石鐵鋒,楊春曉,楊東曉,閆彬彬,許 艷,張 輝,張 穎,徐滿英
(哈爾濱醫(yī)科大學1.附屬第二醫(yī)院、2.生理學教研室,黑龍江 哈爾濱 150081)
阿片類藥物依賴已成當今世界的重要社會問題之一,不僅危害人類的身心健康和家庭幸福,而且還嚴重地干擾了社會安寧和生產(chǎn)發(fā)展。嗎啡依賴是一種頑固的、慢性復發(fā)性腦?。?],是多個腦區(qū)、多種神經(jīng)遞質參與的復雜的一系列神經(jīng)系統(tǒng)適應性改變。動物在嗎啡依賴過程中,腦內(nèi)腎上腺素能等神經(jīng)遞質系統(tǒng)發(fā)生一定變化,這些變化可能與嗎啡成癮的產(chǎn)生有密切關系。
在大鼠腦內(nèi),去甲腎上腺素(NE)是一種重要的神經(jīng)遞質。NE參與許多腦功能,包括覺醒、注意力、情緒、學習、記憶和應激反應[2]。NE對疼痛的影響是復雜的。NE對疼痛的作用取決于其在中樞神經(jīng)系統(tǒng)的特異位點,NE能受體亞型的分布,病理性疼痛狀態(tài)的持續(xù)時間和當時的情況。NE和其他化學物質在下行抑制系統(tǒng)發(fā)揮重要的作用。NE可抑制C纖維傳導周圍傷害性刺激信息到脊髓側角[3]。
伏核(NAc)是位于邊緣系統(tǒng)和基底神經(jīng)節(jié)交界處的一個較大的核團。NAc接受大腦不同區(qū)域的各種神經(jīng)纖維的投射,參與調節(jié)機體的多種功能,如藥物成癮、行為、學習、運動和心血管活動等。NAc還含有豐富的內(nèi)源性阿片肽,并在中樞神經(jīng)系統(tǒng)疼痛傳送和調制中起著重要作用。NAc內(nèi)的阿片肽和膽囊收縮素相互作用可以調節(jié)疼痛。來自中腦導水管周圍灰質(PAG)神經(jīng)纖維上行投射到NAc和NAc神經(jīng)纖維下行投射到PAG,它們均參與鎮(zhèn)痛作用。我們研究室已證明[4],谷氨酸、地卓西平馬來酸鹽和N-甲基-D-天冬氨酸受體參與NAc內(nèi)傷害性信息傳送的調制。近年來,多項研究已經(jīng)證實在NAc內(nèi)存在NE,并表明它在疼痛調節(jié)中起著重要作用[5]。但是,NE和酚妥拉明對嗎啡依賴大鼠NAc內(nèi)PENs和PINs的痛誘發(fā)電活動的影響尚不清楚。因此,本研究使用細胞外的電生理記錄技術,探討NE和酚妥拉明對嗎啡依賴大鼠NAc內(nèi)PENs和PINs的痛誘發(fā)電活動的影響,以便揭示NE和NAc在嗎啡依賴大鼠中樞痛覺生產(chǎn)和調制的作用。
1.1 動物 實驗選用成年、健康Wistar大鼠,清潔級,♀♂不拘,體質量為220~250 g(哈爾濱醫(yī)科大學附屬第二醫(yī)院動物中心提供,級別:Ⅱ,許可證號:黑20020002)。
1.2 方法 大鼠在注射鹽酸嗎啡前,記錄30 min的行為變化。然后,大鼠按逐日遞增劑量的原則,背部皮下注射鹽酸嗎啡,連續(xù)給藥6 d,每日藥量依次為:5、10、20、40、50、60 mg·kg-1,3 次 .d-1(8 ∶00,12 ∶00,16 ∶00),建立嗎啡成癮大鼠的模型[6-7]。
將60只嗎啡依賴大鼠隨機地分為3組:(1)生理鹽水組(20只):NAc內(nèi)注射生理鹽水0.5 μl;(2)NE 組(20 只):NAc內(nèi)注射 NE(4 g·L-1,0.5 μl);(3)酚妥拉明組(20只):NAc內(nèi)注射酚妥拉明(4 g·L-1,0.5 μl);給每種藥的時間均為2 min。d 7 早8∶00觀察大鼠的自然戒斷癥狀后,開始實驗。嗎啡依賴大鼠用200 g·L-1氨基甲酸乙酯(5 ml·kg-1,北京化工廠)腹腔注射麻醉和 50 g·L-1利多卡因必要時創(chuàng)口補充麻醉下實施常規(guī)手術,即氣管插管、顱骨開窗、挑開小腦延髓池處的硬腦膜引流腦脊液和分離坐骨神經(jīng)。術后,將大鼠頭部固定在SN-2腦立體定位儀(Narishige,Japan)上。大鼠腹腔注射溫生理鹽水5 ml補液,熱水袋保暖,維持肛溫37℃ ~38℃。根據(jù) Pellegrino圖譜 B座標系統(tǒng)[8],對NAc進行定位:A:3.2~4.0 mm;R 或 L:1.0~1.8 mm;H:6.2~7.0 mm。然后進行人工呼吸,并大鼠腹腔注射1 g·L-1氯化筒箭毒堿 (1 ml·kg-1)制動,以松弛肌肉排除肌細胞電活動對本實驗的影響。將帶保護的兩根銀絲刺激電極平行鉤在坐骨神經(jīng)上,松緊適宜,用液體石蠟浸沒神經(jīng)。SEN-3301型電子刺激器(Nihon Konden,Japan)發(fā)出的串脈沖(延遲:0 ms,間隔:5 ms,強度:5 mA,持續(xù)時間:0.3 ms,脈沖:5個)刺激大鼠坐骨神經(jīng),作為傷害性痛刺激。關節(jié)運動和毛發(fā)觸摸被用作非傷害性刺激,以確定疼痛相關的神經(jīng)元。將內(nèi)充3 mol·L-1氯化鉀溶液,直流電阻為10~30 MΩ的玻璃微電極固定在SM-21型微電極操縱器(Narishige,Japan)上,并插入NAc內(nèi)引導痛反應神經(jīng)元的放電。根據(jù)Pellegrino圖譜B座標系統(tǒng)[8],將內(nèi)充生理鹽水或NE、酚妥拉明的玻璃微電極固定在SM-11型微電極操縱器(Narishige,Japan)上,并插入NAc(A:3.6 mm;R或L:1.6 mm;H:6.2 mm)內(nèi),然后用ZCZ-50型自動抽注儀分別向NAc內(nèi)勻速注入0.5 μl的生理鹽水或 NE(4 g·L-1,0.5 μl)、酚妥拉明(4 g·L-1,0.5 μl),給藥時間均為 2 min。觀察注藥前、后痛反應神經(jīng)元電活動的變化,電信號經(jīng)JSD-731-F前級放大器(信號的高頻過濾器:3 kHz,低頻率濾波器:0.01 s,放大倍數(shù):100-fold)放大,顯示于VC-9示波器(Nihon Konden,Japan)監(jiān)視,并用ST-CH707X型雙道磁帶錄音機記錄痛反應神經(jīng)元的電變化。每個痛反應神經(jīng)元的放電記錄3次,每2 min 1次,連續(xù)觀察30 min。
1.3 神經(jīng)元的定義 在NAc記錄的神經(jīng)元分為3種類型:(1)無關神經(jīng)元:對傷害性刺激或非傷害性刺激均沒有反應;(2)會聚神經(jīng)元:對傷害性刺激和非傷害性刺激均有反應;(3)痛反應神經(jīng)元:只對傷害性刺激有反應。痛反應神經(jīng)元可分為痛興奮神經(jīng)元(PENs)和痛抑制神經(jīng)元(PINs)。PENs的定義是指對傷害性刺激增加其放電頻率反應的神經(jīng)元;而PINs的定義是指對傷害性刺激降低其放電頻率反應的神經(jīng)元。該研究主要是觀察和記錄PENs和PINs的電活動。
1.4 觀察指標 凈增值(NIV,Hz),是指 PEN或PIN在傷害性刺激前2 s內(nèi)放電平均頻率和傷害性刺激后誘發(fā)放電平均頻率之間差值。潛伏期(s)是指從傷害性刺激起到出現(xiàn)PEN放電的時間。抑制時程(ID,s)是指從傷害性刺激起到出現(xiàn)PIN放電之間的持續(xù)時間。
1.5 統(tǒng)計學方法 實驗結果經(jīng)Powerlab/8 s(ADInstruments)數(shù)據(jù)處理儀處理后輸入計算機,用Chart v 5.3軟件(Australian)進行數(shù)據(jù)分析。所有數(shù)據(jù)均以±s表示和用SPSS 16.0軟件進行分析。統(tǒng)計差異用重復測量方差分析和F檢驗。兩組間差異顯著性用LSD法。
2.1 生理鹽水對嗎啡依賴大鼠NAc痛反應神經(jīng)元痛誘發(fā)電活動的影響 在生理鹽水組,NAc內(nèi)給予正常生理鹽水,嗎啡依賴大鼠的26 PENs或20 PINs的痛誘發(fā)電活動沒有明顯變化(Fig 1a和Fig 2a)。
2.2 NE對嗎啡依賴大鼠NAc痛反應神經(jīng)元痛誘發(fā)電活動的影響 在NE組,24 PENs的平均潛伏期是(0.15±0.03)s,而平均 NIV是(5.53±0.12)Hz。NAc內(nèi)注射NE后立刻,PENs的潛伏期開始增加,NIV開始下降(Fig 1b)。在給NE后8 min,這些作用達到高峰,即平均潛伏期為(0.69±0.02)s(F=3.174,P<0.0001),NIV 為(1.28±0.09)Hz(F=2.458,P<0.0001)。在給 NE后0~16 min期間,PENs的平均潛伏期(F=60.167,P<0.0001)和NIV(F=3.681,P<0.0001)分別與生理鹽水組同期相比差異有顯著性(Fig 3)。在給NE 20 min后,PENs的潛伏期和NIV開始逐漸恢復。
18 PINs的平均ID是(1.70±0.04)s,而 NIV是(-2.68±0.12)Hz。NAc內(nèi)注射NE后,PINs的ID開始縮短,并NIV開始增加(Fig 2b)。在給NE后8 min,這些作用達到高峰,即平均 ID下降到(0.44±0.02)s(F=2.904,P<0.0001),而 NIV 增加到(-0.21±0.03)Hz(F=66.150,P<0.0001)。在注射后的4~16 min,平均 ID(F=9.126,P<0.0001)和NIV(F=1.455,P<0.0001)出現(xiàn)了明顯變化與生理鹽水組同期相比(Fig 4)。
2.3 酚妥拉明對嗎啡依賴大鼠NAc痛反應神經(jīng)元痛誘發(fā)電活動的影響 在酚妥拉明組,22PENs的平均潛伏期為(0.16±0.02)s,而NIV為(5.13±0.14)Hz。NAc內(nèi)給予酚妥拉明后,PENs的潛伏期開始縮短,而NIV開始增加(Fig 1c)。這些效應在給藥后8 min達到高峰,平均潛伏期下降到(0.01±0.03)s(F=138.889,P<0.0001),而 NIV 增加到(9.77±0.18)Hz(F=1.432,P<0.0001)。在給藥后4~12 min期間,PENs的平均潛伏期(F=5.596,P=0.031)和 NIV(F=3.138,P<0.0001)分別與生理鹽水組同期相比差異有顯著性(Fig 3)。
Fig 1 Effects of intra-NAc microinjection of normal saline(a)or NE(b),phentolamine(c)on the evoked discharges of PEN in the NAc of morphine-dependent rats
17 PINs的平均 ID為(1.68±0.05)s,而 NIV為(-2.78±0.09)Hz。在注射酚妥拉明后,ID開始延長,而NIV開始減少(Fig 2c)。在給予酚妥拉明后8 min,PINs的平均ID增加到(4.07±0.02)s(F=2.485,P<0.0001),而NIV下降到(-4.80±0.13)Hz(F=3.456,P<0.0001)。在給藥后0~16 min期間,PINs的平均 ID(F=5.675,P<0.0001)和NIV(F=1.955,P<0.0001)分別與生理鹽水組同期相比有明顯差異(Fig 4)。在給予酚妥拉明后20 min,PINs的平均ID和NIV開始恢復。
Fig 3 Influences of intra-NAc microinjection of different substances on the latency(a)and NIV(b)of PENs in the NAc of morphine-dependent rats
本研究觀察了NE和酚妥拉明對嗎啡依賴大鼠NAc內(nèi)PENs和PINs生物電活動的影響。該結果揭示,NAc內(nèi)給予NE可抑制PENs的電活動,而增強PINs的電活動;而酚妥拉明能增強PENs的電活動和抑制PINs的電活動。可見,酚妥拉明和NE兩者之間在嗎啡依賴大鼠NAc內(nèi)的作用是對立的。結果表明,NE參與嗎啡依賴大鼠NAc內(nèi)傷害性信息傳送的調制。此外,PENs和PINs可以被認為是疼痛研究的指標[9]。PENs和PINs對相同的物質具有相反的反應,這也許可以解釋NE和酚妥拉明對疼痛的調制作用。
Fig 4 Influences of intra-NAc microinjection of different substances on the ID(a)and NIV(b)of PINs in the NAc of morphine-dependent rats
NE是一種單胺神經(jīng)遞質,其對中樞痛覺調節(jié)作用相當復雜。我們研究室曾證明,尾核內(nèi)注射NE可增加嗎啡依賴大鼠尾核內(nèi)PEN的電活動,降低PIN的電活動,即出現(xiàn)了NE易化疼痛效應[10]。但側腦室注射NE能抑制嗎啡依賴大鼠核束旁的PEN電活動,加強PIN電活動,即表現(xiàn)出NE的鎮(zhèn)痛作用。在本研究中,我們發(fā)現(xiàn)NAc內(nèi)注射NE也能產(chǎn)生鎮(zhèn)痛效果。由于NE廣泛地分布在大腦中。許多腦結構會聚于腦干組成了下行抑制系統(tǒng),可調節(jié)脊髓痛覺的傳遞。NE、5-羥色胺(5-HT)等在下行抑制系統(tǒng)中起著重要的作用。NE能抑制外周C纖維傳送傷害性刺激信息到脊髓側角[3]。NE再攝取抑制劑,從而減輕初期由傷害性刺激引起的疼痛感覺[11]。單胺類,包括 NE、多巴胺(DA),5 - HT 等,通過不同的神經(jīng)遞質受體亞型調節(jié)背角神經(jīng)元的興奮性和傷害性疼痛[12]。NE在基礎條件下對痛覺影響不大,但長期疼痛可通過負反饋促進NE介導抑制疼痛[13]。NE和5-HT通過在大腦和脊髓中的下行抑制途徑參與痛覺調制[14]。揭示,NE能系統(tǒng)和痛覺調制系統(tǒng)之間有著密切的關系。
NAc位于尾狀核吻側下方,視神經(jīng)管頂部。NAc接收來自谷氨酸能、5-HT能和NE能神經(jīng)元的投射。NAc中含有大量的內(nèi)源性阿片肽,在控制疼痛的傳送和調制起著重要的作用。NAc可通過阿片肽和膽囊收縮素之間的相互作用來調制疼痛。大量證據(jù)表明[15],DA與NE由額葉前皮質NE能的末稍共同釋放的。NAc的主要神經(jīng)遞質是DA和NE,研究已證實在NAc內(nèi),NE和DA神經(jīng)遞質的水平是相等的??梢?,NAc是中樞痛覺調制系統(tǒng)中重要核團之一。
該系列結果揭示,NAc內(nèi)給予NE不僅可抑制嗎啡依賴大鼠NAc內(nèi)PEN的電活動,還能加強PIN的電活動,呈現(xiàn)出NE的鎮(zhèn)痛效應。當NAc內(nèi)給予α-受體拮抗劑酚妥拉明時,NAc內(nèi)PEN的電活動加強,而PIN的電活動減弱,表現(xiàn)出酚妥拉明易化疼痛效應。提示,NE或酚妥拉明是通過α-受體介導改變了NAc內(nèi)PEN和PIN的電活動來調控中樞痛覺的。
[1]劉文濤,王維勝,何 玲,劉景根.成癮行為消退性學習的研究進展[J].中國藥理學通報,2011,27(6):741-5.
[1]Liu W T,Wang W S,He L,Liu J G.Progresses in extinct research of addictive behaviors[J].Chin Pharmacol Bull,2011,27(6):741-5.
[2]Sofuoglu M,Powell R A.Norepinephrine and stimulant addiction[J].Addict Biol,2009,14(2):119 -29.
[3]Lu Y,Perl E R.Selective action of noradrenaline and serotonin on neurones of the spinal superficial dorsal horn in the rat[J].JPhysiol,2007,582(1):127-36.
[4]Shi T F,Yang C X,Yang D X,et al.MK-801 changes the role of glutamic acid on modulation of algesia in nucleus accumbens[J].Biochem Biophys Res Commun,2010,395(3):407-11.
[5]Tong J,Hornykiewicz O,Kish S J.Identification of a noradrenaline-rich subdivision of the human nucleus accumbens[J].J Neurochem,2006,96(2):349-54.
[6]張 穎,蘇 潔,徐滿英.氟哌利多影響DA對嗎啡成癮大鼠痛覺的調制[J].中國藥理學通報,2007,23(5):594-7.
[6]Zhang Y,Su J,Xu M Y.Role of droperidol in modulation of dopamine on central painful sense in morphinistic rats[J].Chin Pharmacol Bull,2007,23(5):594-7.
[7]楊春曉,楊寶峰,張 輝,等.CCK-8對嗎啡成癮大鼠戒斷癥狀及尾核內(nèi)c-jun蛋白表達的影響[J].中國藥理學通報,2008,24(9):1166-70.
[7]Yang C X,Yang B F,Zhang H,et al.Effects of CCK-8 on the withdrawal symptoms and expression of c-jun protein in Cd of morphinomania rats[J].Chin Pharmacol Bull,2008,24(9):1166-70.
[8]Pellegrino L J,Pellegrino A S,Cushman A J.A stereotaxic atlas of the rat brain[M].New York:Plenum Press,1979:44-50.
[9]Yang X F,Xiao Y,Xu M Y.Both endogenous and exogenous ACh plays antinociceptive role in the hippocampus CA1 of rats[J].J Neural Transm,2008,115(1):1-6.
[10] Zhang G W,Yang C X,Zhang D,et al.Noradrenergic mechanism involved in the nociceptive modulation of nociceptive-related neurons in the caudate putamen [J].Neurosci Let,2010,480(1):59-63.
[11] Gilron I,Watson C P,Cahill C M,et al.Neuropathic pain:a practical guide for the clinician[J].CMAJ,2006,175(3):265-75.
[12] Benarroch E E.Descending monoaminergic pain modulation:bidirectional control and clinical relevance[J].Neurology,2008,71(3):217-21.
[13] Pertovaara A.Noradrenergic pain modulation[J].Prog Neurobiol,2006,80(2):53-83.
[14] Wernicke J F,Pritchett Y L,D'Souza D N,et al.A randomized controlled trial of duloxetine in diabetic peripheral neuropathic pain[J].Neurology,2006,67(8):1411 -20.
[15] Devoto P,F(xiàn)lore G,Pira L,et al.Co-release of noradrenaline and dopamine in the prefrontal cortex after acute morphine and during morphine withdrawal[J].Psychopharmacology,2002,160(2):220-4.