黃 蓓
(河南省化工研究所有限責(zé)任公司,河南鄭州 450052)
多肽是普遍存在于生物體內(nèi)由氨基酸組成的化學(xué)物質(zhì),迄今在生物體內(nèi)發(fā)現(xiàn)的多肽已達(dá)數(shù)萬種,由于其具有廣泛的生物活性及良好的安全性,因此已日益受到藥物研發(fā)工作者的重視。尤其在20世紀(jì)90年代以后,隨著多肽合成技術(shù)的日臻成熟,越來越多的活性多肽已被開發(fā)并廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、食品、化妝品、農(nóng)業(yè)及畜牧業(yè)等領(lǐng)域[1]。
由于活性多肽類物質(zhì)的重要性,合成這些活性物質(zhì)就成了生物化學(xué)家研究的重點(diǎn)和熱點(diǎn)之一。而多肽的合成主要是指化學(xué)合成法,其中液相合成和固相合成是最主要的合成方法。液相合成多肽主要有逐步合成和分段合成兩種途徑。液相法在多肽的工業(yè)化生產(chǎn)方面有非常重要的應(yīng)用。固相合成法在20世紀(jì)60年代被提出,與經(jīng)典的液相合成多肽方法相比,由于固相合成大大簡化了后處理操作步驟,可以得到較高的收率和產(chǎn)物純度,易于實現(xiàn)自動化等優(yōu)點(diǎn),近幾十年來在合成活性多肽類物質(zhì)方面得到了極大的發(fā)展與應(yīng)用。
1963年Merrifield提出固相多肽合成方法(SPPS,Solid Phase Peptide Synthesis),為多肽研究開辟了廣闊的天地,并極大地推動了分子生物學(xué)等領(lǐng)域的發(fā)展,為此1984年Merrifield被授予了諾貝爾化學(xué)獎[2]。
多肽合成是一個重復(fù)添加氨基酸的過程,合成一般從C端(羧基端)向N端(氨基端)合成。首先將目的肽第一個氨基酸的羧基以共價鍵的形式與固相載體相連,再以這一氨基酸的氨基為合成起點(diǎn),經(jīng)過脫去氨基保護(hù)基并同過量的活化的第二個氨基酸反應(yīng),接長肽鏈。重復(fù)(縮合→洗滌→去保護(hù)→中和及洗滌→下一輪縮合)操作,達(dá)到所要合成的肽鏈長度,最后將肽鏈從樹脂上裂解下來,經(jīng)過純化等處理,即得所要的多肽。
目前固相合成多肽主要有兩種方法:一是叔丁氧碳基合成法(Boc合成法);二是9-甲氧羥基合成法(Fmoc合成法)。
圖1 多肽固相合成的基本原理
2.2.1 Boc 合成法
采用三氟乙酸(TFA)可脫除的Boc為α-氨基保護(hù)基,側(cè)鏈保護(hù)采用芐醇類。合成時將一個Boc保護(hù)的α-氨基酸共價交聯(lián)到樹脂上,用TFA脫除Boc,三乙胺中和游離的氨基末端,然后通過DCC活化、偶聯(lián)下一個氨基酸,最終采用強(qiáng)酸HF法或三氟甲磺酸(TFMSA)將合成的目標(biāo)多肽從樹脂上解離。在Boc合成法中,由于要反復(fù)地用酸來脫保護(hù)以便進(jìn)行下一步的偶聯(lián),這就引入了一些副反應(yīng),如多肽容易從樹脂上切除下來,氨基酸側(cè)鏈在酸性條件不穩(wěn)定并發(fā)生副反應(yīng)。
2.2.2 Fmoc 合成法
1978年,Meienlofer和 Atherton等人發(fā)展了以Fmoc(9-芴甲氧羰基)基團(tuán)作為α-氨基保護(hù)基的多肽合成方法—Fmoc法。在Fmoc法中,采用了可被堿脫除的Fmoc作為α-氨基酸的保護(hù)基,側(cè)鏈采用酸脫除的Boc保護(hù)方法。Fmoc作為氨基保護(hù)基的優(yōu)點(diǎn)在于它對酸穩(wěn)定,用TFA等試劑處理不受影響,僅需用溫和的堿處理,側(cè)鏈用對堿穩(wěn)定的Boc進(jìn)行保護(hù)等[3]。肽段最后用TFA/二氧甲烷(DCM)定量地從樹脂上切除,避免了采用強(qiáng)酸[4]。Fmoc法與Boc法相比,由于Fmoc法反應(yīng)條件溫和,副反應(yīng)少,產(chǎn)率高,而被廣泛應(yīng)用于多肽合成中。
2.3.1 聚合物載體
將固相合成與其他多肽合成技術(shù)分開來的最主要的特征是固相載體[5],而能被用作多肽固相載體的聚合物必須滿足以下條件:①必須包含合適的連接分子(或反應(yīng)基團(tuán)),使肽鏈能連接在載體上面,并在以后除去。②必須在合成過程中保持穩(wěn)定并且不與氨基酸分子反應(yīng)。③必須提供足夠的連接點(diǎn),以滿足肽鏈的不斷增長的需要。目前用于固相合成的聚合物載體主要有三類:聚苯乙烯-苯二乙烯交聯(lián)樹脂、聚丙烯酰胺、聚乙烯—乙二醇類樹脂及衍生物。這些聚合物載體只有引入相應(yīng)的連接分子,才能與氨基酸進(jìn)行連接。根據(jù)連接分子的不同,樹脂又被分為幾種類型:氯甲基樹脂、羧基樹脂、氨基樹脂或酰肼型樹脂。
2.3.2 連接分子
一個理想的連接分子必須在整個合成過程中十分穩(wěn)定,并在合成后可以定量的切割下來而又不破壞合成的目標(biāo)分子[6],同時連接分子還需要根據(jù)與樹脂相連的肽的C端的結(jié)構(gòu)類型,裂解后生成的羧酸、酰胺或氨基醇等衍生物來選擇[7]。固相多肽合成使用過的連接分子為含有氯甲基、巰甲基、酰氯基、對苯甲?;⒎蓟酋B然?、烯丙醇基、丁二?;?、鄰硝基芐醇基及二苯氯硅烷等的雙官能團(tuán)化合物。
固相中肽鍵的形成原理與液相中的基本一致,應(yīng)用的方法主要有縮合劑法、混合酸酐法、酰氯法、活化酯法和原位法等,其中選用 DCC、HOBT或HOBT/DCC的對稱酸酐法、活化酯法由于在肽鍵的形成過程中可以減少副反應(yīng)并抑制消旋的發(fā)生,最終得到的多肽收率高等優(yōu)點(diǎn)而應(yīng)用最廣[8]。
近幾十年,隨著多肽合成研究的逐步深入,越來越多的肽鍵縮合劑被設(shè)計出來[9-11](如見圖2所示)。DCC、DIC等碳二亞胺類縮合劑,正被更高效的HBTU、BOP、HATU這類脲陽離子和磷正離子的HOBt或HOAt縮合體系取代[12]。這類縮合劑的優(yōu)點(diǎn)在于克服了DCC在反應(yīng)過程中產(chǎn)生沉淀的缺點(diǎn),而且縮合效率明顯提高,副反應(yīng)少,出現(xiàn)的副產(chǎn)物也容易被洗滌出接肽反應(yīng)體系,且合成目的肽的光學(xué)純度高。特別是隨著Fmoc多肽合成法的發(fā)現(xiàn)及發(fā)展,其縮合劑多采用 TBTU 、HOBt 、DIEA[13-14],這種縮合劑體系明顯縮短了接肽反應(yīng)時間,減少了副反應(yīng),抑制了消旋現(xiàn)象的發(fā)生。這些新型的縮合劑及其體系正被應(yīng)用到更多的合成多肽的反應(yīng)當(dāng)中。
圖2 常見縮合劑
按既定的順序合成完多肽后,就要把目標(biāo)多肽從樹脂上切割下來,并進(jìn)行進(jìn)一步的純化。由于多肽的合成有Boc法和Fmoc法兩種,因此,它們的切割方法也不完全一樣。在Boc法中,主要用TFA+HF裂解和脫側(cè)鏈保護(hù)。在Fmoc法中直接用TFA進(jìn)行切割。以Fmoc法的切割為例,首先將反應(yīng)的樹脂用二氯甲烷洗滌幾遍后,真空抽干。往裝有樹脂的多肽固相反應(yīng)器中緩慢加入:三氟乙酸/三異丙基硅烷/ 水(TFA/TIS/H2O)=95/2.5/2.5(體積比)溶液,反應(yīng)3 h,過濾,氮?dú)獯等ゴ蟛糠值娜軇┖?,向殘液中倒入預(yù)先冷凍的無水乙醚,離心,倒去上層溶劑乙醚,向沉淀中再次加入無水乙醚,振蕩,離心,再重復(fù)一次,除去大部分的雜質(zhì)。將得到的沉淀真空干燥24 h。固體殘留物用離子水溶解,冷凍干燥得到白色絮狀固體,-20℃保存。
合成肽鏈進(jìn)一步的精制、分離與純化通常采用高效液相色譜、親和層析、毛細(xì)管電泳等[15]。目前應(yīng)用最多的是高效液相色譜法,其具體的步驟:將凍干的粗品多肽,溶于20%乙腈/水溶液,用含有0.6%TFA的乙腈/水溶液進(jìn)行梯度洗脫,收集主要峰產(chǎn)物,減壓旋蒸除去乙腈,在冷凍干燥機(jī)上冷凍干燥,將目標(biāo)多肽產(chǎn)品放在-20℃保存。
由于多肽類藥物在治療某些疾病方面具有獨(dú)特的療效,因此,近幾十年來已經(jīng)引起越來越多的生物化學(xué)家和醫(yī)學(xué)家的關(guān)注。隨著多肽固相合成的提出和發(fā)展,人們可以相對簡單地用設(shè)計合成的多肽分子來進(jìn)行生物活性的研究等工作。但是,目前人們還只能合成一些相對較短的肽鏈,而對于相對分子質(zhì)量較大、肽鏈較長的蛋白質(zhì)類物質(zhì),固相合成技術(shù)還有很大的局限性,同時在合成中要用到大量的有毒試劑,合成費(fèi)用昂貴,并伴隨副反應(yīng)、消旋化等問題,這些都是不可忽視的問題。因此,尋找更加綠色、環(huán)保的多肽合成技術(shù),對科學(xué)家來說也是一個重大的挑戰(zhàn)。
[1]厲保秋.多肽藥物研究與開發(fā)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,2011.
[2]Merrifield R B.Solid phase peptide synthesisⅠ.The synthesis of a tetrapeptide[J].J Am Chem Soc,1963,85,2149-2154.
[3]Stigers K D,Koutroulis M R,Chung D M,et al.Fmoc:a more soluble analogue of the 9-fluorenylmethoxycarbonyl protecting group[J].J Org Chem,2000,65:3858.
[4]Barlos K,Gatos D.9-Fluorenylmethyoxycarbonyl/tbutyl-based corvergent protein synthesis[J].Biopolymer,1999,51:266.
[5]韓 香,顧 軍.多肽的固相合成[J].天津藥學(xué),2002,14(7):9.
[6]Nakahara Y,Ando S,Ho Y,et al.New allyl ester linker and solid phase block synthesis of the serglycin core region[J].Biosci Biotechnol Biochem,2001,65:1358
[7]Wade W S,Yan g F,Sow in T J.Application of base cleavable safety catch linkers to solid phase library production[J].J Comb Chem,2000(2):266.
[8]Dolence E K,Dolence J M,Poulter C D.Solid-phase synthesis of a far nesylated CaaX peptide library:inhibitors of the Ras CaaX endoprotease[J].J Comb Chem,2000(2):522.
[9]Albericio F,Chinchilla R,Dodsworth D J,et al.New trends in peptide coupling reagents[J].Organic Preparation and Procedures International,2001,33:205-303.
[10]Humphrey J M,Chamberlin A R.Chemical synthesis of natural product peptides:coupling methods for the incorporation of noncoded amino acids into peptides[J].Chemical Reviews,1997,97:2243-2266.
[11]LI P,XU J C.BOMI-a novel peptide coupling reagent[J].Tetrahedron Lett,1999,40:3605-3608.
[12]LI P,XU J C.HOBt and HOAt-derived immonium salts:new and highly efficient coupling reagents for peptide synthesis[J].Tetrahedron Lett,2000,41:721-724.
[13]高晨昊.胸腺素α1Fmoc固相合成及純化小試工藝研究[D].天津:天津大學(xué),2000.
[14]趙 炯.扶素康的固相合成及純化[D].天津:天津大學(xué),2005.
[15]Alsina J.Active carbonate resins:application to the solid-phase synthesis of alcohol,carbamate and cyclic peptides[J].Tetrahedron,1998,54:10125.