王從軍, 陳 梅, 雷中勁
(1荊楚理工學(xué)院醫(yī)學(xué)院, 2荊門市第一人民醫(yī)院兒科, 湖北 荊門 448000)
川崎病(Kawasaki disease, KD)又稱皮膚黏膜淋巴結(jié)綜合征,其病因尚不清楚,是一種以全身血管炎為主要病理變化的急性發(fā)熱出疹性疾病,可以產(chǎn)生嚴(yán)重的心血管并發(fā)癥。因?yàn)樵诖ㄆ椴∈瑱z病例中發(fā)現(xiàn)損傷的血管組織中有IgA、漿細(xì)胞、單核/巨噬細(xì)胞、CD8+T 淋巴細(xì)胞浸潤(rùn),一般認(rèn)為它是一種自身免疫性疾病[1],但對(duì)川崎病患者細(xì)胞免疫和體液免疫功能異常的研究還沒有一致的結(jié)論[2-3]。本實(shí)驗(yàn)擬通過(guò)半定量逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)檢測(cè)部分川崎病患兒外周血單個(gè)核細(xì)胞(peripheral blood mononuclear cells, PBMC)中T-bet 和GATA3 mRNA 轉(zhuǎn)錄量并同時(shí)采用三色熒光流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)川崎病患兒外周血Th1和Th2 細(xì)胞的比例,分別從轉(zhuǎn)錄水平和表達(dá)水平明確KD患兒T細(xì)胞功能狀態(tài)。
以 2010 年3 月至 2011 年 9月入住荊門市第一人民醫(yī)院兒科的 41 例 KD 患兒為研究對(duì)象,其中男24例,女17例,年齡2月~5歲,均符合2004年美國(guó)兒科學(xué)會(huì)和心臟病學(xué)會(huì)聯(lián)合制定的KD診斷標(biāo)準(zhǔn)[4],且回顧性診斷沒有誤診,根據(jù)彩色多普勒超聲診斷冠狀動(dòng)脈有擴(kuò)張的15例。同時(shí)選取年齡和性別相匹配的急性上呼吸道感染發(fā)熱兒童40 例為對(duì)照組。
Becton Dickinson流式細(xì)胞儀。刺激素為佛波酯+ionomycin+monensin(Sigma)??贵w:細(xì)胞表面標(biāo)記抗體,CD3-TC和CD8-FITC;細(xì)胞因子抗體,IL-4-PE和IFN-γ-PE。同型對(duì)照: Mouse IgG1-PE(對(duì)應(yīng)于IL-4-PE)和Mouse IgG2-PE(對(duì)應(yīng)于IFN-γ-PE);IntraPrep破膜劑,以上均為Pharmingen產(chǎn)品。TRIzol購(gòu)自深圳晶美公司; PCR試劑盒、DNA marker、逆轉(zhuǎn)錄酶、RPMI-1640、Taq酶及緩沖液為Promega產(chǎn)品。
3.1PBMC的分離 用肝素抗凝管采集靜脈血至少 2 mL,采集后 4 h內(nèi)使用; 加入等體積的 Hank 平衡鹽緩沖液(HBSS, pH 7.2~7.4)稀釋血液,取與稀釋后血液等體積的淋巴細(xì)胞分層液(Ficoll 液)加入離心管中,將稀釋血液小心地加到淋巴細(xì)胞分層液上,注意保持兩者界面清晰,室溫下2 000 r/min離心 20 min; 用毛細(xì)吸管輕輕吸出單個(gè)核細(xì)胞層,加入含有 5 mL HBSS 的試管中,充分混勻, 1 500 r/min離心 10 min,棄上清后,再洗1次,棄上清,用 RPMI-1640(含 10%熱滅活 FBS)重懸單個(gè)核細(xì)胞,用臺(tái)盼藍(lán)染色計(jì)數(shù)活細(xì)胞數(shù)(應(yīng)在 95%以上); 調(diào)節(jié)細(xì)胞濃度為 2×109/L,-20 ℃凍存待測(cè)。
3.2總RNA的抽提與鑒定 按照TRIzol法提取PBMC總RNA。抽提完后分別用熒光分光光度計(jì)測(cè)定A260和A280并計(jì)算比值,進(jìn)一步采取1%瓊脂糖電泳以分析RNA的純度和完整性, 見到典型3條條帶(5S、18S、28S)后行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)。
3.3RT-PCR檢測(cè)目的基因mRNA的轉(zhuǎn)錄量 總RNA提取鑒定后立即逆轉(zhuǎn)錄合成 cDNA以防降解,合成的cDNA置-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆没蛑苯有蠵CR反應(yīng)。PCR反應(yīng)體系:10×PCR buffer 5 μL,10 mmol/L dNTP Mix 5 μL, RT-PCR產(chǎn)物cDNA 2 μL,上游引物 20 μmol/L,下游引物 20 μmol/L,Taq polymerase 0.25 μL,滅菌水調(diào)總反應(yīng)體積至50 μL。94 ℃預(yù)變性 5 min;94 ℃ 45 s,55 ℃ 50 s,72 ℃ 1 min,25個(gè)循環(huán);72 ℃ 7 min。點(diǎn)取 T-bet、GATA3及 GAPDH擴(kuò)增產(chǎn)物 10 μL在 1.2%瓊脂糖凝膠板孔中,100 V電泳20 min。凝膠電泳圖像輸入Kodak Digital Science System DC40凝膠成像系統(tǒng),應(yīng)用圖像分析軟件進(jìn)行各條帶平均灰度值分析,以同時(shí)擴(kuò)增的 GAPDH為外參照,用轉(zhuǎn)錄因子/GAPDH的比值表示轉(zhuǎn)錄因子相對(duì)表達(dá)量。各對(duì)引物見表1。
表1 T-bet、GATA3、GAPDH PCR引物序列
3.4流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)Th1和Th2細(xì)胞 取 600 μL PBMC(2×109cells/L)于試管中,加入 10 μL 1 mg/L 佛波酯工作液 + 8 μL 50 mg/L ionomycin 工作液 + 6.8 μL 0.1 g/L monensin 工作液混勻,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng) 4~6 h?;靹蚣?xì)胞,加入 20 μL CD3-TC 和 20 μL CD8-FITC,室溫下避光孵育 15 min。將細(xì)胞分成4 管,每管加入 100 μL PBMC,編號(hào)為 A1、A2、A3和A4;每管中加入 100 μL Fix&Perm 中的 Reagent A(固定液),室溫避光孵育15 min;每管中加入 3 mL PBS,1 200 r/min 離心 5 min,棄除上清;每管中加入 100 μL Fix&Perm 中的 Reagent B,同時(shí)各管中分別加入相應(yīng)的抗體各 10 μL (A1: Mouse IgG1-PE;A2: IFN-γ-PE;A3: Rat IgG1-PE;A4: IL-4-PE);室溫下避光孵育15 min。每管中加入3 mL PBS,1 200 r/min 離心5 min,棄除上清;取0.5 mL PBS重懸細(xì)胞,上機(jī)檢測(cè),每一樣品檢測(cè) 20 000個(gè)細(xì)胞。
數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件分析,組間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn), T-bet mRNA、GATA3 mRNA 分別與Th1、Th2細(xì)胞間的相關(guān)性采用Spearman相關(guān)分析法。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
由圖1和表2可見,KD患兒外周血淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)錄因子T-bet和GATA3 mRNA的水平均顯著低于對(duì)照組。
Figure 1. The electrophoretogram of T-bet, GATA3 and GAPDH mRNA in peripheral blood in KD group and control gorup.1: DNA marker; 3: T-bet mRNA of KD group; 4: T-bet mRNA of control group; 5: GATA3 mRNA of KD group; 6: GATA3 mRNA of control group; 7: GAPDH mRNA of KD group; 8: GAPDH mRNA of control group.
表2 KD組與對(duì)照組T-bet mRNA和GATA3 mRNA的 RT-PCR檢測(cè)結(jié)果
用 CD3 和 CD8反設(shè)CD4細(xì)胞,即 CD3+CD8-的細(xì)胞被認(rèn)為是 CD3+CD4+的細(xì)胞。以散點(diǎn)圖IFN-γ和IL-4染色陽(yáng)性分別表示Th1和Th2細(xì)胞,見圖2。用Cells Quest軟件獲取并分析數(shù)據(jù),流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示KD患兒外周血淋巴細(xì)胞亞群Th1和Th2細(xì)胞的百分率顯著低于對(duì)照組(P<0.05),Th1/Th2的比值與對(duì)照組相比無(wú)顯著差異(P>0.05),見表3。
Figure 2. Detection of Th1 and Th2 cells in peripheral blood by flowcytometry method in KD group and control gorup.A: Th1 cells in flow cytometry graph of KD group; B: Th2 cells in flow cytometry graph of KD group; C: Th1 cells in flow cytometry graph of control group; D: Th2 cells in flow cytometry graph of control group.
表3 KD組與對(duì)照組Th1和Th2細(xì)胞流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果
對(duì)全部81例研究對(duì)象T-bet和GATA3 mRNA半定量值與Th1、Th2細(xì)胞百分比分別進(jìn)行Spearman相關(guān)分析,結(jié)果顯示T-bet mRNA轉(zhuǎn)錄量與Th1細(xì)胞比例呈正相關(guān)(r=0.69,P<0.05),GATA3 mRNA轉(zhuǎn)錄量與Th2細(xì)胞比例呈正相關(guān)(r=0.65,P<0.05),見圖3。
Figure 3. The correlations between T-bet mRNA and Th1 cells (A), and between GATA3 mRNA and Th2 cells (B).
KD的病因及發(fā)病機(jī)制尚未清楚,多數(shù)學(xué)者認(rèn)為本病與感染介導(dǎo)的免疫系統(tǒng)高度活化密切相關(guān)[5-6]。目前報(bào)道與川崎病發(fā)病有關(guān)的病原體有10余種,包括鏈球菌[7]、葡萄球菌[8]、支原體[9]、人類微小病毒B19[10]等。在感染等因素作用下,急性期CD4+T細(xì)胞數(shù)目增多,CD8+T細(xì)胞數(shù)目減少,CD4+T細(xì)胞表面CD40配體表達(dá)明顯增高,提示患兒細(xì)胞免疫功能紊亂[11]。但有實(shí)驗(yàn)表明川崎病急性期CD4+調(diào)節(jié)性T 細(xì)胞數(shù)目減少,輔助性T 細(xì)胞Th1、Th2細(xì)胞產(chǎn)物減少,因此對(duì)于T細(xì)胞功能在兒童川崎病中的地位仍有爭(zhēng)議[12]。
T-bet是T-box轉(zhuǎn)錄因子家族中的新成員,不僅控制Th1細(xì)胞特征性細(xì)胞因子IFN-γ的表達(dá),而且抑制Th2細(xì)胞特征性細(xì)胞因子 IL-4的產(chǎn)生,被確認(rèn)為Th1特異性轉(zhuǎn)錄因子。GATA3是一個(gè)鋅指蛋白,屬于GATA家族成員,是Th2細(xì)胞特異的轉(zhuǎn)錄因子,GATA3不僅在Th2細(xì)胞分化過(guò)程中起關(guān)鍵作用,而且它還是所有Th2型細(xì)胞因子轉(zhuǎn)錄所必需的,能促使正在分化或已分化的Th細(xì)胞合成Th2細(xì)胞因子[13]。既往對(duì)川崎病患兒T細(xì)胞免疫功能狀況的研究主要通過(guò)采用ELISA的辦法檢測(cè)2種Th細(xì)胞的特異性因子來(lái)間接檢測(cè)Th1和Th2細(xì)胞的數(shù)目和功能[14],本研究通過(guò)檢測(cè)兩種T細(xì)胞亞群的特異性轉(zhuǎn)錄因子T-bet和GATA3并采用細(xì)胞內(nèi)因子標(biāo)記CD3、CD8設(shè)門的辦法用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)外周血Th1和Th2細(xì)胞,進(jìn)一步確定川崎病患兒T細(xì)胞功能狀態(tài),結(jié)果顯示川崎病患兒急性期外周血PBMCs中T-bet mRNA和GATA3 mRNA低于對(duì)照組,提示川崎病急性期上述2種轉(zhuǎn)錄因子被不同程度抑制,而流式細(xì)胞術(shù)的檢測(cè)結(jié)果也顯示川崎病患兒外周血Th1和Th2細(xì)胞比例均較對(duì)照組顯著減少。Spearman相關(guān)分析顯示T-bet mRNA與Th1細(xì)胞比例、GATA3 mRNA與Th2細(xì)胞比例呈正相關(guān)。以上結(jié)果表明川崎病急性期PBMC中T-bet和GATA3 mRNA表達(dá)被抑制,相關(guān)表達(dá)產(chǎn)物減少,使Th細(xì)胞在向其亞群Th1、Th2轉(zhuǎn)化方面被抑制而導(dǎo)致了Th1和Th2細(xì)胞減少,提示川崎病患兒急性期T淋巴細(xì)胞并非活化而是處于抑制狀態(tài),這和以往部分研究結(jié)果不一致。需要說(shuō)明的是我們僅檢測(cè)了川崎病急性期T淋巴細(xì)胞免疫功能狀態(tài),并不能完全反映川崎病亞急性期和恢復(fù)期特點(diǎn),或許在川崎病的亞急性期和恢復(fù)期細(xì)胞免疫功能狀況逐漸被激活,而部分研究者因在不同病程時(shí)間采集標(biāo)本從而造成研究結(jié)果不一致,也有可能川崎病發(fā)病時(shí)循環(huán)池淋巴細(xì)胞被抑制而周圍池被激活從而導(dǎo)致循環(huán)淋巴細(xì)胞減少,這需進(jìn)一步動(dòng)態(tài)測(cè)定川崎病各期T淋巴細(xì)胞功能狀況并對(duì)炎性血管壁局部組織中的淋巴細(xì)胞功能狀態(tài)進(jìn)行研究加以證實(shí)。另外,我們也比較了川崎病患兒組與對(duì)照組兒童的Th1/Th2比值,并沒發(fā)現(xiàn)顯著差異,因此對(duì)于川崎病細(xì)胞免疫所起的作用還需進(jìn)一步研究證實(shí),同時(shí)對(duì)于川崎病急性期細(xì)胞免疫為什么被抑制也是需要通過(guò)進(jìn)一步研究明確。
[參 考 文 獻(xiàn)]
[1] Yeung RS. Kawasaki disease: update on pathogenesis[J]. Curr Opin Rheumatol,2010, 22(5):551-560.
[2] Suzuki H, Suenaga T, Takeuchi T, et al. Marker of T-cell activation is elevated in refractory Kawasaki disease[J]. Pediatr Int, 2010, 52(5):785-789.
[3] Franco A, Shimizu C, Tremoulet AH, et al. Memory T-cells and characterization of peripheral T-cell clones in acute Kawasaki disease[J]. Autoimmunity, 2010, 43(4):317-324.
[4] Newburger JW, Takahashi M, Gerber MA, et al. Diagnosis, treatment, and long-term management of Kawasaki disease: a statement for health professionals from the Committee on Rheumatic Fever, Endocarditis and Kawasaki Disease, Council on Cardiovascular Disease in the Young, American Heart Association [J]. Circulation, 2004, 110(17):2747-2771.
[5] Principi N, Rigante D, Esposito S. The role of infection in Kawasaki syndrome [J]. J Infect, 2013, 67(1):1-10.
[6] 孫 飛,顧再研,丁韌燁,等. CD14+CD16+單核細(xì)胞在川崎病患兒中的變化[J]. 中國(guó)病理生理雜志,2008, 24(10):2042-2043.
[7] Matsubara K, Fukaya T. The role of superantigens of group AStreptococcusandStaphylococcusaureusin Kawasaki disease[J]. Curr Opin Infect Dis, 2007, 20(3):298-303.
[8] Guerineau LR, Burriel EG, Nebot MS, et al. Disseminated staphylococcal infection resembling Kawasaki disease[J]. An Pediatr (Barc), 2012, 76(3):176-177.
[9] Chemli J, Hassayoun S, Ketata S, et al. Kawasaki disease andMycoplasmapneumoniaeinfection[J]. Med Mal Infect, 2010, 40(12):717-719.
[10] 鄭 巖. 61例不完全性川崎病與微小病毒B19感染[J]. 中國(guó)實(shí)驗(yàn)診斷學(xué), 2012, 16(3):439-441.
[11] Guggino G, Cimaz R, Accomando S,et al. Increased percentages of tumor necrosis factor-alpha+/interferon-gamma+T [corrected]lymphocytes and calprotectin+/tumor necrosis factor-alpha+monocytes in patients with acute Kawasaki disease [J]. Int J Immunopathol Pharmacol, 2012, 25(1):99-105.
[12] Kimura J, Takada H, Nomura A, et al.Th1 and Th2 cytokine production is suppressed at the level of transcriptional regulation in Kawasaki disease[J]. Clin Exp Immunol, 2004, 137(2):444-449.
[13] Peine M, Rausch S, Helmstetter C, et al. Stable T-bet+GATA3+Th1/Th2 hybrid cells ariseinvivo, can develop directly from naive precursors, and limit immunopathologic inflammation[J]. PLoS Biol, 2013, 11(8):e1001633.
[14] 常 健,魯繼榮,梁 東,等. 川崎病患兒急性期 Th1/Th2細(xì)胞功能狀態(tài)的研究[J]. 中華兒科雜志, 2006, 44(5):377-378.