張璦琿,紀(jì)曉俊,聶志奎,任路靜,黃 和
(南京工業(yè)大學(xué)生物與制藥工程學(xué)院,材料化學(xué)工程國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 南京 210009)
多不飽和脂肪酸因?yàn)槠湓谏矬w內(nèi)發(fā)揮的重要功能,得到了人們?cè)絹?lái)越多的關(guān)注,并廣泛的應(yīng)用于醫(yī)藥保健和食品添加劑等方面[1]?;ㄉ南┧幔╝rachidonic acid,ARA)屬于ω-6系列不飽和脂肪酸,系統(tǒng)命名為全順Δ-5,8,11,14-二十碳四烯酸,是一種具有20個(gè)碳原子和4個(gè)雙鍵的長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸(圖1)[2]。ARA是人體內(nèi)生物膜非常重要的組成部分,并且是大量的二十碳酸如前列腺素、前列環(huán)素、血栓烷、白三烯等合成的前體物質(zhì)[3]。ARA作為母乳的組成部分,在神經(jīng)生理學(xué)和神經(jīng)病學(xué)上,對(duì)嬰兒的成長(zhǎng)是必須的,聯(lián)合國(guó)糧農(nóng)組織/世界衛(wèi)生組織聯(lián)合推薦,ARA的油脂形式應(yīng)該作為嬰兒食品配方的補(bǔ)充[4]。
圖1 花生四烯酸結(jié)構(gòu)式
因?yàn)橹参锛?xì)胞中不含有ARA油脂,傳統(tǒng)ARA油脂主要來(lái)源于蛋黃和動(dòng)物肝臟等組織,這些動(dòng)物組織中 ARA油脂含量很低,而且提取工藝復(fù)雜,因此這種來(lái)源的ARA油脂無(wú)法滿足市場(chǎng)的需求[5]。相比較而言,微生物是一種潛在的非常有前景的油脂來(lái)源,它們體內(nèi)含有大量不同的具有重要生物功能的油脂混合物,而且它們?cè)趩我慌囵B(yǎng)基上有極高的生長(zhǎng)速率,用微生物發(fā)酵生產(chǎn)油脂具有操作簡(jiǎn)單、生產(chǎn)周期短、成本較低等優(yōu)點(diǎn)[6]。人們發(fā)現(xiàn)一種絲狀真菌高山被孢霉(Mortierella alpina)能夠在其胞內(nèi)積累ARA占總脂肪酸含量高達(dá)50%的ARA油脂,這其中ARA主要以甘油三酯的形式存在[7]。因而M. alpina成為ARA油脂最合適的來(lái)源之一。
然而M. alpina在培養(yǎng)過(guò)程中,不同的培養(yǎng)條件下會(huì)呈現(xiàn)出多種多樣的形態(tài)[8]。在PDA固體培養(yǎng)基上,主要呈現(xiàn)玫瑰花瓣?duì)?、圓形、炸面圈狀等;在顯微鏡下主要形態(tài)為分支較少的長(zhǎng)菌絲、分支很多的短菌絲;在搖瓶培養(yǎng)中,M. alpina絲狀真菌菌體通常出現(xiàn)實(shí)心泥漿狀小球,中空小球狀菌絲束等形態(tài),如圖2所示[9]。培養(yǎng)基中的氮源、消耗的碳氮比、氨基酸、溶氧、無(wú)機(jī)鹽等都會(huì)影響M. alpina的形態(tài)特征,進(jìn)而進(jìn)一步影響 ARA油脂的產(chǎn)量。本文針對(duì)前人對(duì)以上影響因素的研究進(jìn)行總結(jié),探討外部培養(yǎng)條件對(duì)M. alpina形態(tài)的影響,以此進(jìn)一步建立發(fā)酵過(guò)程中良好形態(tài)的控制策略,從而為利用M. alpina高產(chǎn)ARA油脂提供指導(dǎo)。
圖2 M. alpina菌絲體的各種形態(tài)[9]
微觀形態(tài)是宏觀形態(tài)的基本組成部分,主要包括菌絲生長(zhǎng)速率、尖端形成速率、分支的尖端延伸速率等。M. alpina孢子萌發(fā)后,細(xì)胞經(jīng)過(guò)不斷的生長(zhǎng)和分裂,短菌絲不斷伸長(zhǎng),在某一點(diǎn)分支,形成分支尖端,分支尖端不斷延伸、再分支,最后形成成熟的絲狀真菌。用μ1和μtip分別表示比菌絲生長(zhǎng)速率和比尖端形成速率,n和l表示總的菌絲長(zhǎng)度和總的菌絲數(shù)量,qtip表示分支尖端延伸速率,qb表示分支尖端形成速率,則μ1、μtip、qtip、qb符合如式(1)~式(4)的動(dòng)力學(xué)方程[10]。
培養(yǎng)基中碳氮比對(duì)μ1和μtip的影響很小,μ1、μtip隨著碳源和氮源濃度增加而減小,培養(yǎng)基中高濃度營(yíng)養(yǎng)抑制了菌絲生長(zhǎng)和尖端形成。在碳源濃度較低時(shí),μ1(碳源<10 g/L)、μtip(碳源<5 g/L)、qtip(碳源<10 g/L)不受碳源濃度影響。當(dāng)碳源濃度過(guò)高時(shí),三者紛紛降低,高濃度的碳源會(huì)抑制菌絲的生長(zhǎng)、分支尖端的形成以及分支菌絲延伸,在碳源沒(méi)有耗盡時(shí),分支形成的數(shù)量與菌絲長(zhǎng)度成一定比例。Park等[10]進(jìn)一步研究表明μ1、μtip、qtip之間存在如式(5)、式(6)關(guān)系。
qtip、qb是兩個(gè)重要的形態(tài)學(xué)參數(shù),在真菌形態(tài)學(xué)方面扮演了很重要的角色。由式(5)可知qtip與μ1呈指數(shù)關(guān)系,菌絲生長(zhǎng)速率越快,分支的尖端延伸速率呈指數(shù)上升;由式(6)可知μ1與μtip呈線性關(guān)系。菌絲生長(zhǎng)速率越高,形成的尖端越多。a、b、 1k、 2k為實(shí)驗(yàn)常數(shù),分別為3.30 μm/(tip·h)、3.41 h、0.08 h–1和1.55,將式(5)帶入式(6),則qtip表達(dá)如式(7)。
其中α、β為實(shí)驗(yàn)常量,數(shù)值為別為 4.34 μm/(tip·h)和5.29 h,在不同碳氮比下存在如下趨勢(shì):qtip在 60 μm/(tip·h)以內(nèi),qb保持固定不變?yōu)?6.8×10–3tip/(μm·h),然而,當(dāng)qtip高于 60 μm/(tip·h),qb呈對(duì)數(shù)減少,表明在臨界值處時(shí),細(xì)胞內(nèi)發(fā)生了未知的代謝變化[10]。qb同時(shí)也受到μ1的影響,當(dāng)μ1低于0.83 h–1,qb保持不變;然而,μ1在 0.6~0.8 h–1時(shí),μ1對(duì)qb的影響較大;在碳源濃度低于1 g/L時(shí),μ1幾乎保持穩(wěn)定,但是qb不穩(wěn)定,這表明在μ1較低時(shí),qb是恒定的,但是在μ1較高時(shí),相對(duì)于分支形成來(lái)說(shuō),M. alpina菌絲的生長(zhǎng)占據(jù)優(yōu)先地位[10]。
在深層培養(yǎng)中,M. alpina孢子萌發(fā)后,細(xì)胞不斷生長(zhǎng)分裂成為絲狀,菌絲之間聚集并相互纏繞,隨著不斷培養(yǎng),形成小的顆粒狀,之后顆粒不斷增大,形成表面粗糙的小球狀,在搖瓶中,一直以小球的形態(tài)存在,但在存在較大剪切力的發(fā)酵罐中,小球表面多毛的菌絲在培養(yǎng)過(guò)程中被不斷地剪切下來(lái),形成自由菌絲片段和光滑的小球,也有部分小球破裂,之后形成的自由菌絲又不斷地伸長(zhǎng),聚集纏繞重新形成表面粗糙的小球狀,如此循環(huán),自由菌絲片段和小球狀形態(tài)數(shù)量維系在一個(gè)平衡狀態(tài)[11]。Hamanaka等[12]研究發(fā)現(xiàn),用異硫氰酸熒光素(FITC)和尼羅紅對(duì)M. alpina染色后,M. alpina的形態(tài)結(jié)構(gòu)是一個(gè)中空、內(nèi)部凹陷、炸面圈狀的橢圓形顆粒,其外部菌絲密度高,越靠近中心菌絲密度越低,隨著培養(yǎng)時(shí)間的增加,內(nèi)部空腔的體積隨小球的總體積增大而不斷增大。
培養(yǎng)前期,各種不同的M. alpina微觀形態(tài)會(huì)影響發(fā)酵中后期宏觀形態(tài)。如表1所示部分微觀形態(tài)對(duì)宏觀形態(tài)的影響[9]。qtip與qb呈負(fù)相關(guān),μ1對(duì)宏觀形態(tài)的影響不大,但是與qb關(guān)聯(lián)很大,qb越高,菌絲的分支越多,進(jìn)而形成實(shí)心泥漿狀小球,相反則會(huì)形成中空的菌絲束小球。當(dāng)μ1相同而qb下降時(shí),形態(tài)從實(shí)心的小球狀變?yōu)槭鵂罹z聚集體[9]。因此各種微觀形態(tài)對(duì)宏觀形態(tài)有著決定性的影響。
表1 微觀形態(tài)對(duì)宏觀形態(tài)影響
在培養(yǎng)過(guò)程中,不同的微觀形態(tài)最終將得到不同的宏觀形態(tài)。研究表明高的菌絲體生長(zhǎng)速率(0.4 h-1)低的尖端延伸速率[20 tips/(μm·h)]、高的分支形成速率[8×103tips/(mm·h)] 所形成的菌絲體形態(tài)是最有利于ARA油脂的積累[10]。Hamanaka等[12]建立的尼羅紅染色法表明,油脂大部分積累在于菌絲中,而M. alpina的菌絲基本上集中小球外側(cè),越靠近中心菌絲密度越低,而 ARA油脂是一種胞內(nèi)產(chǎn)物,它的產(chǎn)量依賴于干細(xì)胞質(zhì)量,菌絲與球心空腔的比例影響到小球外側(cè)菌絲的含量,影響到干細(xì)胞質(zhì)量,從而影響到ARA油脂的產(chǎn)量[13]。
在發(fā)酵過(guò)程中,放射狀的菌絲束含量增多會(huì)導(dǎo)致培養(yǎng)基的黏度變大,進(jìn)而使培養(yǎng)中傳質(zhì)阻力的增加[9],這就需要提供更大的攪拌速率和通氣量來(lái)將基質(zhì)混合均勻和提高溶氧,這無(wú)疑增加了剪切力。在深層發(fā)酵中被剪切下來(lái)的菌絲可能要將更多的碳源用于進(jìn)行自身的修復(fù),ARA油脂的產(chǎn)生會(huì)出現(xiàn)延遲現(xiàn)象,致使 ARA油脂合成受到一定的影響[11]。培養(yǎng)過(guò)程中要盡量避免過(guò)大的剪切力對(duì)菌絲的傷害。雖然圓形小球狀菌體,培養(yǎng)基的黏度相對(duì)較小,質(zhì)量傳遞效率較高,但是,當(dāng)小球直徑大小超過(guò)臨界值,小球核心處氧氣和基質(zhì)耗盡,密集的球心處基質(zhì)的限制會(huì)影響生長(zhǎng),從而影響生物量的進(jìn)一步提高[9]。Park等[13]分別在搖瓶和發(fā)酵罐培養(yǎng)的產(chǎn)量發(fā)現(xiàn),直徑為1~2 mm,小羽毛狀和放射狀的形態(tài)最有利于ARA油脂的積累。
在微生物培養(yǎng)過(guò)程中,微生物除了需要最適生長(zhǎng)溫度和最適 pH值,其它外部培養(yǎng)條件,如氮源、消耗的碳氮比、氨基酸、溶氧、礦物質(zhì)元素等對(duì)M. alpina菌絲體的微觀形態(tài)也有很大影響,主要通過(guò)對(duì)μ1、μtip、qtip、qb等微觀參數(shù)的影響體現(xiàn)出來(lái)。
表2 不同氮源對(duì)M. alpina形態(tài)的影響
如表2所示,添加不同的氮源,M. alpina形態(tài)不同。Park等[13]研究表明,添加酵母膏、蛋白粉、玉米漿作為氮源,呈現(xiàn)出小球狀形態(tài);添加了大豆粉、Pharmamedia、魚粉作為氮源,呈現(xiàn)出放射狀的形態(tài),并且菌絲區(qū)域、菌絲與球心空腔比值明顯要比前三者大,ARA油脂的產(chǎn)量也相對(duì)較高。酵母膏是一種經(jīng)常用于工業(yè)發(fā)酵的氮源,在添加酵母膏的整個(gè)培養(yǎng)過(guò)程,形態(tài)變化為:顆?!☆w粒碎片、小的絲狀菌絲→小球核心變大、絲狀菌絲變長(zhǎng)。添加大豆粉的整個(gè)培養(yǎng)過(guò)程形態(tài)變化為:帶有放射狀生長(zhǎng)菌絲的大球形→羽毛狀→羽毛狀變厚,研究發(fā)現(xiàn)大豆粉培養(yǎng)的M. alpina產(chǎn)生的ARA油脂含量是酵母膏的2倍[13]。因此從各種形態(tài)學(xué)參數(shù)以及ARA油脂最終的含量考慮,對(duì)于生產(chǎn)ARA油脂,大豆粉是最合適的氮源。
油脂在菌體中積累的關(guān)鍵是要在培養(yǎng)過(guò)程中,氮源耗盡,菌體才能將碳源轉(zhuǎn)化為油脂儲(chǔ)存在胞內(nèi)[14]。然而氮源過(guò)少會(huì)影響前期菌絲的生長(zhǎng),消耗的碳氮比會(huì)對(duì)菌體形態(tài)造成一定的影響,從而影響到 ARA油脂產(chǎn)量。不同的微生物所需要的最適合的碳氮比不同,被孢霉屬最適合的碳氮比為 20~23。如表3所示,在消耗的碳氮比到達(dá)20之前,形態(tài)沒(méi)有什么變化,之后隨著消耗的碳氮比增加,小球的形態(tài)變大,出現(xiàn)光滑或者毛發(fā)狀的小球,如果氮源過(guò)量,會(huì)形成狹長(zhǎng)的小球,如果碳源過(guò)量,則形成毛發(fā)狀小球,如果碳源很高但氮源很低,消耗的碳氮比超過(guò)30,菌體的形態(tài)會(huì)變大而且多毛[14]。
在碳氮比最合適的情況下,高濃度的碳源和氮源會(huì)導(dǎo)致培養(yǎng)基基質(zhì)太豐富、太黏稠,當(dāng)碳源超過(guò)120 g/L或氮源超過(guò)40 g/L時(shí),培養(yǎng)基因?yàn)轲ざ冗^(guò)大無(wú)法混合均勻,菌絲會(huì)附著在罐壁和攪拌槳上,混合不充分最終會(huì)導(dǎo)致溶氧不足,由于不飽和脂肪酸的合成需要充足的氧氣參與,過(guò)高的營(yíng)養(yǎng)濃度還會(huì)導(dǎo)致整個(gè)顆粒的大小和環(huán)形的菌絲區(qū)域減小[14-15],生物量降低,最終導(dǎo)致ARA油脂產(chǎn)量降低。
表3 消耗的碳氮比對(duì)形態(tài)的影響
孢子萌發(fā)后,培養(yǎng)2~3天后核開始分布在菌絲中,核的數(shù)量與菌絲的延伸以及分支的形成呈一定的比例。因此,定義菌體生長(zhǎng)單位為hyphal growth unit(HGU),核形成單位為 nucleus forming unit(NFU),每個(gè)尖端核的數(shù)量為N/tip,比核形成速率μn,n表示核的數(shù)量,l表示菌絲長(zhǎng)度,tip表示尖端數(shù)量。則μn、HGU、NFU符合如式(8)~式(10)動(dòng)力學(xué)方程[16]。
Koizumi 等[16]研究發(fā)現(xiàn),添加丙氨酸和纈氨酸,能刺激菌絲的伸長(zhǎng),添加丙氨酸后,60%的小球直徑超過(guò)1.5 mm,但添加纈氨酸,72%小球直徑小于0.5 mm。添加丙氨酸的N/tip值是纈氨酸的2倍,這表明N/tip能夠影響小球大小。
表4 KH2PO4和MgSO4濃度對(duì)形態(tài)的影響
Totani 等[17]研究表明(表4),在無(wú)機(jī)鹽中,KH2PO4和 MgSO4·7H2O 對(duì)菌絲的生長(zhǎng)極為重要,CaCl2·2H2O、MnCl2·4H2O、CuSO4·5H2O 可以使菌體生長(zhǎng)得更好,磷是細(xì)胞膜形成的重要元素,KH2PO4可以促進(jìn)菌絲的生長(zhǎng),KH2PO4和MgSO4·7H2O的比例對(duì)菌體形態(tài)的影響也很大,當(dāng)比例為0~1的時(shí)候,形態(tài)以小球狀為主;當(dāng)比例為1~2時(shí)以多毛小球狀為主;當(dāng)比列超過(guò)2時(shí)則以泥漿狀為主,少量的MgSO4·7H2O對(duì)菌絲生長(zhǎng)也是至關(guān)重要的,增加MgSO4·7H2O會(huì)使多毛的小球變?yōu)楣饣男∏?,在缺乏CaCl2·2H2O時(shí),菌絲的形態(tài)為直徑1 mm的小白點(diǎn)。
只添加KH2PO4,菌體形態(tài)很小,直徑0~1 mm,會(huì)導(dǎo)致發(fā)酵液黏度很大[18],需要更大的攪拌速率和通氣來(lái)提供溶氧,與此同時(shí)也增大了剪切力,而M. alpina對(duì)剪切力較為敏感,因此會(huì)影響脂肪酸和ARA油脂的積累。只添加Na2SO4、CaCl2·2H2O和MgCl2·6H2O會(huì)使顆粒變大,直徑2~4 mm,黏度雖然小,但會(huì)限制質(zhì)量傳遞(氧的傳遞和營(yíng)養(yǎng)的傳遞),當(dāng)這些無(wú)機(jī)鹽同時(shí)添加,配合使用時(shí),形態(tài)直徑為1~2 mm,黏度適中,適合ARA油脂的生產(chǎn)[18]。
一般來(lái)說(shuō),絲狀真菌的物理性質(zhì)是非常脆弱,其對(duì)剪切力比較敏感,而通過(guò)增加攪拌速率來(lái)維持發(fā)酵液中的氧濃度勢(shì)必會(huì)導(dǎo)致剪切力的增大,因此攪拌速率要控制在適宜的范圍內(nèi),最佳的用于ARA油脂生產(chǎn)的溶氧(DO)值范圍為10~15 mg/L。當(dāng)通入含有21%~29%(平均DO為10~15 mg/L)氧氣的空氣,菌體的主要形態(tài)是自由菌絲和小的、不規(guī)則的、纏繞的菌絲,小球直徑小于1.5 mm;當(dāng)通入37%~55%(平均DO為20~30 mg/L)氧氣的空氣,菌體主要的形態(tài)是蓬松的球形,小球直徑1.5~3.5 mm;當(dāng)通入73%~90%(平均DO為40~50 mg/L)氧氣的空氣,菌體的形態(tài)徹底地變?yōu)榇蟮墓饣那蛐?,小球直?2.0~5.0 mm,其中第一種情況下的ARA油脂產(chǎn)量最高[19]。
Higashiyama等[19]分析認(rèn)為過(guò)高的溶氧(DO為40~50 mg/L)阻礙了通過(guò)小球壁的質(zhì)量傳遞,當(dāng)養(yǎng)分和氧氣耗盡之后,菌絲溶解,出現(xiàn)了大的中空光滑小球,相對(duì)于絲狀菌絲形態(tài),在高溶氧條件下,其微觀形態(tài)為高度分支化,以此形成小球外壁,來(lái)免受高濃度氧的傷害,因?yàn)楸砻娴氖`,小球的生長(zhǎng)非常緩慢,同時(shí)菌體也無(wú)法維持其正常狀態(tài)下代謝活力,而是通過(guò)更多的β-氧化脂肪酸來(lái)獲得能量來(lái)適應(yīng)高濃度氧的環(huán)境,因此體內(nèi)的代謝途徑發(fā)生改變,導(dǎo)致 ARA油脂含量的降低。一般說(shuō)來(lái),去飽和作用所需要的溶氧比菌體生長(zhǎng)和積累油脂的最佳溶氧偏高,偏低的溶氧不會(huì)影響油脂的積累,但是會(huì)大大的降低總脂肪酸中ARA的含量。
前人通過(guò)大量的實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),M. alpina培養(yǎng)過(guò)程中,外部培養(yǎng)條件如消耗的碳氮比、氮源、氨基酸、溶氧、無(wú)機(jī)鹽等會(huì)在一定程度上共同影響菌體形態(tài),最終影響目標(biāo)產(chǎn)物 ARA油脂的產(chǎn)量。但是目前還沒(méi)有建立起完整的形態(tài)學(xué)數(shù)學(xué)模型,以預(yù)測(cè)發(fā)酵過(guò)程中的重要參數(shù)如生物量和 ARA油脂產(chǎn)量等,并且控制菌體良好的形態(tài)一直是絲狀真菌發(fā)酵過(guò)程中的難題,現(xiàn)階段單獨(dú)從基因?qū)用鎭?lái)調(diào)控菌體形態(tài)難度很大,因此可以采用控制外部培養(yǎng)條件的方式來(lái)獲取最佳的菌體形態(tài)。然而目前一直是通過(guò)肉眼觀察來(lái)判斷發(fā)酵過(guò)程中菌體形態(tài),判斷的標(biāo)準(zhǔn)也比較盲目,沒(méi)有具體的參照標(biāo)準(zhǔn),無(wú)法精確預(yù)測(cè)和描述發(fā)酵過(guò)程中形態(tài)變化,難以精確控制發(fā)酵過(guò)程中菌體形態(tài)。這些都是利用M. alpina發(fā)酵生產(chǎn)ARA油脂過(guò)程中亟待解決的難題。展望未來(lái),應(yīng)著重從以下方面進(jìn)一步深入開展研究。
(1)外界諸多因素都會(huì)影響菌體形態(tài),各種影響因素之間都存在關(guān)聯(lián),今后應(yīng)進(jìn)一步探究各種影響因素對(duì)菌體形態(tài)的影響,各種因素之間的相互聯(lián)系,總結(jié)出與 ARA油脂的產(chǎn)量相關(guān)聯(lián)的重要的形態(tài)學(xué)參數(shù)。
(2)在 ARA油脂發(fā)酵過(guò)程中,建立一系列M. alpina形態(tài)學(xué)參數(shù)標(biāo)準(zhǔn)。從形態(tài)工程學(xué)的角度出發(fā),基于形態(tài)學(xué)數(shù)學(xué)模型的基礎(chǔ),在形態(tài)學(xué)參數(shù)與ARA油脂產(chǎn)量間構(gòu)建動(dòng)力學(xué)方程[20]。在發(fā)酵過(guò)程中,通過(guò)監(jiān)測(cè)菌體形態(tài)變化,測(cè)定形態(tài)學(xué)參數(shù)值,來(lái)準(zhǔn)確地判斷和預(yù)測(cè)發(fā)酵過(guò)程中生物量和細(xì)胞內(nèi)油脂含量的變化,并在此基礎(chǔ)上總結(jié)出良好形態(tài)的控制策略。
(3)在以上研究基礎(chǔ)上,開發(fā)相關(guān)軟件并借助計(jì)算機(jī)對(duì)發(fā)酵過(guò)程中形態(tài)進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè),通過(guò)測(cè)定各項(xiàng)形態(tài)學(xué)參數(shù),來(lái)預(yù)測(cè)生物量和油脂含量變化,并采取相應(yīng)的策略控制發(fā)酵過(guò)程中良好的形態(tài),為ARA油脂的工業(yè)化生產(chǎn)提供較為精確的指導(dǎo)。
[1] 叢蕾蕾,紀(jì)曉俊,聶志奎,等. 花生四烯酸油脂高產(chǎn)菌株的選育[J]. 生物加工過(guò)程,2012,10(5):36-38.
[2] Streekstra H,F(xiàn)ujikawa S,Park E Y,et al. Production of arachidonic acid by mortierella fungi[J].Biotechnology and Bioprocess Engineering,2002,7(5):252-262
[3] Horrobin D F,Huang Y S. The role of linoleic acid and its metabolites in the lowering of plasmacholesterol and the prevention of cardiovascular disease[J].International Journal of Cardiology,1987,17:173-180.
[4] Zhu M,Yu L J,Li W,et al. Optimization of arachidonic acid production by fed-batch culture ofMortierella alpinabased on dynamic analysis[J].Enzyme and Microbial Technology,2006,38:735-740.
[5] You J Y,Peng C,Liu X,et al. Enzymatic hydrolysis and extraction of arachidonic acid rich lipids fromMortierella alpina[J].Bioresource Technology,2011,102(10):6088-6094.
[6] Sakuradni E. Advances in the production of various polyunsaturated fatty acids through oleaginous fungusMortierella alpinabreeding[J].Bioscience Biotechnology and Biochemistry,2010,74(5):908-917.
[7] Liu X,Zhang H M,Ji X J,et al. An improved sampling protocol for analysis of intracellular metabolites inMortierella alpina[J].Biotechnology Letters,2012,34:2275-2282.
[8] Park E Y,Koike Y,Cai H J,et al. Morphological diversity ofMortierella alpina:Effect of consumed carbon to nitrogen ratio in flask culture[J].Biotechnology and Bioprocess Engineering,2001,6:161-166.
[9] Park E Y,Koizumt K,Higashiyama K. Analysis of morphological relationship between micro- and macromorphology ofMortierellaspecies using a flow-through chamber coupled with image analysis[J].Journal of Eukaryotic Microbiology,2006,53(3):199-203.
[10] Park E Y,Hamanaka T,Higashiyama K,et al. Monitoring of morphological development of the arachidonic-acid-producing filamentous microorganismMortierellaalpina[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2002,59:706-712.
[11] Higashiyama K,F(xiàn)ujikawa S,park E Y,et al. Image analysis of morphological change during arachidonic acid production byMortierellaalpina1S-4[J].JournalofBioscienceand Bioengineering,1999,87(4):489-494.
[12] Hamanaka T,Higashiyama K,F(xiàn)ujikawa S,et al. Mycelial pellet intrastructure and visualization of mycelia and intracellular lipid in a culture ofMortierella alpina[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2001,56:233-238.
[13] Park E Y,Koikjz Y,Higashiyama K,et al. Effect of nitrogen source on mycelial morphology and arachidonic acid production in cultures ofMortierella alpina[J]. Journal of Bioscience and Bioencineering,1999,88(1):61-67.
[14] Koike Y,Cai H J,Higashiyama K,et al. Effect of consumed carbon to nitrogen ratio on mycelial morphology and arachidonic acid production in cultures ofMortierella alpina[J].Journal of Bioscience and Bioencineering,2001,91(4):382-389.
[15] Park E Y,Koike Y,Cai H J,et al. Morphological diversity ofMortierella alpina:Effect of consumed carbon to nitrogen ratio in flask culture[J].Biotechnology and Bioprocess Engineering,2001,6:161-166.
[16] Koizumi K,Higashiyama K,Park E Y. Effects of amino acid on morphological development and nucleus formation of arachidonic acid-producing filamentous micro-organism,Mortierella alpina[J].Journal of Applied Microbiology,2006,100:885-892.
[17] Totani N,Yamaguchi A,Yawata M,et al. The role of morphology during growth ofMortierella alpinain arachidonic acid production[J].Journal of Oleo Science,2002,51(8):531-538.
[18] Higashiyamaa K,Yaguchia T,Akimotoa K,et al. Effects of mineral addition on the growth morphology of and arachidonic acid production byMortierella alpina1S-4[J].Journal of the American Oil Chemists’Society,1998,75(12):1815-1819.
[19] Higashiyama K,Murakami K,Tsujimura H,et al. Effects of dissolved oxygen on the morphology of an arachidonic acid production byMortierella alpina1S-4[J].Biotechnology and Bioengineering,1999,63(4):442-448.
[20] Fu C C,Su C H,Nair G R. Estimation of fungal biomass and lipid production by morphological characteristics ofMucor rouxii[J].Journal of Bioscience and Bioengineering,2011,110(3):367-371.