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鞘內(nèi)預(yù)注右美托咪啶對脊髓缺血/再灌注損傷后脊髓水含量、小膠質(zhì)細(xì)胞及基質(zhì)金屬蛋白酶表達(dá)的影響

2014-05-17 03:03李曉倩
中國藥理學(xué)通報(bào) 2014年10期
關(guān)鍵詞:咪啶鞘內(nèi)陽性細(xì)胞

王 赫,李曉倩,馬 虹

(中國醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院麻醉科,遼寧沈陽 110001)

既往研究發(fā)現(xiàn),坐骨神經(jīng)結(jié)扎前鞘內(nèi)預(yù)注右美托咪啶(dexmedetomidine,DEX)能夠有效減輕神經(jīng)病理性疼痛,減少脊髓組織中炎性因子的產(chǎn)生,改善預(yù)后[1]。一些研究表明,脊髓缺血/再灌注損傷(spinal cord ischemia reperfusion injury,SCIRI)后,減輕脊髓水腫、維持血脊髓屏障(blood spinal cord barrier,BSCB)的完整性,可以減少SCIRI所致的神經(jīng)損傷[2]。鞘內(nèi)預(yù)注DEX是否通過抑制SCIRI后小膠質(zhì)細(xì)胞變化和基質(zhì)金屬蛋白酶表達(dá)對脊髓水腫產(chǎn)生作用,有待深入研究。本研究采用阻斷胸主動(dòng)脈血流合并系統(tǒng)低血壓建立SCIRI模型,探討鞘內(nèi)預(yù)注DEX對SCIRI后急性脊髓水腫、小膠質(zhì)細(xì)胞、基質(zhì)金屬蛋白酶-9(matrix metalloproteinases,MMP-9)變化的影響。

1 材料

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 ♂ Sprague-Dawley大鼠295只,體質(zhì)量260~280 g,由中國醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。

1.2 藥品和儀器 伊文思藍(lán)(evans blue,Sigma);兔抗MMP-9多克隆抗體(Santa Cruz);兔抗 Iba-1單克隆抗體(Wako);共聚焦熒光顯微鏡;GLS-700D型數(shù)碼凝膠掃描分析系統(tǒng)。

2 方法

2.1 實(shí)驗(yàn)分組 大鼠隨機(jī)分為4組。非假手術(shù)組參照文獻(xiàn)[3]制備SCIRI模型,并行 L5-L6鞘內(nèi)置管。假手術(shù)組(Sham組):胸主動(dòng)脈血流阻斷前2 d鞘內(nèi)注射生理鹽水30 μl,開胸并暴露胸主動(dòng)脈而不阻斷;SCIRI組(IR組,鞘內(nèi)注射30μl生理鹽水):胸主動(dòng)脈血流阻斷前2 d鞘內(nèi)注射生理鹽水30μl,暴露胸主動(dòng)脈并于左鎖骨上動(dòng)脈之間無創(chuàng)動(dòng)脈夾夾閉14 min;DEX組(鞘內(nèi)注射右美托咪啶):胸主動(dòng)脈血流阻斷前2 d鞘內(nèi)注射右美托咪啶10、30μl,暴露胸主動(dòng)脈并于左鎖骨上動(dòng)脈之間無創(chuàng)動(dòng)脈夾夾閉14 min;D+A組(鞘內(nèi)注射右美托咪啶及其抑制劑阿替美唑):胸主動(dòng)脈血流阻斷前2 d鞘內(nèi)注射右美托咪啶10μg+阿替美唑10μg(共30μl),暴露胸主動(dòng)脈并于左鎖骨上動(dòng)脈之間無創(chuàng)動(dòng)脈夾夾閉14min。腹腔注射0.3ml氨芐青霉素(0.1 g·L-1)。術(shù)后單籠飼養(yǎng)。

2.2 脊髓水腫測定 采用干濕法測定脊髓含水量,評價(jià)脊髓水腫。

2.3 伊文思藍(lán)測定血-脊髓屏障完整性 血脊髓屏障通透性測定經(jīng)耳緣靜脈緩慢勻速注射質(zhì)量濃度為20 g·L-1的伊文思藍(lán)45 mg·kg-1。取出脊髓缺血節(jié)段(L4-L6),離心,取上清液,用酶標(biāo)儀檢測(λ=632 nm)OD值,每個(gè)樣本重復(fù)檢測3次。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出每克脊髓組織中EB含量(μg·g-1)。

2.4 小膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物Iba-1與MMP-9熒光雙標(biāo)染色

取MMP-9和Iba-1二者都為陽性作為表達(dá)MMP-9的小膠質(zhì)細(xì)胞,每個(gè)截面(蒙太奇拼接成整個(gè)冠狀面圖)的陽性細(xì)胞用Image Pro P1us6.0軟件計(jì)數(shù)3個(gè)冠狀平面的陽性細(xì)胞數(shù)量的平均值和平均光密度值(mean optical density,MOD)。

2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 所有數(shù)據(jù)結(jié)果以s表示。數(shù)據(jù)處理采用SPSS 12.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件,采用單因素方差分析(ANOVA)比較組間差異,使用post hoc schaffe tests進(jìn)行多重比較。

3 結(jié)果

3.1 脊髓含水量 與Sham相比,IR組SCIRI后脊髓水含量48h達(dá)到最高峰,明顯大于12和24 h,48~72 h脊髓水腫無明顯變化,自d 5開始脊髓含水量下降,7 d水腫小于5 d(F=11.03,P<0.05);與 IR組相比,DEX組各時(shí)點(diǎn)脊髓含水量均明顯下降(F=12.73,P<0.05,Tab 1)。

3.2 脊髓組織中EB含量 與Sham相比,IR組SCIRI后脊髓組織中EB含量48 h達(dá)到最高峰,明顯大于12和24 h,48~72 h脊髓水腫無明顯變化,自d 5開始脊髓組織中EB含量下降,7 d EB滲出小于5 d(F=11.93,P<0.05);與 IR組相比,DEX組各時(shí)點(diǎn)脊髓組織中EB滲出均明顯下降(F=13.13,P<0.05,Tab 2)。

Tab 1 Spinal water content in each key point time after SCIRI(%,n=6)

Tab 2 Spinal Evans blue content in each key point time after SCIRI(μg·g-1,n=4)

Tab 3 Cell numbers of double positive labeled w ith MMP-9/Iba-1 in each key point time after SCIRI(numbers/mm2,n=6)

3.3 SCIRI后小膠質(zhì)細(xì)胞(Iba-1)與金屬基質(zhì)蛋白酶(MMP-9)熒光雙標(biāo)染色 與Sham相比,IR組再灌注損傷后,脊髓背角Iba-1陽性小膠質(zhì)細(xì)胞開始逐漸增多,于48 h達(dá)到最高峰,明顯大于12和24 h,自d 5開始Iba-1陽性細(xì)胞數(shù)量下降,d 7陽性細(xì)胞的數(shù)量小于 d 5(F=14.65,P<0.05);與IR組相比,DEX組各時(shí)點(diǎn)Iba-1陽性細(xì)胞的數(shù)量均明顯減少(F=12.34,P<0.05)。陽性細(xì)胞數(shù)統(tǒng)計(jì)分析示SCIRI后表達(dá)MMP-9的小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)目在12~36 h之間開始增加,在48 h時(shí)達(dá)到高峰,5 d時(shí)已經(jīng)明顯下降(Tab 3)。

4 討論

SCIRI后血 -脊髓屏障(blood-spinal cord barrier,BSCB)完整性破壞,通透性增加,造成脊髓組織水腫、炎癥反應(yīng)。缺血前鞘內(nèi)注射DEX可以提高再灌注損傷后BSCB的完整性,減輕脊髓損傷區(qū)域的水腫程度,且上述DEX的抗脊髓水腫的機(jī)制涉及α2AR的激動(dòng),與既往Bell MT等的研究結(jié)果一致。

通常正常大鼠脊髓中有少量小膠質(zhì)細(xì)胞。本研究發(fā)現(xiàn)SCIRI后損傷的脊髓組織中開始出現(xiàn)呈巨噬細(xì)胞樣的激活狀態(tài)下的小膠質(zhì)細(xì)胞,并逐漸增多,加入DEX后在陽性細(xì)胞數(shù)量明顯減少,說明DEX可抑制SCIRI后小膠質(zhì)細(xì)胞的活化,是其發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用的重要因素之一。其保護(hù)作用可能通過提高小膠質(zhì)細(xì)內(nèi)的環(huán)磷腺苷水平[4],調(diào)節(jié)組織間隙Na+,K+,Ca2+離子穩(wěn)態(tài)以及谷氨酸的轉(zhuǎn)運(yùn)和釋放的平衡[5],以及選擇性抑制p38MAPK信號(hào)通路中的p38β亞型而特異性阻斷脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞的活化[6]。

我們既往研究發(fā)現(xiàn),SCIRI后MMP-9表達(dá)表達(dá)增加,與脊髓水腫有密切聯(lián)系。在本研究中,發(fā)現(xiàn)DEX能夠通過抑制SCIRI后小膠質(zhì)細(xì)胞活化,下調(diào)MMP-9蛋白表達(dá)從而減輕脊髓損傷部位水腫、減輕脊髓缺血/再灌注損傷,發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用。

參考文獻(xiàn):

[1] Li X Q,Ma H.Intrathecal injection of Dexmedetomidine reduces neuropathic pain in ratmodel of chronic constriction injury[J].J Chin Physician,2013,15(9):1174-8.

[2] Fang B,Wang H,Sun X J,et al.Intrathecal transplantation of bonemarrow stromal cells attenuates blood-spinal cord barrier disruption induced by spinal cord ischemia-reperfusion injury in rabbits[J].JVasc Surg,2013,58(4):1043-52.

[3] Li X Q,Lv H,Tan W F,et al.Role of the TLR4 pathway in blood-spinal cord barrier dysfunction during the bimodal stage after ischemia/reperfusion injury in rats[J].J Neuroinflammation,2014,11:62.

[4] Jin Y,Sato K,Tobo A,etal.Inhibition of interleukin-1βproduction by extracellular acidification through the TDAG8/cAMPpathway in mousemicroglia[J].J Neurochem,2014,129(4):683-95.

[5] Schilling T,Eder C.Fluorescence imaging of intracellular Ca2+,Na+,and H+in culturedmicroglia[J].MethodsMol Biol,2013,1041:147-61.

[6] Park SY,Jin M L,Kim Y H,et al.Anti-inflammatory effects of aromatic-turmerone through blocking of NF-κB, JNK, and p38MAPK signaling pathways in amyloidβ-stimulated microglia[J].Int Immunopharmacol,2012,14(1):13-20.

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