX-3水平變化的報道。
GPX-3是GPX家族成員中已知唯一的細胞外亞型,主要分布在血液。本實驗采用慢性不可預(yù)測輕度應(yīng)激(CUMS)方法建立首發(fā)和復(fù)發(fā)抑郁模型大鼠來模擬人類抑郁癥及其復(fù)發(fā)情況,檢測抑郁模型大鼠血清GPX-3含量變化,為探討抑郁癥發(fā)生及復(fù)發(fā)機制提供參考。
1.1 主要試劑及設(shè)備 氟西汀(Lilly公司,美國),曠野實驗系統(tǒng)(上海吉利公司),蛋白酶抑制劑(Sigma公司,美國),蔗糖(國藥集團化學(xué)試劑有限公司)。
1.2 實驗動物及分組 實驗大鼠由軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院動物中心提供,實驗前適應(yīng)環(huán)境1周,同時進行糖水適應(yīng)訓(xùn)練,即每個鼠籠上放置兩個飲水瓶,分別裝有1%的糖水和普通自來水。1周后,評定行為學(xué)指標,篩選行為學(xué)表現(xiàn)正常的成年健康雄性SD大鼠24只,體重180g~220g,隨機均分為4組(n=6):組1(正常飼養(yǎng)),組2(CUMS),組3(正常飼養(yǎng)+生理鹽水+正常飼養(yǎng)),組4(CUMS+氟西汀+CUMS)。
1.3 慢性輕度應(yīng)激方法 本實驗選用的CUMS方法包括9種刺激:冷水游泳(4℃,5min),熱水游泳(42℃,5min),傾斜鼠籠(傾斜45°,24h),成對飼養(yǎng)(24h),禁食(24h),禁水(24h),足底電擊5min(36V,20s/次,1次/10s),晝夜顛倒(24h),潮濕鼠籠(24h,鼠籠中加入適當水)。9種刺激隨機安排在4周內(nèi)完成,每日只能給予一種刺激,并且為使動物不能預(yù)測刺激的發(fā)生,不連續(xù)進行同種刺激。實驗組單籠飼養(yǎng),對照組成對正常飼養(yǎng)。
1.4 抑郁動物模型的建立 組1和組3大鼠正常飼養(yǎng),組2和組4大鼠給予4周CUMS。4周后對四組大鼠進行行為學(xué)評定。行為學(xué)評定結(jié)束后,組1和組2處死采集血清。組4大鼠給予3周氟西汀[10mg/(kg.d)]治療,組3大鼠給予3周同劑量生理鹽水。一周藥物洗脫后,再次對兩組大鼠進行行為學(xué)評定。組4大鼠再次接觸4周CUMS,組3大鼠正常飼養(yǎng)4周,兩組大鼠再次進行行為學(xué)評定,模型建立流程圖見圖1。
圖1 CUMS誘導(dǎo)的抑郁大鼠模型建立流程圖Fig.1 Flow chart of experimental procedure in rat model of depression induced by CUMS
1.5 行為學(xué)評定
1.5.1 糖水消耗實驗 糖水消耗實驗時,首先禁水23h,然后在鼠籠上同時放置事先稱重的兩瓶水,分別為1%蔗糖水和普通自來水。四組大鼠飲用1h后,撤下兩瓶水并稱重,計算動物對糖水的偏好度:糖水偏好度(%)=糖水消耗量(g)/[糖水消耗量(g)+自來水消耗量(g)]。實驗時間安排在8:00–10:30之間。1.5.2 曠野實驗 曠野敞箱內(nèi)徑長×寬×高為75cm×75cm×40cm,外周帶有視屏錄像和照明的隔音箱。大鼠放置于敞箱中央?yún)^(qū)域,錄像系統(tǒng)能自動記錄大鼠在5min內(nèi)的活動路程﹑活動次數(shù)﹑不動時間﹑中央?yún)^(qū)域活動路程及活動平均速度等數(shù)據(jù)。實驗時間安排在8:00–12:00之間。
1.6 血清樣品的采集及GPX-3含量測定 大鼠經(jīng)1%戊巴比妥鈉(30mg/kg)腹腔注射麻醉,心臟取血,每1ml血液中加入100μl蛋白酶抑制劑。室溫靜置1h后1500×g離心10min。收集血清,采用上海勁馬實驗設(shè)備有限公司的酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)試劑盒測定各組大鼠血清中GPX-3含量。
1.7 統(tǒng)計學(xué)處理 采用Sigma Plot軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析,計量資料以±s表示,組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),進一步兩兩比較采用LSD-t法,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 實驗前各組行為學(xué)評定結(jié)果 基線期,大鼠經(jīng)1周環(huán)境適應(yīng)和糖水適應(yīng)性訓(xùn)練后進行行為學(xué)檢測,結(jié)果顯示4組大鼠糖水偏好度﹑活動路程及不動時間比較差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05,表1)。
表1 各組大鼠糖水偏好度﹑活動能力的比較(±s, n=6)Tab.1 Comparison of sucrose preference and locomotor activity among 4 groups of rats (±s, n=6)
表1 各組大鼠糖水偏好度﹑活動能力的比較(±s, n=6)Tab.1 Comparison of sucrose preference and locomotor activity among 4 groups of rats (±s, n=6)
Group Sucrose preference(%)Immobility time(s)1 80.5±12.7 2691.3±302.9 48.3±12.1 2 76.9±14.5 2639.1±708.4 47.8±9.8 3 74.8±9.1 2375.7±377.3 54.5±12.6 4 73.5±12.8 2895.3±1053.2 49.5±16.7 Distance moved(cm)
2.2 第一次CUMS后大鼠出現(xiàn)抑郁樣行為 4周CUMS后,與對照組(組1﹑組3)比較,實驗組(組2﹑組4)大鼠的糖水偏好度﹑活動能力均顯著下降(P<0.01),表明抑郁樣大鼠模型構(gòu)建成功(表2)。
表2 CUMS后各組大鼠糖水偏好度﹑活動能力的比較(±s, n=6)Tab.2 Comparison of sucrose preference and locomotor activity among 4 groups of rats after CUMS(±s, n=6)
表2 CUMS后各組大鼠糖水偏好度﹑活動能力的比較(±s, n=6)Tab.2 Comparison of sucrose preference and locomotor activity among 4 groups of rats after CUMS(±s, n=6)
(1)P<0.01 compared with group 1; (2)P<0.01 compared with group 3
Group Sucrose preference(%)Distance moved (cm)Immobility time (s)1 75.2±13.7 1721.8±260.1 89.1±32.9 2 18.3±13.1(1) 331.7±140.2(1) 240.4±43.9(1)3 74.6±12.4 1815.8±153.4 79.9±27.5 4 35.5±10.6(2) 195.2±289.9(2) 254.9±51.5(2)
2.3 治療后大鼠抑郁樣行為恢復(fù)正常 組4(實驗組)抑郁樣大鼠經(jīng)21d氟西汀治療和7d藥物洗脫后,糖水偏好度(83.1%±3.67%)﹑活動路程(1807.4±626.2cm)及不動時間(90.4±34.3s)與組3(對照組)大鼠的糖水偏好度(78.2%±18.0%)﹑活動路程(1941.3±938.3cm)及不動時間(83.4±37.7s)相比無明顯差異(P>0.05)。
2.4 再次CUMS誘導(dǎo)抑郁樣行為的復(fù)發(fā) 藥物治療后的組4(實驗組)大鼠二次接觸4周CUMS后,行為再次發(fā)生明顯變化,其糖水偏好度(41.3%±9.9%)﹑活動路程(1021.9±225.0cm)及不動時間(137.5±18.3s)與組3(對照組)大鼠(分別為77.7%±6.0%﹑1661.4±410.8cm﹑90.4±41.3)比較差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01或P<0.05)。再次接觸CUMS刺激使大鼠的糖水偏好度﹑活動路程均明顯減少,不動時間增加,出現(xiàn)抑郁癥復(fù)發(fā)的癥狀。
2.5 首發(fā)和復(fù)發(fā)抑郁樣大鼠血清GPX-3濃度測定結(jié)果 首次CUMS后組2(抑郁樣組)大鼠血清GPX-3水平(20.5±2.5pmol/ml)明顯高于組1(對照組)GPX-3水平(14.1±2.2pmol/ml),再次CUMS后組4(抑郁樣組)大鼠血清GPX-3水平(33.2±3.2pmol/ml)也顯著高于組3(對照組)大鼠(21.5±2.5pmol/ml),差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。
CUMS抑郁動物模型是被廣泛認可的一種模型,具有很好的表面效應(yīng)(癥狀表現(xiàn))﹑預(yù)測效應(yīng)(藥理學(xué)特征)及結(jié)構(gòu)效應(yīng)(理論基礎(chǔ))[9-10]。Katz等[11]首次對動物展開慢性應(yīng)激研究,隨后Willner等[12]在Katz研究的基礎(chǔ)上加以改進,選用比較溫和的應(yīng)激刺激,形成了目前廣泛使用的CUMS抑郁動物模型,并以快感/興趣缺失(1%蔗糖水消耗量比例)作為衡量建模是否成功的關(guān)鍵。本實驗采用CUMS刺激方法建立首發(fā)和復(fù)發(fā)CUMS抑郁大鼠模型,模擬抑郁癥的發(fā)作及其復(fù)發(fā),并使用糖水消耗實驗和曠野實驗[13]進行抑郁模型動物的行為學(xué)評價。在糖水消耗實驗中,與對照組相比,首次和再次CUMS處理的大鼠糖水偏好度均顯著下降(P<0.01),表明首次和再次CUMS刺激后的大鼠均表現(xiàn)出興趣缺失,提示其出現(xiàn)抑郁樣癥狀。同時在實驗中發(fā)現(xiàn)首次CUMS誘導(dǎo)的抑郁大鼠經(jīng)3周氟西汀治療后,糖水偏好度恢復(fù)到對照組水平,該結(jié)果與國內(nèi)外文獻報道一致,即氟西汀治療可以使抑郁模型大鼠的興趣缺失逆轉(zhuǎn)[14-16]。在曠野實驗中,首次CUMS刺激后,實驗大鼠活動能力明顯降低(P<0.01);藥物治療后,實驗大鼠的活動路程和不動時間與對照組相比無明顯差異;再次接觸4周CUMS后,實驗大鼠總活動路程減少,不動時間增多(P<0.05)。綜上可知,行為學(xué)測試結(jié)果表明CUMS可誘導(dǎo)大鼠產(chǎn)生與抑郁癥患者的興趣缺失﹑精神活動遲滯類似的癥狀,提示首發(fā)和復(fù)發(fā)CUMS抑郁動物模型構(gòu)建成功,可用于下一步實驗研究。
GPX-3是已知GPX家族成員中唯一的細胞外亞型,是體內(nèi)重要的抗氧化酶之一[17]。它能消除機體內(nèi)的過氧化氫和脂質(zhì)過氧化物,阻斷活性氧自由基對機體的損害,是生物體內(nèi)重要的活性氧自由基清除劑。研究發(fā)現(xiàn),多種因素可導(dǎo)致GPX-3表達變化并參與了多種疾病的發(fā)生發(fā)展機制,如在膀胱癌﹑乳腺癌﹑胃癌及前列腺癌中均檢測到GPX-3表達下調(diào)[18]。但目前抑郁癥患者及抑郁動物模型血清中GPX-3蛋白含量變化仍未見報道。本研究采用酶聯(lián)免疫吸附實驗(ELISA)檢測了抑郁模型大鼠血清GPX-3蛋白水平的變化,發(fā)現(xiàn)首發(fā)和復(fù)發(fā)CUMS抑郁大鼠血清GPX-3蛋白水平顯著升高(P<0.01)。已有研究顯示炎癥性腸道疾病患者血漿﹑結(jié)腸炎模型小鼠血漿及糖尿病模型大鼠心臟中存在氧化應(yīng)激,并且增多的氧自由基引起GPX-3表達水平升高[19-21]。此外,研究證明CUMS導(dǎo)致大鼠腦內(nèi)氧化應(yīng)激水平升高,即氧自由基顯著增多,并且增多的自由基進一步產(chǎn)生脂質(zhì)過氧化[7]。Eren等[6]在慢性輕度應(yīng)激抑郁模型大鼠腦皮質(zhì)和血漿中均檢測到脂質(zhì)過氧化水平顯著升高。Jindal等[22]在CUMS抑郁模型小鼠腦中也檢測到脂質(zhì)過氧化水平顯著升高。根據(jù)本研究結(jié)果和既往報道,推測首發(fā)和復(fù)發(fā)CUMS抑郁大鼠血清中升高的GPX-3可能在降低抑郁樣大鼠體內(nèi)氧化應(yīng)激水平方面發(fā)揮作用,從而對大鼠機體起到一定保護作用。
綜上所述,本研究顯示CUMS可誘導(dǎo)大鼠抑郁樣行為,并且經(jīng)氟西汀治療恢復(fù)后再次接觸慢性應(yīng)激能再次產(chǎn)生抑郁樣癥狀,表明首發(fā)和復(fù)發(fā)抑郁樣動物模型造模成功。大鼠血清中升高的GPX-3可能在降低抑郁樣大鼠體內(nèi)氧化應(yīng)激水平方面發(fā)揮作用,從而減輕活性氧自由基對大鼠機體的損害,對大鼠機體起到一定的保護作用。GPX-3和氧化應(yīng)激之間的具體關(guān)系以及它們在首發(fā)和復(fù)發(fā)抑郁癥中的病理生理作用仍需進一步研究。
[1] Liang SY, Li XP. Assessment of scales on coronary heart disease complicated with depression and anxiety disorder[J]. Chin J Pract Intern Med, 2011, 31(2): 135-138.[ 梁思宇, 李向平. 冠心病合并抑郁焦慮障礙常用量表評價[J]. 中國實用內(nèi)科雜志, 2011, 31(2): 135-138.]
[2] Du QY, Yang CB. Progress on the pathogenesis of depression post-stroke[J]. Acta Acad Med CPAF, 2010, 19(2):166-168.[杜其勇, 楊朝斌. 卒中后抑郁發(fā)病機制研究進展[J]. 武警醫(yī)學(xué)院學(xué)報, 2010, 19(2):166-168.]
[3] Grown WH, Finkelstein S, Berndt ER, et al. The impact of treatment-resistant depression on health care utilization and costs[J]. Clin Psychiat, 2002, 6(11): 963-971.
[4] Zhou JM, Yu EY, Ren AH, et al. Relationship between depression and the factors related to senile patients with hypertension[J].Med J Chin PLA, 2011, 36(4): 395-396.[周建妹, 于恩彥, 任愛華, 等. 抑郁與高齡高血壓相關(guān)因素的關(guān)系研究[J]. 解放軍醫(yī)學(xué)雜志, 2011, 36(4): 395-396.]
[5] Sarandol A, Sarandol E, Eker SS, et al. Major depressive disorder is accompanied with oxidative stress: short-term antidepressant treatment does not alter oxidative-antioxidative systems[J].Hum Psychopharmacol, 2007, 22 (2): 67-73.
[6] Eren I, Naziro?lu M, Demirda? A, et al. Protective effects of lamotrigine, aripiprazole and escitalopram on depressioninduced oxidative stress in rat brain[J]. Neurochem Res, 2007,32(7): 1188-1195.
[7] Lucca G, Comim CM, Valvassori SS, et al. Effects of chronic mild stress on the oxidative parameters in the rat brain[J].Neurochem Int, 2009, 54(5/6): 358-362.
[8] Stefanescu C, Ciobica A. The relevance of oxidative stress status in first episode and recurrent depression[J]. J Affect Disord,2012, 143(1/2/3): 34-38.
[9] Henn FA, Vollmayr B. Stress models of depression: forming genetically vulnerable strains[J]. Neurosci Biobehav Rev, 2005,29 (4/5): 799-804.
[10] Li ZC, Li DQ. Effects of Wuling capsule on learning and memory disorder induced by post-stroke depression in rats[J]. Med J Chin PLA, 2011, 36(6): 629-632. [李中春, 李德強. 烏靈膠囊對卒中后抑郁大鼠學(xué)習(xí)記憶障礙的影響[J]. 解放軍醫(yī)學(xué)雜志, 2011, 36(6): 629-632.]
[11] Katz RJ, Roth KA, Carroll BJ, et al. Acute and chronic stress effects on open field activity in the rat: Implications for a model of depression[J]. Neurosci Biobehav Rev, 1981, 5(2): 247-251.
[12] Willner P, Towell A, Sampson D, et al. Reduction of sucrose preference by chronic unpredictable mild stress, and its restoration by a tricyclic antidepressant[J]. Psychopharmacology(Berl), 1987, 93(3): 358-364.
[13] Jiang L, Ran H, Duan W, et al. Regulatory effects of adenosine A2A receptors on psychomotor ability and mood behavior of mice[J]. Med J Chin PLA, 2011, 36(7): 706-710.[姜莉, 冉鴻,段煒, 等. 腺苷A2A受體對小鼠精神運動和情緒行為的調(diào)控作用[J]. 解放軍醫(yī)學(xué)雜志, 2011, 36(7): 706-710.]
[14] Duman RS, Malberg J, Thome J, et al. Neural plasticity to stress and antidepressant treatment[J]. Biol Psychiatry, 1999, 46(9):1181-1191.
[15] Grippo AJ, Beltz TG, Weiss RM, et al. The effects of chronic fluoxetine treatment on chronic mild stress-induced cardiovascular changes and anhedonic[J]. Biol Psychiatry, 2006,59(4): 309-316.
[16] Yang C, Wang G, Wang H, et al. Cytoskeletal alterations in rat hippocampus following chronic unpredictable mild stress and re-exposure to acute and chronic unpredictable mild stress[J].Behav Brain Res, 2009, 205(2): 518-524.
[17] Takahashi K, Avissar N, Whitin J, et al. Purification and charaterization of human plasma glutathione peroxidase: A selenoglycoprotien distinct from the known cellurar enzyme[J].Arch Biochem Biophys, 1987, 256(2): 677- 686.
[18] Zhang X, Yang JJ, Kim YS, et al. An 8-gene signature, including methylated and down-regulated glutathione peroxidase-3, of gastric cancer[J]. Int J Oncol, 2010, 36(2): 405-414.
[19] Tham DM, Whitin JC, Cohen HJ. Increased expression of extracellular glutathione peroxidase in mice with dextran sodium sulfate-induced experimental colitis[J]. Pediatr Res, 2002,51(5): 641-646.
[20] Hoffenberg EJ, Deutsch J, Smith S, et al. Circulating antioxidant concentrations in children with inflammatory bowel disease[J].Am J Clin Nutr, 1997, 65(5): 1482-1488.
[21] Iwata K, Nishinaka T, Matsuno K, et al. Increased gene expression of glutathione peroxidase-3 in diabetic mouse heart[J]. Biol Pharm Bull, 2006, 29(5): 1042-1045.
[22] Jindal A, Mahesh R, Bhatt S. Etazolate, a phosphodiesterase 4 inhibitor reverses chronic unpredictable mild stress-induced depression-like behavior and brain oxidative damage[J].Pharmacol Biochem Behav, 2013, 105: 63-70.