劉霞 唐波,2 金愛娜 潘興昌 金其貫 蔡木易
1 揚(yáng)州大學(xué)體育學(xué)院(揚(yáng)州225009)
2 廣東省中山市特殊教育學(xué)校 3中國食品發(fā)酵工業(yè)研究院
高原訓(xùn)練中,機(jī)體承受高原缺氧和運(yùn)動(dòng)雙重刺激,促紅細(xì)胞生成素(EPO)分泌和紅細(xì)胞(RBC)生成增加,血液運(yùn)氧能力和機(jī)體有氧運(yùn)動(dòng)能力均提高[1]。但Biselli研究認(rèn)為,在高原訓(xùn)練中,由于缺氧和訓(xùn)練導(dǎo)致產(chǎn)生高濃度毒性羥基,引起紅細(xì)胞破壞,使游離鐵增加[2],表明高原訓(xùn)練顯著增加機(jī)體氧化應(yīng)激,損傷能量代謝和細(xì)胞膜完整性。因此,采取有效措施減少紅細(xì)胞氧化損傷對提高高原訓(xùn)練效果有重要作用。小麥肽是以小麥蛋白為原料經(jīng)過特定微生物發(fā)酵或特定蛋白酶水解,分離制得的有多種生物活性的活性肽,具有抗氧化、調(diào)節(jié)機(jī)體免疫力、改善脂質(zhì)代謝、抗肥胖、抑制膽固醇等作用[3-9]。而在高原訓(xùn)練中補(bǔ)充小麥肽對紅細(xì)胞影響的研究尚未見報(bào)道。本研究通過觀察模擬高原環(huán)境及補(bǔ)充小麥肽對運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練大鼠血細(xì)胞(Red blood cell,RBC)數(shù)量、血紅蛋白(hemoglobin,Hb)含量、紅細(xì)胞壓積(hematocrit,Hct),紅細(xì)胞超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)活性,血液丙二醛(Malondialdehyde,MDA)、促紅細(xì)胞生成素(erythropoietin,EPO)含量及油鏡下紅細(xì)胞形態(tài)的影響,探討高原環(huán)境和/或小麥肽補(bǔ)充對大鼠紅細(xì)胞的作用及其機(jī)制,為高原訓(xùn)練研究提供理論依據(jù)。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與分組
選用清潔級雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠50只,6周齡,體重160~180 g,購于購于浙江省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,許可證號(hào)Scxk(浙)20080033,質(zhì)量合格證號(hào)0016507。飼養(yǎng)溫度(20±2)℃,自然光照,分籠飼養(yǎng),每籠5只,每天更換一次墊料,保持籠內(nèi)干燥。隨機(jī)分成正常對照組(C組,n=10)、高原對照組(HC組,n=10)、常氧訓(xùn)練組(E組,n=10)、高原訓(xùn)練組(HE組,n=10)和高原訓(xùn)練+小麥肽組(HEW組,n=10)。本實(shí)驗(yàn)在揚(yáng)州大學(xué)比較醫(yī)學(xué)中心實(shí)驗(yàn)室完成。
1.2 模擬高原訓(xùn)練和補(bǔ)充方案
大鼠采用無負(fù)重游泳運(yùn)動(dòng),每周6天,每天下午訓(xùn)練,游泳時(shí)間從30 min開始,2周內(nèi)逐漸增加到90 min。游泳池為100 cm×70 cm×60 cm長方體,水深50 cm,水溫(32±1)℃。由 The MAG-10 Mountain Air Generator產(chǎn)生低氧條件,從模擬海拔1600 m開始,2周逐漸提高到3000 m,氧濃度為14.2%,正式訓(xùn)練9周。運(yùn)動(dòng)時(shí)注意觀察大鼠狀態(tài),防止溺水死亡;及時(shí)撈出老鼠糞便,保持游泳池清潔。實(shí)驗(yàn)中由于操作不當(dāng),E組有2只大鼠溺亡。每次訓(xùn)練后HEW組按500 mg/kg體重劑量灌服新鮮配制的小麥肽溶液,小麥肽由中國食品發(fā)酵工業(yè)研究院(北京中食海氏生物技術(shù)有限公司)提供。
1.3 實(shí)驗(yàn)取材
末次訓(xùn)練后,禁食12 h。第二天早晨依次稱重,按50 mg/kg劑量腹腔注射2%戊巴比妥鈉溶液麻醉大鼠。從腹主動(dòng)脈取血約10 ml,先采用手工推片法制作血涂片,后將血液分成3份,1份注入血常規(guī)試管,2 h內(nèi)測定血常規(guī);1份加入肝素抗凝管備測紅細(xì)胞SOD和GSH-Px活性;1份注入真空無菌試管,4℃、3000 r/min離心10 min分離血清,備測血清EPO和MDA含量。
1.4 指標(biāo)測定
采用UnicelDXC800 Beckman Coulter血液分析儀測試血常規(guī)指標(biāo)。采用ELISA測定血清EPO,試劑盒購于上海朗頓生物科技有限公司,測定儀器為ELX800型酶標(biāo)儀。采用羥胺法測定紅細(xì)胞SOD,采用硫代巴比妥酸法(TBA)測定血清MDA,采用比色法測定紅細(xì)胞GSH-Px,試劑盒購于南京建成生物研究所,測試儀器為722型紫外分光光度計(jì)。在血涂片上滴1至2滴瑞氏-姬母薩復(fù)合染液A液,5分鐘后滴幾滴B液覆蓋,干燥后在油鏡下拍片,連續(xù)觀察1000個(gè)紅細(xì)胞的形態(tài),計(jì)算畸形RBC數(shù)。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
使用SPSS17.0統(tǒng)計(jì)軟件處理數(shù)據(jù),結(jié)果用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(± s)表示。C組、HC組、E組和HE組之間采用雙因素方差分析,HE組和HEW組之間采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),P<0.05表示為顯著性差異,P<0.01表示為極顯著性差異。
2.1 血液RRBBCC數(shù)量、HHbb、HHCCTT含量
從表1可見,長期低氧暴露使大鼠RBC數(shù)量、Hb和HCT顯著升高(P<0.05),運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對大鼠RBC數(shù)量、Hb和HCT均無顯著影響,低氧環(huán)境和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對RBC數(shù)量、Hb和HCT改變無顯著交互作用。與HE組相比,HEW組RBC數(shù)量顯著增加(P<0.05)。
表1 各組大鼠血液RBC數(shù)量、Hb、HCT含量比較
2.2 血清EPO含量
由表2可知,長期低氧暴露使大鼠血清EPO含量顯著降低(P<0.05),運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對血清EPO含量無顯著影響,低氧環(huán)境和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對血清EPO含量無顯著交互作用。與HE組相比,HEW組血清EPO含量顯著增加(P<0.05)。
2.3 紅細(xì)胞畸形率
在油鏡下,正常紅細(xì)胞為輕度雙凹盤狀,中央部分淡染,表面光滑規(guī)整。此外,還可見到以下幾種異形紅細(xì)胞(圖1)。(1)碎片紅細(xì)胞(&),紅細(xì)胞呈碎片狀,無任何規(guī)則,大小不一;(2)口型紅細(xì)胞(*),紅細(xì)胞外形呈現(xiàn)出口的形狀;(3)淚滴狀紅細(xì)胞(*),紅細(xì)胞外形像淚滴或者是梨形;(4)棘型紅細(xì)胞(#),紅細(xì)胞呈盤形,但邊緣不規(guī)整,呈剌狀或棘狀突起等。雙因素方差分析結(jié)果(表3)顯示,長期低氧暴露使大鼠血液紅細(xì)胞畸形率降低,但無顯著性差異,運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練使血液紅細(xì)胞畸形率顯著升高(P<0.05),低氧和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對血液紅細(xì)胞畸形率升高有顯著交互作用(P<0.01)。另外,HEW組血液紅細(xì)胞畸形率顯著低于HE組。
表2 各組大鼠血清EPO含量比較
表3 各組大鼠紅細(xì)胞畸形率比較
2.4 紅細(xì)胞SOD、GSH-Px活性及血清MDA含量
從表4可見,長期低氧暴露和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對紅細(xì)胞SOD、GSH-Px活性和MDA含量無顯著影響,而低氧和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對降低紅細(xì)胞SOD和GSH-Px活性和升高M(jìn)DA含量有顯著交互作用(P<0.05)。與HE組相比,HEW組紅細(xì)胞SOD活性顯著升高(P<0.05),MDA含量顯著降低(P<0.01),而GSH-Px活性有所升高,但無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
表4 各組大鼠紅細(xì)胞SOD、GSH-Px活性和血清MDA含量比較
研究證實(shí),不同模式低氧訓(xùn)練,包括傳統(tǒng)高原訓(xùn)練能有效增加血液RBC數(shù)量和Hb含量[10-13]。而高原訓(xùn)練中,低氧和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練兩個(gè)因素的交互作用不完全清楚。Wolfel等[14]認(rèn)為,即使非運(yùn)動(dòng)員在高原停留3~4周不進(jìn)行訓(xùn)練,RBC數(shù)量也會(huì)升高。然而,馮連世等[15]研究發(fā)現(xiàn),與高原安靜相比,高原訓(xùn)練更能促進(jìn)RBC生成。在中等海拔高度訓(xùn)練組RBC較久居高原安靜組明顯增加,表明缺氧和運(yùn)動(dòng)兩種刺激分別起作用,紅細(xì)胞生成促進(jìn)不僅與缺氧程度有關(guān)[15]。本研究采用交互設(shè)計(jì)方案,通過雙因素方差分析,發(fā)現(xiàn)長期低氧暴露使大鼠RBC數(shù)量、Hb和HCT顯著升高,運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練使大鼠RBC數(shù)量、Hb和HCT有所降低,但無顯著性差異,而低氧環(huán)境和運(yùn)動(dòng)對RBC數(shù)量、Hb和HCT改變無顯著交互作用,表明低氧暴露是促進(jìn)血液紅細(xì)胞數(shù)量、Hb含量和HCT增加的主要因素。同時(shí),本研究還發(fā)現(xiàn),低氧聯(lián)合運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練不僅未引起血液RBC數(shù)量、Hb含量和HCT進(jìn)一步升高,而且與HC組相比,RBC數(shù)量、Hb含量和HCT均有降低趨勢。在某種程度上可以說明在低氧環(huán)境中進(jìn)行運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對低氧促進(jìn)血液RBC數(shù)量增多和Hb含量增加起到一定的抑制作用。
血液RBC數(shù)量取決于RBC生成和破壞的平衡。EPO是促進(jìn)紅細(xì)胞生成的非常重要的因素之一。但維持高水平EPO并不是RBC持續(xù)增加所必需的[16]。研究認(rèn)為,世居平原運(yùn)動(dòng)員到高原訓(xùn)練3~4天后,血清EPO濃度迅速增高,而隨著Hb和Hct上升,EPO濃度反而下降[17,18]。因此,低氧環(huán)境時(shí)引起EPO濃度變化的原因不是缺氧而是氧濃度[19]。本研究發(fā)現(xiàn),長期低氧暴露使大鼠血清EPO含量顯著降低,運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對血清EPO含量無顯著影響,低氧和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對血清EPO含量無顯著交互作用。其原因可能是長期低氧使血液RBC數(shù)量和Hb含量顯著增加,反饋性抑制了EPO分泌,導(dǎo)致血液EPO含量減少。
有研究證實(shí),機(jī)體進(jìn)行大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)時(shí),血乳酸增加、氧自由基生成增多,血流加快使紅細(xì)胞之間及紅細(xì)胞與血管壁之間的機(jī)械摩擦增多,常常引起血液RBC破壞增多,導(dǎo)致運(yùn)動(dòng)性貧血[20]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),長期低氧暴露使大鼠血液紅細(xì)胞畸形率降低,但無顯著性差異,而運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練使血液紅細(xì)胞畸形率顯著升高,低氧和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對升高血液紅細(xì)胞畸形率有顯著交互作用。這表明長期低氧暴露對血液紅細(xì)胞畸形率無顯著影響,而常氧下運(yùn)動(dòng)和高原訓(xùn)練均可明顯增加血液紅細(xì)胞畸形率,導(dǎo)致紅細(xì)胞破壞增多,引起紅細(xì)胞數(shù)量減少和Hb含量降低。本研究還發(fā)現(xiàn),長期低氧暴露和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練使紅細(xì)胞SOD和GSH-Px活性有增加趨勢,MDA含量有降低趨勢,但均無顯著性差異,而低氧環(huán)境和運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對降低紅細(xì)胞SOD和GSH-Px活性和升高M(jìn)DA含量有顯著交互作用,從而說明低氧暴露或常氧運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練雖然對血液氧自由基代謝無顯著影響,但在低氧環(huán)境中進(jìn)行同樣負(fù)荷的運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練使機(jī)體的氧化應(yīng)激增強(qiáng),從而產(chǎn)生大量氧自由基。這與前人的研究結(jié)果相同[21-24]。因此,在低氧環(huán)境下運(yùn)動(dòng),大鼠機(jī)體氧自由基含量升高,SOD和GSHPx活性降低,MDA含量升高,自由基對紅細(xì)胞膜的破壞增多,同時(shí)運(yùn)動(dòng)時(shí)細(xì)胞之間的碰撞和紅細(xì)胞與血管的沖撞,導(dǎo)致紅細(xì)胞損傷加重,紅細(xì)胞畸形率大幅度升高,紅細(xì)胞數(shù)量有限減少,血紅蛋白濃度降低。因此,在高原訓(xùn)練過程采取有效措施干預(yù)氧自由基生成,維持紅細(xì)胞正常形態(tài)和功能,對提高訓(xùn)練效果有重要意義。
研究表明,小麥肽有很強(qiáng)的抗氧化性,能顯著提高組織SOD活性,同時(shí)顯著降低MDA含量[4-8]。殷微微等[9]推測小麥肽的抗氧化活性可能通過以下途徑起作用:(1)作用于脂質(zhì)過氧化物,打斷其惡性循環(huán)連鎖反應(yīng),抑制膜結(jié)構(gòu)上不飽和脂肪酸的過氧化;(2)酶解物中活性肽或游離氨基酸通過復(fù)雜的代謝途徑,激活內(nèi)源性SOD和GSH-Px,并提高其活性[9]。本研究讓大鼠在模擬海拔3000 m的低氧艙中進(jìn)行9周運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練,每天定時(shí)補(bǔ)充小麥肽。結(jié)果發(fā)現(xiàn),與HE組相比,HEW組RBC數(shù)量、血清EPO含量顯著增加,血液紅細(xì)胞畸形率顯著降低。同時(shí),HEW組紅細(xì)胞SOD活性顯著升高,MDA含量顯著降低,而GSH-Px活性有升高趨勢,但無顯著性差異。這表明高原訓(xùn)練時(shí)補(bǔ)充小麥肽一方面提高EPO分泌,促進(jìn)RBC生成,另一方面顯著抑制氧自由基生成,對減輕RBC過氧化損傷,維持其正常形態(tài)結(jié)構(gòu)和功能有重要作用。
4.1 高原訓(xùn)練提高大鼠RBC數(shù)量、Hb含量和HCT,低氧因素起決定性作用。
4.2 在低氧環(huán)境中進(jìn)行運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練使紅細(xì)胞抗氧化作用降低,氧自由基生成增加,導(dǎo)致紅細(xì)胞畸形率顯著增多,影響高原訓(xùn)練效果。
4.3 小麥肽顯著抑制高原訓(xùn)練大鼠氧自由基生成,對減輕高原訓(xùn)練大鼠RBC過氧化損傷,維持RBC正常形態(tài)結(jié)構(gòu)和功能有重要作用。
[1]Saunders PU,Pyne DB,Gore CJ.Endurance training at altitude.High Alt Med Biol,2009,10(2):135-148.
[2]Biselli R,Pecci G,Oliva C,et al.Effects of hypobaric hypoxia(HH) on polymorphonuclear granulocytes(PMNL)respiratory activity in HH-acclimatized and non-acclimatized rats.Int J Sports Med,1992,13:94.
[3]王歲樓,祝紅蕾,張棟.小麥蛋白酶解制備活性多肽的研究.生物工程(食品科學(xué)),2008,29(9):388-392.
[4]柳小軍,劉國琴,李琳.小麥源生物活性肽研究進(jìn)展及其應(yīng)用.農(nóng)產(chǎn)品加工學(xué)刊,2009,(3):81-84,96.
[5]陳英,朱科學(xué),彭偉,等.小麥胚活性肽對D-半乳糖衰老模型小鼠抗氧化作用研究.食品科學(xué),2010,31(19):325-328.
[6]陳英,朱科學(xué),彭偉,等.小麥胚活性肽體外抗氧化活性研究.中國油脂,2010,35(12):16-19.
[7]代卉,施用暉,韓芳,等.小麥肽免疫活性及抗氧化作用的研究.天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2009,(21):473-476.
[8]代卉,樂國偉,孫進(jìn),等.小麥肽對受環(huán)磷酰胺免疫抑制小鼠的免疫調(diào)節(jié)及抗氧化功能.生物工程學(xué)報(bào),2009,25(4):549-553.
[9]殷微微,任學(xué)坤,郝為民,等.小麥胚芽蛋白酶解物體內(nèi)抗氧化性評價(jià).糧食與油脂,2011,(5):23-25.
[10]張纓,胡揚(yáng).不同氧濃度的高住高練低訓(xùn)對紅細(xì)胞等血象指標(biāo)的影響.體育科學(xué),2005,25(11):29-32.
[11]Heinicke K,Heinicke I,Schmidt W,et al.A three-week traditional altitude training increases hemoglobin mass and red cell volume in elite biathlon athletes.Int J Sports Med,2005,26(5):350-355.
[12]Saunders PU,Telford RD,Pyne DB,et al.Improved running economy and increased hemoglobin mass in elite runners after extended moderate altitude exposure.J Sci Med Sport,2009,12(1):67-72.
[13]Friedmann B,F(xiàn)rese F,Menold E,et al.Individual variation in the erythropoietic response to altitude training in elite junior swimmers.Br J Sports Med,2005,39(3):148-153.
[14]Wolfel EE,Groves BM,Brooks GA,et al.Oxygen transport during steady-state submaximal exercise in chronic hypoxia.J Appl Physiol,1991,70(3):1129-1136.
[15]馮連世,宗丕芳,李福田,等.高原訓(xùn)練對中長跑運(yùn)動(dòng)員紅細(xì)胞生成的作用.體育科學(xué),1998,18(4):78-81.
[16]Berglund B.High-attitude training.Aspects of hematological adaptation.Sport Med,1992,14(5):289-303.
[17]Son HJ,Kim HJ,Kim JH,et al.Erythropoietin,2,3 DPG,oxygen transport capacity,and altitude training in adolescent Alpine skiers.Aviat Space Environ Med,2012,83(1):50-53.
[18]Garvican L,Martin D,Quod M,et al.Time course of the hemoglobin mass response to natural altitude training in elite endurance cyclists.Scand J Med Sci Sports,2012,22(1):95-103.
[19]趙鵬,路瑛麗,馮連世,等.低氧訓(xùn)練對大鼠EPO/EPOR及其表達(dá)的影響.山東大學(xué)學(xué)報(bào),2009,47(5):5-13.
[20]黃園.運(yùn)動(dòng)性紅細(xì)胞損傷機(jī)理的研究——氧化應(yīng)激與紅細(xì)胞老化.北京體育大學(xué)博士學(xué)位論文,2001:27-50.
[21]Zhou J,Zhou S,Gao Y,et al.Modulatory effects of quercetin on hypobaric hypoxic rats.Eur J Pharmacol,2012,674(2-3):450-454.
[22]李海英,趙娟,佟長青.低氧及復(fù)合運(yùn)動(dòng)對大鼠血清超氧化物歧化酶活性及丙二醛含量的影響.現(xiàn)代中西醫(yī)結(jié)合雜志,2008,17(15):2284-2285.
[23]魯政,胡揚(yáng),田野,等.低氧運(yùn)動(dòng)對血清MDA、SOD、GSH的影響及電解質(zhì)飲料干預(yù)效果的研究.北京體育大學(xué)學(xué)報(bào),2007,30(2):198-202.
[24]張愛芳,田野,胡楊,等.間歇性低氧暴露對足球運(yùn)動(dòng)員自由基代謝的影響.中國運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志,2006,25(1):84-86.
中國運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志2013年11期