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文冠果腋芽誘導(dǎo)關(guān)鍵影響因素與培養(yǎng)體系優(yōu)化

2014-03-25 01:07:00張娜張蕓香郭晉平
關(guān)鍵詞:腋芽莖段文冠果

張娜,張蕓香,郭晉平

(1.山西農(nóng)業(yè)大學(xué) 林學(xué)院,山西 太谷 030801;2.山西省林業(yè)科學(xué)研究院,山西 太原 030012)

腋芽增生是指莖尖或初代培養(yǎng)的芽在適宜的培養(yǎng)基上誘導(dǎo),不斷發(fā)生腋芽,腋芽又不斷萌發(fā)形成叢生苗,通過(guò)一代又一代地誘導(dǎo)腋芽發(fā)育,獲得大量再生植株的技術(shù)[1]。腋芽增生過(guò)程中不經(jīng)歷脫分化階段而直接從芽發(fā)育成新芽,再生植株能夠最大限度地保持母本的優(yōu)良性狀,已成為木本植物無(wú)性系快速繁殖中運(yùn)用最為廣泛的組培技術(shù)途徑。腋芽誘導(dǎo)是實(shí)現(xiàn)腋芽增生的首要和關(guān)鍵步驟,解決好腋芽增生技術(shù)體系中腋芽誘導(dǎo)環(huán)節(jié)的技術(shù)問(wèn)題,是發(fā)揮腋芽增生方法的優(yōu)勢(shì)、實(shí)現(xiàn)無(wú)性系高效快繁的關(guān)鍵技術(shù)問(wèn)題。

文冠果優(yōu)良品種和類(lèi)型的選育是目前林業(yè)生產(chǎn)中亟待解決的問(wèn)題,在優(yōu)良無(wú)性系選育中,實(shí)現(xiàn)無(wú)性系高效組培快繁是技術(shù)瓶頸,而文冠果屬于組織培養(yǎng)繁殖困難的樹(shù)種。文冠果組織培養(yǎng)體系的建立方面已開(kāi)展了大量的探索和實(shí)驗(yàn)工作,文冠果莖段外植體組織培養(yǎng)技術(shù)方面也有許多試驗(yàn)研究[2~6],但迄今為止,尚無(wú)文冠果莖段外植體腋芽誘導(dǎo)關(guān)鍵影響因素的明確研究結(jié)果,組培技術(shù)體系尚不完善。

以文冠果幼嫩莖段作為外植體,對(duì)滅菌劑種類(lèi)及滅菌時(shí)間、外植體采集時(shí)間、基本培養(yǎng)基類(lèi)型、BA濃度、糖源種類(lèi)和濃度等文冠果腋芽誘導(dǎo)的可能影響因素進(jìn)行了試驗(yàn)研究,旨在掌握腋芽誘導(dǎo)的關(guān)鍵影響因素和作用規(guī)律,建立文冠果莖段外植體高效腋芽誘導(dǎo)技術(shù)體系,為突破文冠果大規(guī)模組培快繁關(guān)鍵技術(shù)難題,實(shí)現(xiàn)文冠果優(yōu)良品種繁育的突破提供理論依據(jù)與技術(shù)支持。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

試驗(yàn)材料采自課題組在山西農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)院苗圃栽培的6年生文冠果實(shí)驗(yàn)林,選擇植株生長(zhǎng)健康的幼嫩莖段作為試驗(yàn)所用的外植體材料。

將大田采回的莖段洗凈后,在超凈工作臺(tái)上操作,先用75%的酒精滅菌10~30 s,無(wú)菌水沖洗3次,再用實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)的2種滅菌劑進(jìn)行不同時(shí)間的滅菌處理,無(wú)菌水沖洗5~6次,切成1.5 cm左右的莖段,每個(gè)莖段至少帶1個(gè)腋芽,準(zhǔn)備接種。

1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)和培養(yǎng)條件

本研究分6個(gè)分項(xiàng)實(shí)驗(yàn),分別解決文冠果莖段增生組培腋芽誘導(dǎo)中的滅菌劑類(lèi)型和滅菌時(shí)間、外植體采集時(shí)期、基本培養(yǎng)基類(lèi)型、培養(yǎng)基BA濃度、培養(yǎng)基糖源類(lèi)型和濃度、培養(yǎng)環(huán)境光照條件共6個(gè)關(guān)鍵技術(shù)指標(biāo)的選擇和組合優(yōu)化。

試驗(yàn)采用單因素完全隨機(jī)設(shè)計(jì),每處理均為30瓶,每瓶接種1個(gè)外植體,重復(fù)3次,接種培養(yǎng)時(shí)間4 w。

試驗(yàn)的培養(yǎng)過(guò)程在全自動(dòng)恒溫培養(yǎng)箱中進(jìn)行,溫度為25±2℃;除培養(yǎng)環(huán)境光照條件實(shí)驗(yàn)外,光照強(qiáng)度均為2500~3000 lx,光照時(shí)間為14~16 h·d-1;除培養(yǎng)基類(lèi)型選擇試驗(yàn)采用多種培養(yǎng)基外,其余試驗(yàn)均采用MS培養(yǎng)基;除培養(yǎng)基糖源類(lèi)型和濃度試驗(yàn)外,培養(yǎng)基糖源均為蔗糖,濃度為30 g·L-1;所有培養(yǎng)基均添加瓊脂4.5 g·L-1,培養(yǎng)基調(diào)至pH 5.8~5.9。

1.3 滅菌劑及滅菌時(shí)間

試驗(yàn)設(shè)計(jì)2種滅菌劑,分別為2%次氯酸鈉(NaClO)和0.1%氯化汞(HgCl2)。對(duì)2種滅菌劑均分別設(shè)計(jì)4個(gè)滅菌時(shí)間梯度,用2%NaClO滅菌時(shí),滅菌時(shí)間梯度分別為5、8、10、12 min;用0.1%HgCl2滅菌時(shí),滅菌時(shí)間梯度分別為2、3、4和5 min。采用4~5月采集的幼嫩莖段,經(jīng)各項(xiàng)處理后進(jìn)行接種培養(yǎng),4 w后對(duì)文冠果莖段外植體的污染率、死亡率和成活率進(jìn)行觀察統(tǒng)計(jì)。

1.4 外植體采集時(shí)間

為分析外植體采集時(shí)間和枝條木質(zhì)化程度對(duì)莖段外植體組培滅菌效果的影響,設(shè)計(jì)4~9月中共6個(gè)外植體采集時(shí)間,選在每月中旬晴朗的中午,選擇當(dāng)年生枝條采集文冠果莖段。由于采集時(shí)間、枝條木質(zhì)化程度不同,不同的采集時(shí)間代表了不同的外植體木質(zhì)化程度。不同時(shí)期采集的外植體及時(shí)經(jīng)處理后接種培養(yǎng),4 w后統(tǒng)計(jì)外植體的污染率、死亡率和成活率。

1.5 基本培養(yǎng)基

供選擇試驗(yàn)的基本培養(yǎng)基為MS、B5和WPM,按試驗(yàn)設(shè)計(jì)確定的試驗(yàn)材料準(zhǔn)備和培養(yǎng)條件,接種至3種培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),4 w后觀察腋芽生長(zhǎng)情況,統(tǒng)計(jì)腋芽誘導(dǎo)率。

1.6 培養(yǎng)基BA濃度

采用上述篩選的最佳基本培養(yǎng)基作為基本培養(yǎng)基,并添加0.2 mg·L-1NAA,再添加不同濃度的BA,設(shè)計(jì)BA濃度梯度為0.5、1.0、3.0和5.0 mg·L-1,接種培養(yǎng)4 w后,觀察文冠果腋芽生長(zhǎng)情況,統(tǒng)計(jì)腋芽誘導(dǎo)率。

1.7 培養(yǎng)基糖源類(lèi)型及濃度

采用上述篩選出的最佳基本培養(yǎng)基及激素組合作為該試驗(yàn)的基本培養(yǎng)基,設(shè)計(jì)培養(yǎng)基糖源種類(lèi)為蔗糖、葡萄糖和果糖3個(gè),并分別設(shè)計(jì)3個(gè)濃度梯度:10、30、50 g·L-1。接種培養(yǎng)4 w后,觀察文冠果腋芽生長(zhǎng)情況,統(tǒng)計(jì)腋芽誘導(dǎo)率。

1.8 培養(yǎng)環(huán)境的光照

采用上述篩選出的最佳基本培養(yǎng)基及激素組合作為該試驗(yàn)的基本培養(yǎng)基,添加蔗糖30 g·L-1,瓊脂4.5 g·L-1,分別進(jìn)行光照培養(yǎng)和黑暗培養(yǎng)。4 w后,觀察文冠果腋芽生長(zhǎng)情況,統(tǒng)計(jì)腋芽誘導(dǎo)率。

1.9 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

將試驗(yàn)所得數(shù)據(jù)采用SPSS17.0進(jìn)行方差分析,并用Duncan多重比較方法對(duì)各處理間的均值進(jìn)行差異顯著性檢驗(yàn)。具體指標(biāo)計(jì)算如下:

污染率=污染的外植體數(shù)/接種的外植體總數(shù)×100%

死亡率=死亡的外植體數(shù)/接種的外植總體數(shù)×100%

成活率=100%-污染率-死亡率

腋芽誘導(dǎo)率=[誘導(dǎo)出腋芽的外植體總數(shù)/(接種的外植體總數(shù)-污染的外植體數(shù))]×100%

2 結(jié)果與分析

2.1 滅菌劑及滅菌時(shí)間對(duì)文冠果莖段外植體滅菌效果的影響

對(duì)滅菌劑和滅菌時(shí)間的方差分析表明,滅菌劑及滅菌時(shí)間對(duì)外植體的污染率、死亡率和成活率的影響極顯著。

由表1可見(jiàn),采用2%NaClO作為滅菌劑,當(dāng)滅菌時(shí)間為5 min時(shí),污染率高達(dá)92.43%,雖然死亡率很低,但成活率僅為5.42%;隨著滅菌時(shí)間延長(zhǎng),污染率有所降低,但死亡率也相應(yīng)升高;當(dāng)滅菌時(shí)間為10 min時(shí),污染率和死亡率分別為64.85%和15.38%,成活率最高,僅為19.77%;當(dāng)滅菌時(shí)間繼續(xù)延長(zhǎng)至12 min時(shí),污染率降低為42.21%,但死亡率卻高達(dá)42.22%,其成活率也僅為15.57%。采用0.1% HgCl2作為滅菌劑,當(dāng)滅菌時(shí)間為2 min時(shí),污染率高達(dá)77.87%,成活率僅達(dá)14.31%;隨著滅菌時(shí)間的延長(zhǎng),污染率逐漸降低,死亡率逐漸升高;當(dāng)滅菌時(shí)間為4 min時(shí),污染率和死亡率均較低,成活率最高,達(dá)74.38%;當(dāng)滅菌時(shí)間繼續(xù)延長(zhǎng)為5 min時(shí),污染率達(dá)最低,為12.16%,但死亡率很高,達(dá)45.66%,成活率僅為42.18%;如圖1-A為外植體莖段死亡,主要是由于滅菌時(shí)間過(guò)長(zhǎng)所致。

可見(jiàn),2%NaClO無(wú)論濃度如何,都不是文冠果莖段外植體的適宜滅菌劑,而0.1% HgCl2滅菌4 min是文冠果莖段外植體組培的適宜滅菌處理方式。

表1 滅菌劑及滅菌時(shí)間對(duì)莖段外植體滅菌效果的影響

注:每個(gè)值代表標(biāo)準(zhǔn)值±標(biāo)準(zhǔn)誤。所有數(shù)據(jù)在P=0.05水平采用鄧肯多重比較法進(jìn)行比較;同一列中相同字母之間表示差異不顯著,不同字母之間表示差異顯著。表2~表6同。

Note: Each value represents the mean ± standard error. Data within a column followed by the same letter in superscript are not significantly different by Duncan's multiple-range test (P<0.05). The same as in table 2~table 6.

2.2 外植體采集時(shí)期對(duì)文冠果莖段外植體滅菌效果的影響

對(duì)外植體采集時(shí)間的方差分析表明,不同采集時(shí)期對(duì)外植體污染率和成活率的影響極顯著,對(duì)外植體的死亡率影響不顯著。4~5月采集外植體進(jìn)行組培,污染率較低,分別為10.01%和14.92%,成活率最高,分別為80.06%和74.77%;6月采集外植體進(jìn)行組培,污染率逐漸升高,成活率逐漸降低;至7~8月采集外植體,污染率達(dá)到最高,而成活率達(dá)到最低,分別為15.60%和12.07%;到9月采集外植體,污染率又有所降低,成活率有所升高,分別為42.68%和47.24%,如表2所示。

表2外植體采集時(shí)期對(duì)莖段外植體滅菌效果的影響

Table2 Effect of collection period on disinfection of stem segment explants

采集時(shí)期Collectionperiod污染率Pollutionrate/%死亡率Mortalityrate/%成活率Survivalrate/%4月10.01±1.93 c9.93±1.73 a80.06±1.54 a5月14.92±0.89 c10.31±1.93 a74.77±1.92 a6月42.40±3.39 b10.35±0.21 a46.09±3.78 b7月72.20±2.31 a12.19±0.93 a15.60±3.10 c8月77.88±1.08 a9.04±1.49 a12.07±1.54 c9月42.68±2.03 b11.23±1.06 a47.24±2.44 b

2.3 基本培養(yǎng)基類(lèi)型對(duì)文冠果莖段組培腋芽誘導(dǎo)的影響

對(duì)基本培養(yǎng)基類(lèi)型的腋芽誘導(dǎo)效果的方差分析表明,基本培養(yǎng)基類(lèi)型對(duì)文冠果腋芽誘導(dǎo)率影響顯著。由表3可見(jiàn),在供試驗(yàn)的3種基本培養(yǎng)基中,MS基本培養(yǎng)基腋芽誘導(dǎo)率最高,達(dá)88.77%,腋芽萌發(fā)時(shí)間也較早,在第6~8 d即開(kāi)始萌發(fā)(圖1-B),之后葉片伸展較快,植株長(zhǎng)勢(shì)良好,如圖1-C。B5和WPM培養(yǎng)基腋芽誘導(dǎo)率略低,且腋芽萌發(fā)時(shí)間較晚,均在8~10 d開(kāi)始萌發(fā)。在B5培養(yǎng)基上進(jìn)行外植體培養(yǎng),葉片伸展較快,但植株長(zhǎng)勢(shì)細(xì)弱(圖1-D);在WPM培養(yǎng)基中培養(yǎng),植株長(zhǎng)勢(shì)良好,但葉片伸展較慢(圖1-E)。

表3基本培養(yǎng)基類(lèi)型對(duì)腋芽誘導(dǎo)的影響

Table3 Effect of basal medium on induction of axillary bud

基本培養(yǎng)基Basalmedium腋芽誘導(dǎo)率Inductionfrequency/%腋芽萌發(fā)期Germinationstage/d腋芽生長(zhǎng)表現(xiàn)Growth situation MS88.77±2.92 a6~8良好,葉片伸展較快B579.60±1.59 b8~10細(xì)弱,葉片伸展較快WPM77.55±2.12 b8~10良好,葉片伸展較慢

2.4 培養(yǎng)基BA濃度對(duì)文冠果腋芽誘導(dǎo)的影響

對(duì)培養(yǎng)基BA濃度的腋芽誘導(dǎo)效果的方差分析表明,培養(yǎng)基BA濃度對(duì)文冠果腋芽誘導(dǎo)率影響顯著。由表4可見(jiàn),當(dāng)BA濃度為0.5 mg·L-1時(shí),腋芽誘導(dǎo)率達(dá)83.36%,腋芽在培養(yǎng)5~7 d后萌發(fā),且生長(zhǎng)較慢;將BA濃度提高到1.0 mg·L-1時(shí),腋芽誘導(dǎo)率達(dá)92.25%,腋芽培養(yǎng)4~5 d后開(kāi)始萌發(fā),且腋芽生長(zhǎng)較快;繼續(xù)提高BA濃度到3.0 mg·L-1時(shí),腋芽誘導(dǎo)率略有下降,腋芽培養(yǎng)4~5 d后萌發(fā),腋芽生長(zhǎng)較快,但出現(xiàn)輕微玻璃化現(xiàn)象(圖1-F);當(dāng)BA濃度為5.0 mg·L-1時(shí),腋芽誘導(dǎo)率最低,且玻璃化現(xiàn)象嚴(yán)重。

2.5 糖源類(lèi)型及濃度對(duì)文冠果腋芽誘導(dǎo)的影響

對(duì)糖源類(lèi)型及濃度的腋芽誘導(dǎo)效果的方差分析表明,糖源類(lèi)型及濃度對(duì)文冠果腋芽誘導(dǎo)率的影響極顯著。培養(yǎng)基中3種糖源的3個(gè)糖含量梯度指標(biāo)中均以30 g·L-1為最佳,腋芽誘導(dǎo)率達(dá)最高。

由表5可見(jiàn),在3種糖源中,在3個(gè)相同濃度下,添加蔗糖的培養(yǎng)基腋芽誘導(dǎo)率均顯著高于添加其它2種糖源的培養(yǎng)基,而添加葡萄糖和果糖的培養(yǎng)基,腋芽誘導(dǎo)率差異不顯著。

表4培養(yǎng)基BA濃度對(duì)腋芽誘導(dǎo)的影響

Table4 Effect of different concentrations of BA on induction of axillary bud

BA/mg·L-1腋芽誘導(dǎo)率Inductionfrequency/%腋芽萌發(fā)期Germinationstage/d腋芽生長(zhǎng)表現(xiàn)Growth situation0.583.36±1.81 b5 ~ 7 較慢1.092.25±0.97 a4 ~ 5較快3.081.94±3.67 b4 ~ 5較快,伴有輕微玻璃化現(xiàn)象5.068.94±2.29 c4 ~ 5較快,玻璃化現(xiàn)象嚴(yán)重

表5糖源類(lèi)型及濃度對(duì)腋芽誘導(dǎo)率的影響

Table5 Effect of different types and concentrations of sugar on the frequency of auxiliary bud induction

糖源Type of sugar濃度Concentration/g·L-1腋芽誘導(dǎo)率Induction frequency/%蔗糖1083.36±1.73 b3092.26±2.93 a5072.34±2.05 c葡萄糖10 71.09±2.27 c30 80.99±3.28 b50 68.01±2.30 c果糖10 67.75±1.29 c30 80.99±3.28 b50 63.27±2.41 c

2.6 光照培養(yǎng)環(huán)境對(duì)文冠果腋芽誘導(dǎo)的影響

對(duì)光照培養(yǎng)環(huán)境的腋芽誘導(dǎo)效果的方差分析表明,光照培養(yǎng)和黑暗培養(yǎng)對(duì)文冠果腋芽誘導(dǎo)率影響不顯著,但不同光照培養(yǎng)環(huán)境下腋芽生長(zhǎng)狀況存在差異。由表6可見(jiàn),光照培養(yǎng)條件下,腋芽4~5 d開(kāi)始萌發(fā),生長(zhǎng)較快,葉片呈綠色;在黑暗培養(yǎng)條件下,腋芽萌發(fā)較晚,在6~8 d開(kāi)始萌發(fā),生長(zhǎng)較慢,葉片呈淡綠色甚至白色(圖1-G),出現(xiàn)白化或黃化苗(圖1-H),說(shuō)明光照培養(yǎng)環(huán)境有利于莖段外植體腋芽誘導(dǎo)及生長(zhǎng)。

表6光照培養(yǎng)環(huán)境對(duì)腋芽誘導(dǎo)的影響

Table6 Effect of light condition on induction of axillary bud

光照環(huán)境Lightcondition腋芽誘導(dǎo)率Inductionfrequency/%腋芽萌發(fā)期Germinationstage/d腋芽生長(zhǎng)表現(xiàn)Growth situation 光照培養(yǎng)93.36±3.13 a4 ~ 5 良好,生長(zhǎng)較快黑暗培養(yǎng)90.83±1.57 a6 ~ 8 生長(zhǎng)較慢,出現(xiàn)白化或黃化苗

圖1 文冠果幼嫩莖段外植體的腋芽誘導(dǎo)生長(zhǎng)情況Fig.1 Axillary bud induction using young stem segments as explants of Xanthoceras sorbifolia注:A,莖段死亡;B,培養(yǎng)6 d時(shí),腋芽開(kāi)始萌發(fā);C,在MS培養(yǎng)基上培養(yǎng)30 d后的腋芽生長(zhǎng)情況;D,在B5培養(yǎng)基上培養(yǎng)30 d后的腋芽生長(zhǎng)情況;E,在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)30 d的腋芽生長(zhǎng)情況;F,在添加3.0 mg·L-1 BA和0.2 mg·L-1 NAA的MS培養(yǎng)基上觀察到腋芽有輕微玻璃化現(xiàn)象;G & H,黑暗培養(yǎng)環(huán)境下,觀察到腋芽呈淡綠白色或淡黃白色。Note:A,Stem segment died; B,Axillary bud began to sprout when cultured for 6 d; C,Axillary bud cultured on MS medium for 30 d; D,Axillary bud cultured on B5 medium for 30 d; E,Axillary bud cultured on WPM medium for 30 d; F,The slight hyperhydric buds observed on MS medium supplemented with 3.0 mg·L-1 BA and 0.2 mg·L-1 NAA; G &H,The light white or light yellow buds observed when cultured on dark condition.

3 結(jié)論與討論

有效控制外植體污染是植物組織培養(yǎng)成功的先決條件。植物組織培養(yǎng)中常用的滅菌劑有漂白粉、次氯酸鈉(2%~10%)、氯化汞(0.1%~1%)和酒精(70%~75%)等[7]。適宜的滅菌劑既要有良好的滅菌效果,又要對(duì)外植體的損傷較小,還要易清洗,殘留少。因此,需要針對(duì)樹(shù)種、外植體類(lèi)型和取材時(shí)期等正確選擇滅菌劑類(lèi)型和處理時(shí)間。本研究選用了兩種滅菌劑,并分別設(shè)置了4個(gè)時(shí)間梯度進(jìn)行篩選研究。結(jié)果表明,2%NaClO無(wú)論濃度如何,都不是文冠果莖段外植體的適宜滅菌劑,而0.1% HgCl2滅菌處理4 min是文冠果莖段外植體組培的適宜滅菌處理方式。Raha and Roy[8]在對(duì)止瀉木莖段外植體進(jìn)行滅菌時(shí),也采用0.1% HgCl2作為滅菌劑。HgCl2是重金屬,對(duì)環(huán)境危害大,對(duì)人畜的毒性極強(qiáng),用時(shí)需慎重,使用后必須做好回收工作。

植物采集時(shí)期對(duì)外植體的滅菌效果也不盡相同。結(jié)果表明,4~5月采集的外植體易于滅菌,污染率較低,成活率最高,可能是由于4~5月是文冠果自然萌發(fā)的季節(jié),腋芽處于萌動(dòng)狀態(tài),并且經(jīng)過(guò)一個(gè)寒冷的冬季,外界環(huán)境中的各種病菌和病蟲(chóng)害較少,易于滅菌。而7~8月正值雨季,空氣相對(duì)濕度大,加之高溫導(dǎo)致文冠果病害嚴(yán)重,致使外植體滅菌非常困難,此時(shí)期的污染率很高。在三倍體毛白楊的腋芽誘導(dǎo)試驗(yàn)研究中也發(fā)現(xiàn),5月份采集的外植體滅菌效果最好[9]。蘋(píng)果在3~6月采集的成活率可達(dá)60%,而7~11月采集時(shí),其成活率降到10%[1]。

基本培養(yǎng)基的選擇直接影響植物組織培養(yǎng)的效果。結(jié)果表明,在MS基本培養(yǎng)基中,文冠果腋芽誘導(dǎo)率最高,達(dá)88.77%,而且腋芽在6~8 d即開(kāi)始萌發(fā),葉片伸展較快,植株長(zhǎng)勢(shì)良好。而B(niǎo)5和WPM培養(yǎng)基的腋芽誘導(dǎo)率略低,且腋芽均在8~10 d萌發(fā)??赡苁怯捎贛S基本培養(yǎng)基中的無(wú)機(jī)鹽含量高,尤其是硝酸鹽、銨離子和鉀離子含量豐富,易于文冠果腋芽誘導(dǎo)及生長(zhǎng)[7]。Jiménez等[10]試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),MS培養(yǎng)基是瓜多竹腋芽誘導(dǎo)的最佳基本培養(yǎng)基。

基本培養(yǎng)基需要配合使用適當(dāng)?shù)闹参锷L(zhǎng)調(diào)節(jié)劑才能誘導(dǎo)細(xì)胞分裂的啟動(dòng)、培養(yǎng)物形態(tài)建成、芽和根的分化與發(fā)育等[11]。本試驗(yàn)對(duì)不同濃度的BA與0.2 mg·L-1NAA組合進(jìn)行研究,結(jié)果表明,當(dāng)BA濃度為1.0 mg·L-1時(shí),腋芽誘導(dǎo)率最高,是文冠果腋芽誘導(dǎo)的最佳濃度。Yan等[12]對(duì)山藥進(jìn)行腋芽誘導(dǎo)研究時(shí)發(fā)現(xiàn),培養(yǎng)基中添加1.0 mg·L-1BA與NAA組合是山藥腋芽誘導(dǎo)的最佳培養(yǎng)基。

在植物組織培養(yǎng)中,糖類(lèi)既為培養(yǎng)物提供能量,也是培養(yǎng)物滲透環(huán)境的主要調(diào)節(jié)者。蔗糖作為碳源和滲壓劑的比例約為3∶1~3∶2,即約有1/4~2/5的蔗糖用于保持培養(yǎng)基的滲透壓[13]。本研究表明,當(dāng)蔗糖濃度為30 g·L-1時(shí),是文冠果腋芽誘導(dǎo)的最佳濃度。

參 考 文 獻(xiàn)

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