劉志剛 熊敏 曾云 余化龍 何寧
[摘 要] 目的:探討體外培養(yǎng)條件下DA-2006促進(jìn)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞分化為成骨細(xì)胞的效果與機(jī)制。方法:取兔股骨, 骨髓腔進(jìn)行沖洗, 采用全骨髓法分離純化培養(yǎng)BMSCs,培養(yǎng)至第3代后,分別利用誘導(dǎo)培養(yǎng)液(組A),添加DA-2006的培養(yǎng)液(組B)以及普通培養(yǎng)液(對(duì)照組)培養(yǎng)BMSCs,采用噻唑藍(lán)(MTT) 檢測(cè)3組骨髓基質(zhì)干細(xì)胞增殖能力, 利用熒光定量PCR技術(shù)檢測(cè)骨堿性磷酸酶(ALP)、骨鈣素(OC)、骨橋蛋白(OPN)等成骨性標(biāo)志基因的表達(dá)情況。結(jié)果:經(jīng)過誘導(dǎo)后,組B細(xì)胞具有良好的形態(tài),擴(kuò)增能力迅速。在生長(zhǎng)率方面,誘導(dǎo)組B較強(qiáng)于誘導(dǎo)組A,對(duì)照組團(tuán)塊化程度最低。對(duì)照組的表達(dá)量最低,同時(shí)組B的ALP、OC、OPN表達(dá)量明顯高于組A(P<0.05)。結(jié)論:在含DA-2006的細(xì)胞培養(yǎng)液誘導(dǎo)環(huán)境下,骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化強(qiáng)于經(jīng)典的地塞米松誘導(dǎo)效果,其機(jī)制的發(fā)揮可能與上調(diào)ALP、OC與OPN的表達(dá)水平有關(guān)。
[關(guān)鍵詞] 骨髓基質(zhì)干細(xì)胞;成骨細(xì)胞;誘導(dǎo)分化
中圖分類號(hào):R681 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:B 文章編號(hào):2055-5200(2014)02-035-04
前 言
骨髓基質(zhì)干細(xì)胞作為干細(xì)胞的一種,具自我更新和多分化潛能,具備成為種子細(xì)胞[1-2]的可能,在組織工程發(fā)展的熱潮中引起科學(xué)工作者關(guān)注,但圍繞骨髓干細(xì)胞的相關(guān)研究尚處于起步階段[3-4]。膠質(zhì)細(xì)胞系源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(GDNF)可以通過跨膜的酪氨酸蛋白激酶受體RET激活細(xì)胞內(nèi)多巴胺(DA)神經(jīng)信號(hào),從而促進(jìn)神經(jīng)細(xì)胞存活和分化過程。aDA-2006是本實(shí)驗(yàn)者在實(shí)驗(yàn)中篩選、發(fā)現(xiàn)的一種易透過細(xì)胞膜、無(wú)細(xì)胞毒作用、可人工合成的小分子化合物。本實(shí)驗(yàn)具體分析DA-2006促進(jìn)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞分化為成骨細(xì)胞的機(jī)制,為骨組織工程的臨床應(yīng)用提供一定依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 實(shí)驗(yàn)材料
實(shí)驗(yàn)動(dòng)物:選擇南京青龍山的3周齡新西蘭大白兔(雄性)。實(shí)驗(yàn)試劑與相關(guān)儀器:Trizol(美國(guó)Invertrogen公司),SYBR Green(日本Toyobo株式會(huì)社),反轉(zhuǎn)錄試劑盒(日本Toyobo株式會(huì)社),0.25% 胰酶(上海生物工程有限公司)、新生牛血清(維森特生物技術(shù)有限公司)、細(xì)胞孵育箱(賽默飛世爾科技中國(guó)有限公司) 、超凈工作臺(tái)(浙江安泰醫(yī)藥有限公司)。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 培養(yǎng)方法 脫頸處死大白兔,在75% 酒精中浸泡25-35min后,在兔脛骨結(jié)節(jié)0.5-1cm處分別抽取骨髓1.5mL,同時(shí)加入等體積的DMEM培養(yǎng)液,將液體移至50mL離心管中,1400rpm/min轉(zhuǎn)速離心5-10min,吸去上清及脂肪層,然后在離心管中添加10%FBS的DMEM培養(yǎng)液4 mL,進(jìn)行顛倒混勻20次,按1×106個(gè)細(xì)胞/cm2的密度,將細(xì)胞接種于10cm細(xì)胞培養(yǎng)皿中,置于飽和濕度孵箱(37℃、5%CO2)中培養(yǎng)。經(jīng)48h細(xì)胞培養(yǎng)后,換液50%,去除未貼壁細(xì)胞、紅細(xì)胞等,以后每72h進(jìn)行一次換液。原代培養(yǎng)9-12d后細(xì)胞達(dá)80%融合,采用添加0.02%的EDTA的0.25%胰蛋白酶進(jìn)行消化后傳代[2]。
將第2代細(xì)胞分3組進(jìn)行培養(yǎng),誘導(dǎo)組A采用誘導(dǎo)培養(yǎng)液[4](普通培養(yǎng)液中添加108mol/L地塞米松,0.01mol/Lβ-甘油磷酸鈉,50mg/L維生素C),誘導(dǎo)組B采用含1?LMDA-2006的普通培養(yǎng)液。對(duì)照組采用普通培養(yǎng)液。
1.2.2 檢測(cè)方法 (1) PCR檢測(cè)標(biāo)志基因的表達(dá):取傳至第3代BMSCs細(xì)胞,吸棄培養(yǎng)液,添加1mL冰浴PBS,利用移液器反復(fù)輕微吹打細(xì)胞,致細(xì)胞脫落,1000rpm/min離心細(xì)胞收取,轉(zhuǎn)至1.7mL離心管,加入1mL Trizol溶液,加入0.2mL氯仿。Vortex混勻,5min室溫靜置,然后11000rmp離心,時(shí)間為15min。將上層的水相轉(zhuǎn)入到1.5mLEP管,添加等體積異丙醇,Vortex混勻,然后放于-20℃冰箱中,過30min后,11000rmp離心,10min。小心把上清倒掉,保留沉淀。添加1mL 75%的乙醇,然后洗滌RNA沉淀,最后7000rmp離心6min。棄上清,靜置5min。
NanoDrop定量后按照TOYOBO 的RT-PCR試劑盒說明書進(jìn)行。應(yīng)用Primer Premier 5.0的軟件設(shè)計(jì)、合成ALP、OC、OPN基因引物(上海博尚生物技術(shù)有限公司),其特異性利用融解曲線進(jìn)行分析驗(yàn)證。
cDNA表達(dá)豐度采用Ct值進(jìn)行檢測(cè),β-actin的Ct值作為內(nèi)參。
反轉(zhuǎn)錄結(jié)束之后,利用SYBR Green(Toyobo)按說明書進(jìn)行熒光定量PCR。
3步法進(jìn)行Q-PCR擴(kuò)增,反應(yīng)條件如下表1。
表1 Q-PCR擴(kuò)增條件
溫度(°C) 時(shí)間(S) 循環(huán)次數(shù)
95 10 1
92 15 45
60 20 45
72 35 45
(2)MTT法測(cè)生長(zhǎng)率:各組細(xì)胞, 經(jīng)胰酶消化后, 進(jìn)行計(jì)數(shù), 以2.5*103/L接種于24 孔板中, 每一孔添加250?L,3組均處于37℃、5%CO2 條件下進(jìn)行培養(yǎng),在檢測(cè)前,每孔加入4mg/mLMTT25L,繼續(xù)培養(yǎng)3h, 吸棄培養(yǎng)液, 每孔添加150?L DMSO,振蕩10min, 利用酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀,在490nm 波長(zhǎng)進(jìn)行檢測(cè)各孔吸光光度值,每日檢測(cè)3孔, 進(jìn)行均值計(jì)算。
觀察不同組別不同時(shí)期細(xì)胞的形態(tài)學(xué),在3組的第3代傳代細(xì)胞繪制生長(zhǎng)曲線,進(jìn)行生長(zhǎng)率的判斷與計(jì)算。同時(shí)觀察不同組別的ALP、OC、OPN基因表達(dá)情況。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理
采用SPSS軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)處理。所有數(shù)據(jù)采用x±s顯示,組間差異比較,用兩樣本的均數(shù)t 檢驗(yàn),P<0.05為差異具統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1 細(xì)胞形態(tài)學(xué)情況
細(xì)胞生長(zhǎng)的形態(tài)學(xué)特點(diǎn)如下:具有良好狀態(tài),具有梭形形狀,且放射狀生長(zhǎng),細(xì)胞間貼附緊密,70%細(xì)胞沿細(xì)胞體的長(zhǎng)軸排列有序(見圖1),細(xì)胞具有良好的純度。通過0.25%胰蛋白酶消化后,傳代培養(yǎng)的骨髓基質(zhì)干細(xì)胞生長(zhǎng)明顯速度增加。但傳至20代左右,生長(zhǎng)速度會(huì)逐漸減慢,細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生顆粒狀的堆積物。
圖1 傳代第3代骨髓基質(zhì)干細(xì)胞(×100)
2.2 生長(zhǎng)率情況
該實(shí)驗(yàn)分為誘導(dǎo)組A,即誘導(dǎo)培養(yǎng)液組,誘導(dǎo)組B,即含DA-2006的培養(yǎng)液組,對(duì)照組,即普通培養(yǎng)液組。通過MTT法,在3組的第3代傳代細(xì)胞繪制生長(zhǎng)曲線(見圖2)
3組實(shí)驗(yàn)進(jìn)行一周的細(xì)胞培養(yǎng)后,3組BMSCs細(xì)胞均出現(xiàn)不同程度的團(tuán)塊化,但誘導(dǎo)組B較強(qiáng)于誘導(dǎo)組A,對(duì)照組團(tuán)塊化程度最低(B組相比于A組,F(xiàn)=0.152,P=0.453),說明組B的誘導(dǎo)能力高于其他兩組,但是無(wú)明顯差異。
圖2 骨髓基質(zhì)干細(xì)胞生長(zhǎng)曲線圖
2.3 成骨分化標(biāo)志基因表達(dá)情況
標(biāo)志骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化的基因有ALP[5]、OC、OPN,這些基因在骨形成中擔(dān)當(dāng)著重要作用。通過熒光定量PCR技術(shù),檢測(cè)這3個(gè)標(biāo)志基因在添加有誘導(dǎo)培養(yǎng)液或者含DA-2006的培養(yǎng)液的條件下的表達(dá)變化(見圖3)。結(jié)果顯示對(duì)照組的表達(dá)量最低,同時(shí)組B的ALP、OC、OPN表達(dá)量明顯高于組A(X2=3.621,6.521,4.052,P=0.012,0.000,0.009)。
圖3 骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化標(biāo)志基因表達(dá)情況
3 討論
當(dāng)前骨髓基質(zhì)干細(xì)胞已經(jīng)被實(shí)驗(yàn)證實(shí)其作為載體在細(xì)胞治療和基因治療方面的價(jià)值[6-7]。骨髓基質(zhì)干細(xì)胞相對(duì)較容易從骨髓中抽取分離,同時(shí)較容易進(jìn)行體外細(xì)胞培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染多種外源基因。因此,骨髓基質(zhì)干細(xì)胞相比HSCs在基因治療方面有更多優(yōu)勢(shì)[8-10],例如HSCs的分離需求大量的骨髓,并且這些細(xì)胞是很難大批量體外培養(yǎng)的。
經(jīng)典的誘導(dǎo)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞分化成成骨細(xì)胞的方法包括流式細(xì)胞儀分離技術(shù),密度梯度離心法,貼壁篩選法[11-12]。操作較簡(jiǎn)單的方法為貼壁篩選法,該法篩選的細(xì)胞容易成活。在細(xì)胞培養(yǎng)過程中,換液次數(shù)減少可以保護(hù)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的活力。
多巴胺受體可能作為腫瘤干細(xì)胞的生物標(biāo)志物。將人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞誘導(dǎo)分化為多巴胺能神經(jīng)元并觀察其中腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子的表達(dá)情況,研究指出,臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞經(jīng)誘導(dǎo)后可向多巴胺能神經(jīng)元分化,且分化后的細(xì)胞可表達(dá)腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子。而對(duì)于誘導(dǎo)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞分化的方法,目前主要是利用骨形成蛋白或者地塞米松[13]進(jìn)行誘導(dǎo),本實(shí)驗(yàn)探討人工合成的小分子化合物DA-2006的誘導(dǎo)作用及其機(jī)制。結(jié)果顯示3組BMSCs細(xì)胞均出現(xiàn)不同程度的團(tuán)塊化,但誘導(dǎo)組B較強(qiáng)于誘導(dǎo)組A,對(duì)照組團(tuán)塊化程度最低,而且誘導(dǎo)組B的密集程度最高,說明含DA-2006的培養(yǎng)液條件下的骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的細(xì)胞活性比較強(qiáng),該結(jié)果也驗(yàn)證了增值與分化的矛盾統(tǒng)一原理[14-15]。
人類的骨質(zhì)是由成骨細(xì)胞進(jìn)行骨質(zhì)的累積和破骨細(xì)胞進(jìn)行骨質(zhì)的降解相平衡的一個(gè)完美的平衡過程。近年來(lái)科學(xué)家發(fā)現(xiàn)ALP、OC、OPN參與了腫瘤形成、細(xì)胞增殖和分化、病毒防御等幾乎所有的生物學(xué)過程,它可能有非常廣泛多樣的生物功能。本文通過熒光定量PCR實(shí)驗(yàn),檢測(cè)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞在誘導(dǎo)分化后的相關(guān)成骨標(biāo)志基因的表達(dá)變化,可以反應(yīng)其成骨分化水平,骨堿性磷酸酶(LAP)作為成骨細(xì)胞表型的標(biāo)志物之一[16,17],可反映成骨細(xì)胞的活性和功能狀況,主要應(yīng)用于小兒佝僂病早期診斷,骨源性堿性磷酸酶從骨質(zhì)中分泌,當(dāng)骨頭中鈣鹽沉淀出現(xiàn)不足時(shí),分泌會(huì)增多,骨中鈣鹽充足則分泌減少。同時(shí)相關(guān)研究顯示,在干細(xì)胞誘導(dǎo)分化為成骨細(xì)胞時(shí),OPN與OC的表達(dá)水平顯著上調(diào)。本文結(jié)果顯示,對(duì)照組的表達(dá)量最低,同時(shí)組B的ALP、OC、OPN表達(dá)量明顯高于組A??赡軝C(jī)制在于作為干細(xì)胞一種開關(guān)的多巴胺能控制成骨中新細(xì)胞的形成。如果多巴胺信號(hào)被抑制,它們就不能產(chǎn)生新的成骨細(xì)胞。
總之,本研究探討了DA-2006對(duì)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞誘導(dǎo)分化為成骨細(xì)胞的作用及分子機(jī)制。研究發(fā)現(xiàn)在含DA-2006的細(xì)胞培養(yǎng)液誘導(dǎo)環(huán)境下,骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化情況較強(qiáng)于經(jīng)典的地塞米松誘導(dǎo)效果,其機(jī)制的發(fā)揮可能與上調(diào)ALP、OC與OPN的表達(dá)水平有關(guān)。
參 考 文 獻(xiàn)
[1] 孔清泉,項(xiàng)舟,楊志明.骨髓基質(zhì)干細(xì)胞作軟骨組織工程種子細(xì)胞研究[J].中國(guó)修復(fù)重建外科雜志,2002,16(4):277-280.
[2] 席慶,毛天球,曹罡,等.成人骨髓基質(zhì)干細(xì)胞體外培養(yǎng)與鑒定[J].現(xiàn)代口腔醫(yī)學(xué)雜志,2002,16(5):385-387.
[3] Bruder S P, J aiswal N, H aynesw orth SE. Growth kinetics, self -renew al, and the ost eogenicpotential of purified human mesenchymal stem cells during extensive subculativation and followin gcryopreservation[J].J Cell Biochem,1997,64(4):278-283.
[4] 熊敏,陳森,曾云,等.促紅細(xì)胞生成素動(dòng)員骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞治療脊髓損傷[J].中華實(shí)驗(yàn)外科雜志,2011,28(4):618-620.
[5] 武和明,邢樹忠,張曉旻.條件培養(yǎng)液對(duì)兔骨髓基質(zhì)細(xì)胞向成骨細(xì)胞分化的影響[J].醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報(bào),2002,15(1):65-67.
[6] Lock lin RM , Williamson MC, Beresford JN et al. In vitro effects of growth factors and dexamethasone on rat marrow stromal cells[J].Clin Orthop, 1995, 313(9): 27-28.
[7] Lee JH, Mcleod KJ. Morphologic responses of osteoblast2 like cells inmonolayer culture to ELF electromagnetic fields[J].Bioelectr omagnetics,2000, 21(7):129-136.
[8] 劉俠,樂以倫.堿性磷酸酶與鈣化[J].中國(guó)生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)報(bào),1997,16 (1) : 70-72.
[9] Maniatopoulos C , Sodek J , Melcher A H , et al. Bone formation in vitroby stromal cells obtained from bone marrow of young adult rats [J]. Tissue Res ,1998 ,254(2) :317-320.
[10] Bruder SP,F(xiàn)ink DJ,Caplan AL.Mesenchymal stem cells in bone development,bone repair and skeletal regeneration theropy[J].J Cell Biochem,1994, 56(9):283.
[11] 郝瑞峰.骨髓同充質(zhì)干細(xì)胞向成骨細(xì)胞誘導(dǎo)的研究現(xiàn)狀[J].天津醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2007,1(13):129.
[12] 王寶鋼,于鐵成,劉一,等.沖擊波誘導(dǎo)人骨髓基質(zhì)干細(xì)胞向成骨細(xì)胞分化及其機(jī)制研究[J].中華創(chuàng)傷骨科雜志,2008,10(4):359.
[13] 殷曉雪,陳仲?gòu)?qiáng),郭昭慶,等.人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞定向分化為成骨細(xì)胞及其鑒定[J].中國(guó)修復(fù)重建外科雜志,2004,18(2):88.
[14] 段小軍,楊柳,周躍,等.增強(qiáng)型綠色熒光蛋白標(biāo)記技術(shù)對(duì)骨折后骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的遷移示蹤[J].中國(guó)修復(fù)重建外科雜志,2006,20(2):102.
[15] 顧祖超,李起鴻,趙玉峰,等.兔骨髓基質(zhì)干細(xì)胞在誘導(dǎo)條件下的成骨特性[J].第3軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2002,24(22):527-530.
[16] 裴國(guó)獻(xiàn).骨組織工程研究現(xiàn)狀與趨勢(shì)[J].解放軍醫(yī)學(xué)雜志,2002,27(6):471-474.
[17] 黃暉,楊志.骨形態(tài)發(fā)生蛋白在骨組織工程中的臨床應(yīng)用[J].中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2007,(2):340-343.
[7] Lee JH, Mcleod KJ. Morphologic responses of osteoblast2 like cells inmonolayer culture to ELF electromagnetic fields[J].Bioelectr omagnetics,2000, 21(7):129-136.
[8] 劉俠,樂以倫.堿性磷酸酶與鈣化[J].中國(guó)生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)報(bào),1997,16 (1) : 70-72.
[9] Maniatopoulos C , Sodek J , Melcher A H , et al. Bone formation in vitroby stromal cells obtained from bone marrow of young adult rats [J]. Tissue Res ,1998 ,254(2) :317-320.
[10] Bruder SP,F(xiàn)ink DJ,Caplan AL.Mesenchymal stem cells in bone development,bone repair and skeletal regeneration theropy[J].J Cell Biochem,1994, 56(9):283.
[11] 郝瑞峰.骨髓同充質(zhì)干細(xì)胞向成骨細(xì)胞誘導(dǎo)的研究現(xiàn)狀[J].天津醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2007,1(13):129.
[12] 王寶鋼,于鐵成,劉一,等.沖擊波誘導(dǎo)人骨髓基質(zhì)干細(xì)胞向成骨細(xì)胞分化及其機(jī)制研究[J].中華創(chuàng)傷骨科雜志,2008,10(4):359.
[13] 殷曉雪,陳仲?gòu)?qiáng),郭昭慶,等.人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞定向分化為成骨細(xì)胞及其鑒定[J].中國(guó)修復(fù)重建外科雜志,2004,18(2):88.
[14] 段小軍,楊柳,周躍,等.增強(qiáng)型綠色熒光蛋白標(biāo)記技術(shù)對(duì)骨折后骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的遷移示蹤[J].中國(guó)修復(fù)重建外科雜志,2006,20(2):102.
[15] 顧祖超,李起鴻,趙玉峰,等.兔骨髓基質(zhì)干細(xì)胞在誘導(dǎo)條件下的成骨特性[J].第3軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2002,24(22):527-530.
[16] 裴國(guó)獻(xiàn).骨組織工程研究現(xiàn)狀與趨勢(shì)[J].解放軍醫(yī)學(xué)雜志,2002,27(6):471-474.
[17] 黃暉,楊志.骨形態(tài)發(fā)生蛋白在骨組織工程中的臨床應(yīng)用[J].中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2007,(2):340-343.
[7] Lee JH, Mcleod KJ. Morphologic responses of osteoblast2 like cells inmonolayer culture to ELF electromagnetic fields[J].Bioelectr omagnetics,2000, 21(7):129-136.
[8] 劉俠,樂以倫.堿性磷酸酶與鈣化[J].中國(guó)生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)報(bào),1997,16 (1) : 70-72.
[9] Maniatopoulos C , Sodek J , Melcher A H , et al. Bone formation in vitroby stromal cells obtained from bone marrow of young adult rats [J]. Tissue Res ,1998 ,254(2) :317-320.
[10] Bruder SP,F(xiàn)ink DJ,Caplan AL.Mesenchymal stem cells in bone development,bone repair and skeletal regeneration theropy[J].J Cell Biochem,1994, 56(9):283.
[11] 郝瑞峰.骨髓同充質(zhì)干細(xì)胞向成骨細(xì)胞誘導(dǎo)的研究現(xiàn)狀[J].天津醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2007,1(13):129.
[12] 王寶鋼,于鐵成,劉一,等.沖擊波誘導(dǎo)人骨髓基質(zhì)干細(xì)胞向成骨細(xì)胞分化及其機(jī)制研究[J].中華創(chuàng)傷骨科雜志,2008,10(4):359.
[13] 殷曉雪,陳仲?gòu)?qiáng),郭昭慶,等.人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞定向分化為成骨細(xì)胞及其鑒定[J].中國(guó)修復(fù)重建外科雜志,2004,18(2):88.
[14] 段小軍,楊柳,周躍,等.增強(qiáng)型綠色熒光蛋白標(biāo)記技術(shù)對(duì)骨折后骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的遷移示蹤[J].中國(guó)修復(fù)重建外科雜志,2006,20(2):102.
[15] 顧祖超,李起鴻,趙玉峰,等.兔骨髓基質(zhì)干細(xì)胞在誘導(dǎo)條件下的成骨特性[J].第3軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2002,24(22):527-530.
[16] 裴國(guó)獻(xiàn).骨組織工程研究現(xiàn)狀與趨勢(shì)[J].解放軍醫(yī)學(xué)雜志,2002,27(6):471-474.
[17] 黃暉,楊志.骨形態(tài)發(fā)生蛋白在骨組織工程中的臨床應(yīng)用[J].中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2007,(2):340-343.