閻 婷 李海滔 趙明慧 蘇建新 董言德 李春曉 趙彤言
(軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院微生物流行病研究所,病原微生物生物安全國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 北京 100071)
白紋伊蚊Aedesalbopictus,嗜吸人血,是我國(guó)登革熱和登革出血熱的重要傳播媒介(安繼堯等,2003)。由于白紋伊蚊的孳生特點(diǎn),環(huán)境治理和化學(xué)防治常常難以控制蚊蟲(chóng)密度,近年來(lái),研究人員試圖從白紋伊蚊的生理行為方面尋找突破口,為發(fā)展新的防治方法奠定基礎(chǔ)。
蚊蟲(chóng)的很多行為,例如產(chǎn)卵、搜尋定位宿主、吸血等都依賴于嗅覺(jué)系統(tǒng)來(lái)完成(Takkenetal.,1999)。蚊蟲(chóng)通過(guò)嗅覺(jué)系統(tǒng)識(shí)別環(huán)境中的氣味分子,將化學(xué)信息編碼成電信號(hào),傳遞給腦部,從而引起行為反應(yīng)(李慧等,2010)。在蚊蟲(chóng)嗅覺(jué)系統(tǒng)中,主要包括氣味結(jié)合蛋白(Odorant binding protein,OBP)、氣味受體(Odorant receptor,OR)等多種嗅覺(jué)蛋白,其中氣味受體蛋白具有結(jié)合氣味分子的特性,已成為篩選蚊蟲(chóng)驅(qū)避劑或引誘劑的重要靶標(biāo)基因(徐煒,2009;李慧等,2010)。
二氧化碳(CO2)是人和動(dòng)物宿主呼出的主要?dú)怏w成分,也是蚊蟲(chóng)搜尋定位宿主的重要信息來(lái)源(Guerensteinetal., 2008; Hallemetal., 2008),目前基于該原理的CO2誘蚊燈等設(shè)備已普遍應(yīng)用于蚊蟲(chóng)種群密度調(diào)查等試驗(yàn),有研究證實(shí)CO2在一定的釋放范圍內(nèi),隨濃度升高,捕獲的蚊種及數(shù)量均有增加(Klineetal., 1990; Klineetal., 1991)。對(duì)黑腹果蠅(Joneetal., 2006)的研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)受體Gr21a和Gr63a共同表達(dá)時(shí)表現(xiàn)出對(duì)CO2的敏感性,二者缺一不可。對(duì)岡比亞按蚊Anophelesgambiae(Hilletal., 2002)和致倦庫(kù)蚊Culexquinquefasciatus(Turneretal., 2009)的研究發(fā)現(xiàn),與果蠅Gr21a和Gr63a同源的氣味受體基因,具有相似的表達(dá)方式,很可能也具有相同的功能(Hilletal., 2002)。如果有針對(duì)地研究與CO2相關(guān)的氣味受體,探索其分子機(jī)制,進(jìn)而干擾由CO2調(diào)節(jié)的蚊蟲(chóng)搜尋宿主的行為反應(yīng),將會(huì)大大降低蚊蟲(chóng)吸血及傳播疾病的概率。
本研究通過(guò)同源擴(kuò)增的方法,獲得白紋伊蚊OR21a基因片段,應(yīng)用定量PCR技術(shù)比較未吸血雌蚊、打斷吸血雌蚊、飽血雌蚊和雄蚊頭部中OR21a基因起始表達(dá)量的差異,為推斷OR21a基因的功能和進(jìn)一步闡明白紋伊蚊嗅覺(jué)感受系統(tǒng)的分子機(jī)制奠定基礎(chǔ)。
白紋伊蚊敏感株來(lái)源于軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院微生物流行病研究所媒介生物學(xué)和防治研究室,蚊蟲(chóng)養(yǎng)殖條件為:溫度(26±1)℃、相對(duì)濕度65%±5%、光照∶黑暗=14 h∶10 h,成蚊喂食8%糖水,羽化3~5 d的蚊蟲(chóng)用于實(shí)驗(yàn)。
1.2.1引物合成: 根據(jù)GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)中埃及伊蚊、致倦庫(kù)蚊和岡比亞按蚊的OR21a基因序列,使用Primer premier 6.0軟件,在相似度高的區(qū)域設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物。上游引物OR1:5′- ATGATTCACA(G/C)(C/T/A)CAGATGGA -3′;下游引物OR2:′- GGTCA(A/G)(C/T)TTGAACTGCATCA -3′;引物由北京賽百盛生物技術(shù)有限公司合成。
1.2.2白紋伊蚊OR21a基因的擴(kuò)增: 使用總RNA提取試劑盒(吉百特公司,DR202)提取白紋伊蚊5只雌蚊的總RNA,50 μL DEPC水溶解。取7 μL總RNA溶液,根據(jù)全式金公司 TransScript All-in-One First-Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR(One-Step gDNA Removal)試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,得到cDNA溶液20 μL。PCR反應(yīng)體系總體積50 μL,包括Premix Taq(loading dye mix) 25 μL,模板cDNA 1.0 μL, 上游引物(20 μmol/L)1.0 μL, 下游引物(20 μmol/L)1.0 μL, ddH2O 22 μL。反應(yīng)條件為94 ℃, 3 min;94 ℃ 45 s,5 5℃ 45 s,72 ℃ 30 s,40個(gè)循環(huán);72 ℃, 7 min;4 ℃保存。取25 μL PCR產(chǎn)物,1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)(120 V 30 min)后,對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行回收及純化。
1.2.3PCR產(chǎn)物的克隆、鑒定和測(cè)序: 將純化的DNA片段和pMD18-T載體連接,轉(zhuǎn)入感受態(tài)大腸桿菌DH5α,藍(lán)白斑篩選后,對(duì)陽(yáng)性克隆測(cè)序,將測(cè)序結(jié)果與NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中的已知物種核酸序列進(jìn)行比對(duì)。
1.3.1白紋伊蚊頭部cDNA 的獲得: 用手術(shù)刀切下白紋伊蚊未吸血雌蚊、雄蚊、打斷吸血雌蚊和飽血雌蚊的頭部,每1.5 mL冰上預(yù)冷的離心管中分別放入5只未吸血雌蚊、打斷吸血雌蚊、飽血雌蚊和雄蚊頭部。提取白紋伊蚊頭部總RNA,逆轉(zhuǎn)錄后-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.2設(shè)計(jì)引物: 根據(jù)簡(jiǎn)并引物擴(kuò)增得到的氣味受體基因測(cè)序結(jié)果,使用Primer premier 6.0 軟件,設(shè)計(jì)特異引物,引物序列:上游為:5′-TCTTCACCACAATTATCGCCAC-3′,下游為:5′-GATGGCCACCAGAAACATTTC-3′。管家基因β-actin的引物序列參考文獻(xiàn)(閻婷等,2010),引物由賽百盛生物技術(shù)有限公司合成。
1.3.3白蚊伊蚊OR21a和β-actin基因的擴(kuò)增: PCR反應(yīng)體系同(1.2.2),反應(yīng)條件為94 ℃, 3 min;94 ℃ 45 s,60 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,40個(gè)循環(huán);72 ℃, 7 min;4 ℃保存。
1.3.4PCR 產(chǎn)物的克隆、測(cè)序和鑒定: 分別將兩條基因PCR擴(kuò)增產(chǎn)物與pMD 18-T載體連接,藍(lán)白斑篩選出的陽(yáng)性克隆經(jīng)檢測(cè)后送公司測(cè)序,測(cè)序結(jié)果進(jìn)行BLAST比對(duì)鑒定。
1.3.5制備OR21a和β-actin基因標(biāo)準(zhǔn)品,構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線: 按照天根公司高純度質(zhì)粒試劑盒說(shuō)明書(shū)提取重組質(zhì)粒,測(cè)定質(zhì)粒濃度,計(jì)算拷貝數(shù),按10倍梯度逐級(jí)稀釋制備標(biāo)準(zhǔn)品,范圍為103~108copies/μL。反應(yīng)體系總體積25 μL,包括Power SYBR Green PCR Master 2×Mix 12.5 μL,模板cDNA 1.0 μL, 上游引物(10 μmol/L)1.0 μL, 下游引物(10 μmol/L)1.0 μL, ddH2O 9.5 μL。反應(yīng)條件為50 ℃ 2 min,95 ℃ 10 min;95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min,進(jìn)行40個(gè)循環(huán),熔解曲線反應(yīng)條件為:95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min,95 ℃ 15 s。
1.3.6白紋伊蚊頭部OR21a和β-actin基因的定量分析: 構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線后,用β-actin基因的拷貝數(shù)對(duì)OR21a基因的拷貝數(shù)進(jìn)行校正,比較OR21a基因在白紋伊蚊未吸血雌蚊、打斷吸血雌蚊、飽血雌蚊和雄蚊頭部表達(dá)量的差異倍數(shù)。
使用1.3.2所設(shè)計(jì)的引物,通過(guò)擴(kuò)增檢測(cè)OR21a基因是否在白紋伊蚊1~2齡幼蟲(chóng)、3~4齡幼蟲(chóng)、蛹和成蚊頭部中分布。
圖1 白紋伊蚊OR21a和埃及伊蚊GR21a氨基酸序列及比較Fig. 1 Amino acid sequences of of AealOR21a and AedeGR21a and comparison within them方框:差異的氨基酸;Box: the difference of amino acids.
圖2 白紋伊蚊基因擴(kuò)增產(chǎn)物電泳圖Fig. 2 Electrophoresis of PCR products of Ae.a(chǎn)lbopictus genes fragmentM:DL2000 marker;1:β-actin基因擴(kuò)增條帶;2:OR21a基因擴(kuò)增條帶。M: DL2000; 1: β-actin amplification band; 2: OR21a amplification band.
以白蚊伊蚊cDNA為模板,設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物,經(jīng)PCR擴(kuò)增克隆測(cè)序后,得到白蚊伊蚊OR21a基因測(cè)序(GenBank登陸號(hào)KM056288),基因片段長(zhǎng)度為875 bp,預(yù)測(cè)編碼291個(gè)氨基酸片段。將測(cè)序結(jié)果在NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行核酸比對(duì),發(fā)現(xiàn)該基因與其他蚊種OR基因的相似性大于75%。與埃及伊蚊GR21a氨基酸同源性最高,大于90%(圖1),將克隆得到的該基因命名為OR21a。
2.2.1白紋伊蚊OR21a基因與管家基因β-actin的擴(kuò)增結(jié)果(圖2):以白紋伊蚊未吸血雌蚊cDNA為模板,特異性引物擴(kuò)增白紋伊蚊OR21a、β-actin片段大小分別為248、194 bp,將PCR產(chǎn)物直接送往測(cè)序公司進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序結(jié)果完全與預(yù)期結(jié)果相符。
2.2.2標(biāo)準(zhǔn)曲線和熔解曲線的制作(圖3~6):白紋伊蚊OR21a和β-actin重組質(zhì)粒的濃度和OD比值分別為:370 μg/mL, A260/280=1.83;350 μg/mL,A260/280=1.80。將質(zhì)粒濃度換算成拷貝數(shù)后, 10倍濃度稀釋用于制作標(biāo)準(zhǔn)曲線和熔解曲線,每個(gè)反應(yīng)重復(fù)3次。從標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率可知OR21a和β-actin基因的擴(kuò)增效率較高,并且熔解曲線表明OR21a和β-actin基因都不存在非特異性擴(kuò)增。
圖3 β-actin定量PCR的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.3 Standard curve of β-actin for real-time PCR
2.2.3OR21a基因表達(dá)量的定量分析結(jié)果:白紋伊蚊未吸血雌蚊、打斷吸血雌蚊、飽血雌蚊和雄蚊頭部中OR21a基因拷貝數(shù)進(jìn)行定量分析,并比較雌蚊吸血前后和雌雄蚊頭部OR基因的表達(dá)差異倍數(shù),結(jié)果見(jiàn)表1和圖7。
表1 OR21a基因在白蚊伊蚊未吸血雌蚊、打斷吸血雌蚊、飽血雌蚊和雄蚊頭部的表達(dá)量Tab. 1 The OR21a expression level in the heads of non-feeding female, feeding-interrupted females, engorged female and male of Ae. albopictus
圖4 β-actin實(shí)時(shí)定量PCR熔解曲線Fig.4 Melting curve of β-actin for real-time PCR
圖5 OR21a實(shí)時(shí)定量PCR的標(biāo)準(zhǔn)曲線制作圖Fig. 5 Standard curve of OR21a for real-time PCR
圖6 OR21a實(shí)時(shí)定量PCR熔解曲線Fig. 6 Melting curve of OR21a for real-time PCR
圖7 OR21a基因差異表達(dá)倍數(shù)Fig. 7 The expression ratio of OR21a genes NF: 未吸血雌蚊 Non-feeding female; BIF: 打斷吸血雌蚊 Feeding-interrupted female; BF: 飽血雌蚊Engorged female; M: 雄蚊 Male.* 有顯著性差異,P<0.05。* Significant differences,P<0.05.
OR21a基因在未吸血雌蚊和打斷吸血雌蚊頭部表達(dá)沒(méi)有顯著性差異,但表達(dá)量有下降的趨勢(shì);OR21a在未吸血雌蚊和雄蚊頭部和未吸血雌蚊和飽血雌蚊頭部之間表達(dá)都存在顯著性差異。其中白紋伊蚊OR21a基因在未吸血雌蚊頭部表達(dá)量最高,飽血雌蚊頭部表達(dá)量最低,而在雄蚊頭部的表達(dá)量介于打斷吸血雌蚊和飽血雌蚊之間。
從圖8上可以看出,OR21a基因在白紋伊蚊1~2齡幼蟲(chóng)、3~4齡幼蟲(chóng)、蛹、成蚊頭部中均有分布。
圖8 白紋伊蚊OR21a在幼蟲(chóng)、蛹、成蚊頭部的PCR結(jié)果Fig.8 Electrophoresis of PCR products of OR21a genes in the larvae, pupae, and head of adult femaleM:DL2000 marker;1: Or21a在1-2齡幼蟲(chóng)擴(kuò)增條帶;2:Or21a在3~4齡幼蟲(chóng)擴(kuò)增條帶;3:Or21a在蛹擴(kuò)增條帶;4:Or21a在成蚊頭部擴(kuò)增條帶。M: DL2000; 1: OR21a amplification band of first- and second-instar larvae; 2: OR21a amplification band of third- and fourth-instar larvae; 3: OR21a amplification band of pupae; 4: OR21a amplification band of female head.
研究已證實(shí)蚊蟲(chóng)主要依靠嗅覺(jué)系統(tǒng)來(lái)完成定位宿主、吸血、產(chǎn)卵等行為,對(duì)蚊蟲(chóng)嗅覺(jué)系統(tǒng)的研究已成為發(fā)展蚊蟲(chóng)防治方法的新方向,但到目前為止蚊蟲(chóng)嗅覺(jué)具體的分子機(jī)理還知之甚少。岡比亞按蚊氣味受體的功能研究發(fā)現(xiàn),一些氣味受體會(huì)對(duì)相應(yīng)的氣味物質(zhì)產(chǎn)生較強(qiáng)烈的反應(yīng),同時(shí)某種氣味物質(zhì)也會(huì)引起一種或多種氣味受體的反應(yīng),可見(jiàn)氣味物質(zhì)和氣味受體之間一定存在特殊的信號(hào)傳遞通道來(lái)控制蚊蟲(chóng)的行為(Careyetal., 2010)。蚊蟲(chóng)氣味受體數(shù)量普遍較多(Hilletal., 2002; Bohbotetal., 2007),其中已知致倦庫(kù)蚊擁有個(gè)數(shù)最多,為130個(gè)(Xuetal., 2013),氣味受體與其他嗅覺(jué)蛋白相互合作、共同發(fā)揮作用,可見(jiàn)蚊蟲(chóng)的嗅覺(jué)系統(tǒng)是一個(gè)相當(dāng)敏感、精細(xì)且可調(diào)節(jié)的系統(tǒng),本研究嘗試有針對(duì)性地研究與感知CO2緊密相關(guān)的、可能在白蚊伊蚊搜尋宿主中起重要作用的氣味受體基因,希望為蚊蟲(chóng)嗅覺(jué)機(jī)理的研究及治奠定基礎(chǔ)。
分布結(jié)果表明,OR21a在白蚊伊蚊的各個(gè)生長(zhǎng)階段(幼蟲(chóng)、蛹及成蚊)均有表達(dá),與果蠅Gr21a和Gr63a的表達(dá)方式相同(Jonesetal., 2006),目前對(duì)OR21a在蚊蟲(chóng)幼蟲(chóng)及蛹階段表達(dá)所起的作用還需進(jìn)一步的研究。對(duì)果蠅的研究發(fā)現(xiàn),1-乙醇和2,3-丁二酮通過(guò)作用于Gr21a和Gr63a受體,抑制神經(jīng)元對(duì)CO2氣體的電生理反應(yīng),致倦庫(kù)蚊則不同, 1-乙醇和1-丁醛能抑制神經(jīng)元的生理反應(yīng),而2,3-丁二酮沒(méi)有抑制作用(Turneretal., 2009)。可見(jiàn),雙翅目昆蟲(chóng)在長(zhǎng)期不同的進(jìn)化過(guò)程中,依循適者生存的原則,雖然屬于同源基因,但分子調(diào)節(jié)機(jī)制發(fā)生了相應(yīng)的改變。
本研究克隆得到白紋伊蚊嗅覺(jué)感受機(jī)制中很可能與CO2相關(guān)的氣味受體基因OR21a,通過(guò)定量分析得知白蚊伊蚊OR21a在未吸血雌蚊、雄蚊、打斷吸血雌蚊、飽血雌蚊頭部的表達(dá)量存在差異,這說(shuō)明蚊蟲(chóng)會(huì)根據(jù)不同的生理需求調(diào)整OR21a的表達(dá)量,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)表明OR21a在蚊蟲(chóng)頭部的表達(dá)量從高至低依次為未吸血雌蚊、打斷吸血雌蚊、雄蚊和飽血雌蚊,可見(jiàn)蚊蟲(chóng)吸血后OR21a表達(dá)量呈降低趨勢(shì),有可能由于吸血后蚊蟲(chóng)生理需求發(fā)生改變,對(duì)搜尋宿主的需求降低,進(jìn)而蚊蟲(chóng)對(duì)環(huán)境中CO2氣體的敏感度降低。在日后的研究中,可以嘗試采用RNAi技術(shù),觀察白蚊伊蚊OR21a被部分或全部干擾后蚊蟲(chóng)的行為反應(yīng),尤其是對(duì)宿主的識(shí)別能力,進(jìn)一步確認(rèn)OR21a的功能,為防治蟲(chóng)媒病提供新的思路。
寄生蟲(chóng)與醫(yī)學(xué)昆蟲(chóng)學(xué)報(bào)2014年2期