王喆等
摘 要:本文通過考察甜菜堿和EDTA二鈉鹽對(duì)PHB提取收率的影響,確定了甜菜堿和EDTA二鈉鹽在甲烷氧化混合菌胞內(nèi)PHB提取工藝中的最優(yōu)用量。
關(guān)鍵詞:PHB;甜菜堿;EDTA二鈉鹽
PHB以其生物降解性、生物相容性、壓電性、光學(xué)活性以及在生物合成過程中可利用再生資源等特性,在藥學(xué)、醫(yī)學(xué)、農(nóng)業(yè)、電子等領(lǐng)域具有獨(dú)特而廣闊的應(yīng)用前景,但目前未能實(shí)現(xiàn)PHB的大規(guī)模工業(yè)生產(chǎn)[1,2]。本文通過考察甜菜堿和EDTA二鈉鹽對(duì)PHB提取收率的影響,確定甜菜堿和EDTA二鈉鹽在甲烷氧化混合菌胞內(nèi)PHB提取工藝中的最優(yōu)用量,提高收率,建立甲烷氧化混合菌胞內(nèi)PHB提取的新方法:表面活性劑(甜菜堿)-螯合物(EDTA二鈉鹽)提取法,探索簡單、無毒,無污染的新工藝提取PHB。
1 材料和方法
1.1 材料
混合菌群Methylococcus capsulatus HD6T從黑龍江省大慶油田富含沼氣地區(qū)的土壤中培養(yǎng)篩選獲得。
1.2 PHB的氯仿提取法
取發(fā)酵的菌液,4℃,9000r/min下離心10min,用蒸餾水洗滌2次,再次離心收集菌體,烘干至恒重。在菌體中加入濃度為80%甲醇水溶液攪拌, 60℃水浴1h。水浴后的菌體以轉(zhuǎn)速9000r/s,溫度4℃,離心15min。離心后收集細(xì)胞烘干。干細(xì)胞加入氯仿, 80℃水浴回流萃取1h。所得液體用分析濾紙進(jìn)行過濾,用氯仿洗3次,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)得到純化的PHB,用濃硫酸法測定含量。
1.3 濃硫酸法測定PHB含量
濃硫酸與PHB 100℃時(shí)水浴10min,濃硫酸與PHB在加熱時(shí)可以定量轉(zhuǎn)化為巴豆酸,巴豆酸在235nm處有一最大吸收峰值,通過紫外分光光度計(jì)測定OD235值確定PHB的量。
1.4 甜菜堿法提取PHB條件的優(yōu)化
表面活性劑甜菜堿(0.6-3mg),螯合物乙二胺四乙酸二鈉鹽即EDTA二鈉鹽(0-1mg),溶解于50ml去離子水中,用5mol/L的NaOH調(diào)節(jié)PH值至13,加入甲烷氧化混合菌干細(xì)胞,于50°C以1200rpm的轉(zhuǎn)速進(jìn)行細(xì)胞破壁處理20min,將離心得到的沉淀物質(zhì)用去離子水和丙酮各洗滌一次,于70°C恒溫干燥箱內(nèi)烘干,純化的PHB用濃硫酸法測定含量。
以同一批培養(yǎng)的甲烷氧化混合菌干細(xì)胞為實(shí)驗(yàn)材料,先通過較準(zhǔn)確的氯仿提取法提取PHB,再用甜菜堿法提取PHB,將甜菜堿法提取的PHB含量與氯仿法提取的PHB含量進(jìn)行比較,考察甜菜堿法提取PHB的收率,確定甜菜堿法最佳提取條件。
2 結(jié)果與討論
2.1 不同的甜菜堿對(duì)細(xì)胞干重比對(duì)PHB提取量的影響
離心收集細(xì)胞,放于70°C恒溫干燥箱內(nèi)干燥,將干燥后的細(xì)胞在此條件下反應(yīng):表面活性劑(甜菜堿)對(duì)細(xì)胞干重比分別為 0.03、0.06、0.1、0.15、0.2、0.3,螯合物(EDTA二鈉鹽)對(duì)干重比為0.1:1,加入去離子水,pH值調(diào)至13,于50°C下以1200rpm的轉(zhuǎn)速進(jìn)行細(xì)胞破壁處理20min,將離心得到的沉淀物質(zhì)用去離子水和丙酮各洗滌一次,于70°C恒溫干燥箱內(nèi)烘干。將烘干后得到的PHB與濃硫酸在100°C下水浴10min, 再測定OD235值,計(jì)算出PHB的含量,與氯仿法提取PHB的含量做比較,計(jì)算出提取收率。當(dāng)表面活性劑(甜菜堿)對(duì)細(xì)胞干重比為0.09:1時(shí),PHB的提取收率最大,為90.33%。
2.2 不同的EDTA二鈉鹽對(duì)細(xì)胞干重比對(duì)PHB提取量的影響
離心收集細(xì)胞,放于70°C恒溫干燥箱內(nèi)干燥,將干燥后的細(xì)胞在此條件下反應(yīng):表面活性劑(甜菜堿)對(duì)細(xì)胞干重比為0.1:1,螯合物(EDTA二鈉鹽)對(duì)干重比分別為0、0.02、0.04、0.06、0.08、0.1,加入去離子水,pH值調(diào)至13,于50 ° C下以1200rpm的轉(zhuǎn)速進(jìn)行細(xì)胞破壁處理20min,將離心得到的沉淀物質(zhì)用去離子水和丙酮各洗滌一次,于70°C恒溫干燥箱內(nèi)烘干。將烘干后得到的PHB與濃硫酸在100°C下水浴10min, 再測定OD235值,計(jì)算出PHB的含量,與氯仿法提取PHB的含量做比較,計(jì)算出提取收率。結(jié)果見圖1,當(dāng)螯合物(EDTA二鈉鹽)對(duì)干重比為0.08:1時(shí),PHB的提取收率最大,為96.22%。
3 結(jié)論
通過用傳統(tǒng)的氯仿提取法提取出的PHB含量為基準(zhǔn),采用 PHB含量相同的甲烷氧化混合菌干細(xì)胞為實(shí)驗(yàn)對(duì)象,以提取收率為指標(biāo),優(yōu)化了甜菜堿-EDTA二鈉鹽的提取條件。當(dāng)表面活性劑(甜菜堿)對(duì)干重比為 0.1:1,螯合物(EDTA二鈉鹽)對(duì)干重比為0.08:1時(shí),提取收率最高。以此優(yōu)化的甜菜堿和EDTA二鈉鹽用量,加入去離子水,pH值調(diào)至13,于50°C下以1200rpm的轉(zhuǎn)速進(jìn)行細(xì)胞破壁處理20min,將離心得到的沉淀物質(zhì)用去離子水和丙酮各洗滌一次,于70°C恒溫干燥箱內(nèi)烘干,得到了純化的PHB,從而建立了簡單、無毒,無污染的甲烷氧化混合菌胞內(nèi)PHB提取的新方法。
參考文獻(xiàn):
[1]Berger E, Ramsay B A, Ramsay J A, et al.PHB recovery by hypochlorite digestion of non-PHB biomass[J]. Biotechnology techniques, 1989,3(4):227-232.
[2]Ramsay J A, Berger E, Voyer R, et al. Extraction of poly-3-hydroxybutyrate using chlorinated solvents[J]. Biotechnol.Tech, 1994,(8):589-594.
[3]尹進(jìn),沈忠耀.利用噬菌體破細(xì)胞壁分離胞內(nèi)產(chǎn)物的展望[J].生物工程進(jìn)展,2000,20(6):9-13.
[4]Berger E., Ramsay B.A., Ramsay J.A., and Chavaric[J], Brotechnology Techniques, 1989, Vol.3, No.4. :227-232.