許俊潔, 陳 鍵, 鄭凱玲, 魯國(guó)東(福建農(nóng)林大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院, 福建 福州 350002)
己糖載體蛋白的功能在許多生物中已經(jīng)有報(bào)道,其中,哺乳類動(dòng)物體內(nèi)發(fā)現(xiàn)了13種己糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(Rogersetal., 2003)。在人體內(nèi),葡萄糖能調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄、酶活,激素分泌和受葡萄糖調(diào)節(jié)的神經(jīng)細(xì)胞的活性(Thorens1etal., 2012;Wetal., 1993)。糖感應(yīng)途徑和糖信號(hào)途徑如果不能正常調(diào)控,則會(huì)引發(fā)代謝的嚴(yán)重?zé)o序(Kimetal., 2013)。但是,細(xì)胞是如何感受并轉(zhuǎn)運(yùn)葡萄糖的,目前這種機(jī)制尚不清楚(Karhumaaetal., 2010)。釀酒酵母(Saccharomycescerevisiae)的己糖載體蛋白研究較為深入,已鑒定出20個(gè)己糖載體蛋白(Kimetal., 2013;Dietzeletal., 2012;Leandroetal., 2009)。Reifenberger 等通過(guò)構(gòu)建釀酒酵母hxt1-7缺陷突變體,發(fā)現(xiàn)此突變菌株在葡萄糖、果糖、甘露醇和蔗糖培養(yǎng)基上不能生長(zhǎng),而將基因Hxt1,Hxt2,Hxt3,Hxt4,Hxt6,Hxt7和Gal2分別互補(bǔ)hxt1-7缺失突變菌株均能在含有葡萄糖的培養(yǎng)基上生長(zhǎng)(Maieretal., 2002)。研究表明,釀酒酵母中葡萄糖的傳感、吸收調(diào)節(jié)及葡萄糖利用率之間有著復(fù)雜的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)(Liuetal., 2013 )。此外,在Neurosporacrassa,Aspergillusnidulans和Colletrotrichumgraminicola中也都鑒定出數(shù)個(gè)己糖載體蛋白基因(Madietal.,1997;Lingneretal., 2011;Reisetal., 2013;Lietal., 2014 )。
稻瘟病是世界性重大病害(Klausetal., 2012),研究稻瘟病菌的致病機(jī)理有著重要意義。目前,稻瘟病菌和水稻互作過(guò)程中糖代謝調(diào)控途徑的研究還很少有報(bào)道,尤其是稻瘟病菌攝取糖類的途徑和機(jī)理目前幾乎還是空白(Ebbole,2007)。最近,Hiromasa Saitoh 等首次發(fā)現(xiàn)了稻瘟病菌的一個(gè)己糖載體蛋白基因MOST1( Saitohetal., 2014)。另有報(bào)道稱,稻瘟病菌侵染水稻被證明是依賴于稻瘟病菌的6-P葡萄糖的傳感器Tps1,它能融合碳源和氮源代謝,并對(duì)可利用的葡萄糖做出反應(yīng)(Reisetal., 2013)。本文將通過(guò)生物信息學(xué)的方法,對(duì)稻瘟病菌中的己糖載體蛋白家族進(jìn)行初步分析,為進(jìn)一步研究它們的功能奠定基礎(chǔ)。
為查找稻瘟病菌中可能存在的己糖載體蛋白,利用該載體蛋白的保守結(jié)構(gòu)域Sugar_tr的氨基酸序列搜索稻瘟病菌數(shù)據(jù)(http:∥www.broadinstitute.org/annotation/genome/magnaporthe_comparative/MultiHome.html)。同時(shí),選擇釀酒酵母、構(gòu)巢曲霉和粗糙脈胞酶已經(jīng)鑒定功能的部分己糖載體蛋白,并與稻瘟病菌中預(yù)測(cè)的己糖載體蛋白進(jìn)行比對(duì)分析。相關(guān)蛋白序列搜索數(shù)據(jù)庫(kù):構(gòu)巢曲霉(http:∥www.broadinstitute.org/annotation/genome/aspergillus group/MultiHome.html)粗糙脈胞酶(http:∥www.broadinstitute.org/annotation/genome/neurospora/MultiHome.html)釀酒酵母(http:∥www.broadinstitute.org/annotation/genome/saccharomyces_cerevisiae)。炭疽病菌數(shù)據(jù)庫(kù)(http:∥www.broadinstitute.org/annotation/genome/colletotrichum_group/MultiHome.html)。
根據(jù)氨基酸序列,使用DNAMAN軟件中的Multiple Alignment分析得到Phylogenetic_Tree。
分別用結(jié)構(gòu)域分析在線軟件(http:∥string-db.org/newstring_cgi/show_input_page.plUserId =eNQqcNmAi0rN&sessionId=18b__pDB_cxA)和跨膜結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)庫(kù)(http:∥www.cbs. dtu.dk/services/TMHMM/)對(duì)預(yù)測(cè)蛋白進(jìn)行單獨(dú)分析。
稻瘟病菌的附著胞形成階段的基因表達(dá)量數(shù)據(jù)主要來(lái)源于(http:∥cogeme.ex.ac.uk/supersage/)。侵染階段基因表達(dá)量來(lái)自于實(shí)驗(yàn)室之前所做的基因芯片雜交試驗(yàn)。
通過(guò)Blast搜索比對(duì),在稻瘟病菌數(shù)據(jù)庫(kù)中發(fā)現(xiàn)sugar_sr家族有67個(gè)同源蛋白,推測(cè)其為己糖載體蛋白。選擇釀酒酵母的糖信號(hào)受體蛋白R(shí)gt2、Snf3;構(gòu)巢曲霉和粗糙脈胞酶中分別已經(jīng)鑒定為葡萄糖載體的部分蛋白NCU_02582、NCU_04963、NCU_06133、NCU_06138、NCU_10021、hxtC(ANID_10891)、hxtD(ANID_08737)、hxtE (ANID_01797)、ANID_06923 ;炭疽病菌中鑒定出的己糖載體蛋白 CgHXT1、CgHXT2、CgHXT3、CgHXT4、CgHXT5與稻瘟病菌中這67個(gè)蛋白一起,共同建立了進(jìn)化樹(shù)(圖1)。通過(guò)進(jìn)化樹(shù)分析可以看出,稻瘟病菌己糖載體蛋白與N.crassa、A.nidulans和C.graminicola中已鑒定出的部分己糖載體蛋白有一定的同源性(從42%到74%)。MGG_06203分別與N.crassa的NCU_04963和A.nidulans的葡萄糖載體蛋白hxtC(ANID_10891)、hxtE (ANID_01797)以及C.graminicola的己糖載體蛋白CgHXT1同源最高,其中與CgHXT1同源性可達(dá)72%。MoST1與NCU_02582和CgHXT4同源。MGG_15700(MGG_01446.6)分別與NCU_10021、CgHXT3和hxtD(ANID_08737)同源。MGG_00040與CgHXT2高度同源,而與A.nidulans、C.graminicola個(gè)別蛋白有較低的同源性。MGG_13651只與葡萄糖載體蛋白ANID_06923有43%的同源性。MGG_05946與NCU_06138同源性最高達(dá)74%。稻瘟病菌中沒(méi)有與釀酒酵母中的葡萄糖信號(hào)受體Rgt2和Snf3高度同源的蛋白,但是有幾個(gè)蛋白與其有一定的同源性(39%)。
圖1稻瘟病菌中67個(gè)己糖載體蛋白與釀酒酵母、N.crassa、A.nidulans
和C.graminicola中已知功能的部分己糖載體蛋白的系統(tǒng)進(jìn)化關(guān)系
Figure 1 The phylogenetic relationship of 67 hexose transporter inM.oryzaeand some identified hexose transporters inS.cerevisiae,N.crassa,A.nidulansandC.graminicola
通過(guò)在線軟件TMHMM Server v. 2.0對(duì)預(yù)測(cè)的67個(gè)蛋白進(jìn)行跨膜分析,發(fā)現(xiàn)它們?cè)诘鞍踪|(zhì)結(jié)構(gòu)上存在一定的差異。根據(jù)蛋白質(zhì)的跨膜結(jié)構(gòu)螺旋分為6類,其中MGG_03620等26個(gè)蛋白具有12個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)螺旋,圖2所示的為MGG_00040的12個(gè)跨膜結(jié)構(gòu),前100個(gè)氨基酸殘基構(gòu)成2個(gè)螺旋結(jié)構(gòu),100到200的氨基酸位點(diǎn)之間有4個(gè)螺旋結(jié)構(gòu),氨基酸位點(diǎn)從200到300之間無(wú)螺旋結(jié)構(gòu),而剩下的約200個(gè)氨基酸位點(diǎn)構(gòu)成了6個(gè)跨膜螺旋結(jié)構(gòu),這些峰值的準(zhǔn)確性約為90%以上。MGG_02783 等12個(gè)蛋白具有11個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)螺旋;MGG_00346等22個(gè)蛋白具有10個(gè)的跨膜結(jié)構(gòu)螺旋;4個(gè)蛋白有9個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)螺旋; MGG_07546只有8個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)螺旋;而最為特殊的是MGG_07844有16個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)螺旋結(jié)構(gòu)。不具有12個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)的蛋白,不代表其預(yù)測(cè)的跨膜結(jié)構(gòu)不足12個(gè),而是有些跨膜螺旋的峰值的可能性低于80%;當(dāng)然,也有部分蛋白預(yù)測(cè)的跨膜螺旋沒(méi)有12個(gè)。根據(jù)Maria Jos′e Leandro等預(yù)測(cè)分析,酵母中的己糖載體蛋白的12層跨膜結(jié)構(gòu)模型見(jiàn)圖3。它們的跨膜螺旋結(jié)構(gòu)鑲嵌在膜上, 蛋白質(zhì)的C端和N端都伸入到細(xì)胞內(nèi)部。
圖2 稻瘟病菌基因MGG_00040的12個(gè)跨膜螺旋結(jié)構(gòu)圖Figure 2 The twelve transmembrane domains of gene MGG_00040 in M.oryzae
圖中的5個(gè)位點(diǎn)(A-E)分別代表在糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白中已經(jīng)鑒定出的基序 圖3 釀酒酵母已糖載體跨膜結(jié)構(gòu)模型Figure 3 Transmembrane model of S.cerevisiae
由結(jié)構(gòu)域在線分析軟件STRING 9.1分析預(yù)測(cè)稻瘟病菌67個(gè)蛋白。其中有66個(gè)的蛋白由于氨基酸序列的重疊都有兩種形式的結(jié)構(gòu)域:Sugar_tr和MFS_1,如圖4所示,這類蛋白所具有的此類結(jié)構(gòu)域的數(shù)目以及形成的結(jié)構(gòu)域氨基酸位點(diǎn)不同。而MGG_15700蛋白只有一種Sugar_tr式的結(jié)構(gòu)域。另外,較為特殊的是MGG_09307和MGG_13930蛋白各有一個(gè)TRI12結(jié)構(gòu)域,此結(jié)構(gòu)域存在于有些致病真菌中,與單端孢毒素的生物合成有關(guān)。同時(shí),MGG_13651含有一個(gè)DUF791結(jié)構(gòu)域,此結(jié)構(gòu)域存在于真核生物中,但是具體的功能目前未知。
圖4基因MGG_03620的兩種不同形式的結(jié)構(gòu)域
Figure 4 Two different forms of domains in geneMGG_03620
3.3.1 稻瘟病菌附著胞形成過(guò)程中己糖載體蛋白基因的表達(dá)分析 預(yù)測(cè)的67個(gè)蛋白中,可以從數(shù)據(jù)庫(kù)中搜索到稻瘟病菌菌株Guy11對(duì)應(yīng)的63個(gè)蛋白在附著胞形成過(guò)程中的表達(dá)量數(shù)據(jù)。根據(jù)Xu等研究,稻瘟病菌分生孢子著落在寄主植物表面,30min內(nèi)會(huì)萌發(fā)形成芽管,8h后大部分細(xì)胞會(huì)分化形成附著胞,24 h后,90%以上的分生孢子會(huì)形成帶有芽管的成熟分化的附著胞,之后產(chǎn)生侵染釘侵入植物細(xì)胞(Xuetal., 1996)。因此,附著胞的形成對(duì)于稻瘟病菌是否能成功侵染寄主細(xì)胞起著關(guān)鍵作用。文章中選出表達(dá)量變化差異性較大同時(shí)又具有代表性的14個(gè)基因進(jìn)行分析。其中,MGG_15700的表達(dá)量極高,在基本培養(yǎng)基MM上生長(zhǎng),其表達(dá)量達(dá)到5033.34。相反,基因MGG_09307的表達(dá)量為0,而在CM培養(yǎng)基上也只有1.965。基因MGG_00040和MGG_03360的表達(dá)量在附著胞形成過(guò)程中不斷升高,分別從9.61和74.61升高到72.24和186.37?;騇GG_03620、MGG_06203從4 h到6 h表達(dá)量有升高,而后,表達(dá)量持續(xù)下降。而其他基因表達(dá)量不規(guī)律,尤其在6 h、8 h和14 h之間波動(dòng)較大(表1)。
表 1 稻瘟病菌己糖載體蛋白基因在附著胞形成過(guò)程中不同時(shí)段的表達(dá)量Table 1 The hexose transporter genes expression in M.oryzae during appresorium develpment
3.3.2 稻瘟病菌侵染水稻48h后的己糖載體蛋白基因的表達(dá)分析 預(yù)測(cè)的67個(gè)己糖載體蛋白中,有25個(gè)蛋白基因在稻瘟病菌侵染水稻48h后有明顯上調(diào)表達(dá)。其中,基因MGG_09607, MGG_09680, MGG_09852, MGG_10530上調(diào)最為明顯,表達(dá)量倍數(shù)超過(guò)6;基因MGG_07884, MGG_09307, MGG_10816有上調(diào),但表達(dá)量倍數(shù)未超過(guò)3;其他17個(gè)基因表達(dá)量倍數(shù)處于3倍到6倍之間(圖5)。
圖5 稻瘟病菌己糖載體蛋白基因在侵染階段的表達(dá)量Figure 5 The hexose transporter genes expression in M.oryzae during infection process
本研究通過(guò)同源性比對(duì)預(yù)測(cè)稻瘟病菌數(shù)據(jù)庫(kù)中有67個(gè)己糖載體蛋白,這與Saitoh等的研究一致(Saitohetal., 2014)。稻瘟病菌中,MGG_06203分別與NCU_04963、hxtC(ANID_10891)、hxtE (ANID_01797)、 CgHXT1同源,且與CgHXT1同源性高達(dá)72%。MGG_00040與CgHXT2高度同源,而與A. nidulans、C.graminicola的相應(yīng)己糖載體蛋白有較低的同源性。此外,稻瘟病菌中有的蛋白與釀酒酵母的己糖信號(hào)受體有一定的同源性。由此推測(cè),己糖載體蛋白在不同生物中存在特定堿基的保守性。
對(duì)67個(gè)己糖載體蛋白跨膜結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析,其跨膜螺旋數(shù)目分為8、9、10、11、12、16共六個(gè)類型。其中,有些蛋白存在更多的跨膜螺旋預(yù)測(cè)峰形,只是由于峰值的低于80%,不算在其中。采用軟件STRING9.1進(jìn)行在線分析,預(yù)測(cè)的67個(gè)蛋白都具有Sugar_tr結(jié)構(gòu)域,此結(jié)構(gòu)域?yàn)榧禾禽d體蛋白的特征結(jié)構(gòu)域。
基因MGG_15700、MGG_09307分別在附著胞形成初期和整個(gè)階段表達(dá)量極高;MGG_00040和MGG_03360表達(dá)量呈不斷升高趨勢(shì);MGG_03620和MGG_06203表達(dá)量在4 h到6 h表達(dá)量有升高,而后持續(xù)下降;其它基因的表達(dá)量在6 h、8 h和14 h之間波動(dòng)??傊?,根據(jù)附著胞形成階段基因的表達(dá)量高低,可以推測(cè)其是否參與致病過(guò)程,以及在附著胞形成的不同階段所起作用的差異。
預(yù)測(cè)的67個(gè)己糖載體蛋白中,有42個(gè)蛋白的基因在稻瘟病菌侵染水稻的48 h后表達(dá)沒(méi)有明顯上調(diào),而另外25個(gè)表達(dá)上調(diào)的基因,可能參與侵染致病過(guò)程。目前已經(jīng)鑒定出的首個(gè)稻瘟病菌己糖載體蛋白基因MGG_03620(MoST1)在侵染階段表達(dá)量不高,表明它可能不參與侵染致病過(guò)程,這與Hiromasa Saitoh等的研究一致,即此基因的敲除不會(huì)影響病菌致病性的變化( Saitohetal., 2014)。當(dāng)然,上述預(yù)測(cè)的己糖載體蛋白的生物學(xué)和生理生化功能還需要通過(guò)實(shí)驗(yàn)進(jìn)行驗(yàn)證。
Couch BC,Fudal I,Lebrun MH,Tharreau D,Valent B,Kim P v,Notteghem JL,Kohn LM.2005.Origins of host-specific populations of the blast pathogenMagnaportheoryzaein crop domestication with subsequent expansion of pandemic clones on rice and weeds of rice.Genetics,170:613-630.
Couch BC,Fudal I,Lebrun MH,Tharreau D,Ebbole DJ.2007.Magnaportheas a model for understanding the host-pathogen interactions.Phytopathol,45:437-56.
Dietzel KL,Ramakrishnan V,Murphy EE,Bisson LF.2012.MTH1 and RGT1 demonstrate combined haploinsufficiency in regulation of the hexose transporter genes inSaccharomycescerevisiae.BMC Genet,13:107.
Fernandez J,Yang KT,Cornwell KM,Wright JD,Wilson RA.2013.Growth in rice cells requires denovo purine biosynthesis by the blast fungusMagnaportheoryzae.Science Report,3:1-9.
Gould GW,Holman GD.1993.The glucose transporter family: structure,function and tissue-specific expression.Biochem,295:329-341.
Karhumaa K,Wu BQ,Kielland-Brandt M C.2010.Conditions with high intracellular glucose inhibit sensing through glucose sensor Snf3 inSaccharomycescerevisiae.J.Cell Biochem,110:920-925.
Scheuermann KK,Raimondi JV,Marschalek R,Andrade AD,Wickert E.2012.Magnaportheoryzaegenetic diversity and its outcomes on the search for durable resistance.The Molecular Basis of Plant Genetic Diversity,InTech Press,
Kim JH,Roy A,Jouandot D.2013.The glucose signaling network in yeast.Biochimica et Biophysica Acta,1830:5204-5210.
Leandro MJ,Fonseca C,Gon?alves P.2009.Hexose and pentose transport in ascomycetous yeasts:an overview.FEMS Yeast Research,9:511-525.
Madi L,McBride SA,Bailey LA,Ebbole DJ.1997.rco-3,a Gene Involved in glucose transport and conidiation inNeurosporacrassa.Genetics,146:499-508.
Li JG,Lin LC,Li HY,Tian CG,Ma YH.2014.Transcriptional comparison of the filamentous fungusNeurosporacrassagrowing on three major monosaccharides D-glucose,D-xylose and L-arabinose .Biotechnology for Biofuels.,7:31.
Lingner U,Münch S,Sode B,Deising .B Sauer N.2011.Functional Characterization of a Eukaryotic Melibiose Transporter.Plant Physiol.,156:1565-1576.
Liu,TB,Wang YN,Xue CY.2013.The Glucose Sensor-Like Protein Hxs1 Is a High-Affinity Glucose Transporter and Required for Virulence in Cryptococcus neoformans.PLoS One,8:1-24.
Maier A,Volker B,Boles E.2002.Characterisation of glucose transport in Saccharomyces cerevisiae with plasma membrane vesicles (countertransport) and intact cells (initial uptake) with single Hxt1,Hxt2,Hxt3,Hxt4,Hxt6,Hxt7 or Gal2 transporters.FEMS Yeast Research,539-550.
Reis TF,Menino JF,Bom VLP,Brown NA,Colabardini AC.2013.Identification of glucose transporters inAspergillusnidulans.PLoS ONE,11:1-15.
Rogers S,Chandler JD,Clarke AL.2003.Glucose transporter GLUT12-functional characterization inXenopuslaevisoocytes Biochem.Biophys.Res.Commun,308:422-426.
Saitoh H,Hirabuchi A,Fujisawa S.2014.MoST1 encoding a hexose transporter-like protein is involved in both conidiation and mycelial melanization ofMagnaportheoryzae.FEMS Microbiology,352:104-113.
Thorens B,Mueckler M.2012.Glucose transporters in the 21st Century.Physiol Endocrinol Metab,298:E141-E145.
Xu JR,Hamer JE.1996.MAP kinase and cAMP signaling regulate infection structure formation and pathogenic growth in the rice blast fungusMagnaporthegrisea.Genes & Development,10:2696-2706.
Xue YK,Shui GH,Wenk MR.2014.TPS1 drug design for rice blast disease inMagnaportheoryzae.Springer Plus,3:18.