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應(yīng)用Kappa法檢驗(yàn)IHA和ELISA在檢測(cè)豬瘟抗體中的一致性

2015-01-03 08:22錢昌銀詹松鶴朱良強(qiáng)
中國(guó)動(dòng)物檢疫 2015年2期
關(guān)鍵詞:置信區(qū)間一致性豬瘟

劉 華,錢昌銀,詹松鶴,朱良強(qiáng)

(1.安徽省動(dòng)物疫病預(yù)防與控制中心,安徽合肥 230096;2.合肥市動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心,安徽合肥 230096)

應(yīng)用Kappa法檢驗(yàn)IHA和ELISA在檢測(cè)豬瘟抗體中的一致性

劉 華1,錢昌銀2,詹松鶴1,朱良強(qiáng)1

(1.安徽省動(dòng)物疫病預(yù)防與控制中心,安徽合肥 230096;2.合肥市動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心,安徽合肥 230096)

[目的] 比較IHA和 ELISA 2種基層使用較廣泛的豬瘟抗體檢測(cè)試劑盒檢測(cè)結(jié)果的一致性。[方法]用產(chǎn)品A(IHA)和產(chǎn)品B(ELISA)對(duì)237份豬血清進(jìn)行抗體檢測(cè),分別計(jì)算陽(yáng)性率、陽(yáng)性一致性、陰性一致性、符合率,并進(jìn)行Kappa檢驗(yàn)。[結(jié)果] 產(chǎn)品B檢測(cè)的陽(yáng)性率(73.8%)高于A(67.1%),且有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(p<0.01)。2種試劑盒共同檢出128份豬瘟抗體陽(yáng)性和31份陰性,陽(yáng)性一致性為80.5%(95%置信區(qū)間:74.3%-86.7%),陰性一致性為39.7%(95%置信區(qū)間:28.9%-50.6%),符合率67.1%(95%置信區(qū)間:61.1%-73.1%);Kappa 值為0.214(95%置信區(qū)間:0.088-0.339)。[結(jié)論] 2種試劑盒的檢測(cè)結(jié)果陽(yáng)性率有差異,結(jié)果一致性強(qiáng)度為弱。

豬瘟;抗體;酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn);正向間接血凝試驗(yàn);Kappa檢驗(yàn)

豬瘟是由豬瘟病毒感染引起的豬急性、熱性、高致死性傳染病,對(duì)養(yǎng)豬業(yè)危害極大,是我國(guó)規(guī)定強(qiáng)制免疫的重大動(dòng)物疫病之一,為科學(xué)評(píng)價(jià)其免疫效果,每年要求對(duì)其進(jìn)行抗體監(jiān)測(cè)。豬瘟抗體檢測(cè)方法較多,正向間接血凝試驗(yàn)由于操作簡(jiǎn)單、不需要特殊設(shè)備,在基層被廣泛采用;酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)能迅速檢測(cè)大量樣品,而且還具有敏感、特異等特點(diǎn)[1]。為比較兩種方法的一致性,筆者對(duì)相同的豬血清樣品分別進(jìn)行檢測(cè),現(xiàn)將結(jié)果報(bào)告如下。

1 材料與方法

1.1 豬血清

237份豬血清,為本實(shí)驗(yàn)室保存的部分春季集中監(jiān)測(cè)樣品。

1.2 檢測(cè)試劑

豬瘟間接血凝抗體檢測(cè)試劑盒(批號(hào):2014070105);豬瘟抗體液相阻斷ELISA檢測(cè)試劑盒(IDEXX,批號(hào):49-40182)。

1.3 檢測(cè)方法

1.3.1 產(chǎn)品A(IHA法)。在96孔微量反應(yīng)板中每孔加入50μL稀釋液;取待檢血清加入第1孔,混勻,吸出50L轉(zhuǎn)入第2孔,混勻后吸出50μL至第3孔,依次倍比稀釋至第12孔,最后吸出的50L棄去。依照此法稀釋其余血清和陽(yáng)性對(duì)照;陰性對(duì)照血清依上述方法稀釋到第3孔,5~6孔為稀釋液對(duì)照。稀釋后,各孔加入血凝抗原25μL,震蕩混勻后覆膜,室溫靜置1.5~2h觀察結(jié)果。判定標(biāo)準(zhǔn)為:以出現(xiàn)50%紅細(xì)胞凝集的血清最大稀釋度為該血清的抗體效價(jià),抗體效價(jià)達(dá)1:16的為抗體陽(yáng)性。

1.3.2 產(chǎn)品B(ELISA法)。在ELISA反應(yīng)板上每孔加入50μL樣品稀釋液,對(duì)照孔分別加入50μL陽(yáng)性血清和陰性血清,其余各孔加50μL待檢血清。振蕩混勻后覆膜,室溫靜置2h或過夜;充分甩去反應(yīng)板中的液體,并用稀釋后的洗滌液洗板3次,最后一次拍干;加入100μL辣根過氧化物酶標(biāo)記的豬瘟病毒的酶標(biāo)抗體加入各孔,覆膜室溫孵育30min,洗板3次后,每孔加入100μL底物溶液,室溫避光孵育10min,每孔加入100μL終止液,在450nm波長(zhǎng)下測(cè)吸光度值。判定標(biāo)準(zhǔn)為:據(jù)OD450nm值計(jì)算阻斷率,阻斷率大于或等于40%為陽(yáng)性,小于或等于30%為陰性。

1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

采用SPSS 20.0 統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)兩種試劑盒檢測(cè)結(jié)果的陽(yáng)性率進(jìn)行χ2檢驗(yàn);結(jié)果一致性進(jìn)行Kappa檢驗(yàn)。Kappa值<0,一致性強(qiáng)度極差;0~0.2,微弱;0.21~0.4,弱;0.41~0.6,中度;0.61~0.8,高度;0.81~1.0,極強(qiáng)[2]。

2 結(jié)果

IHA和ELISA同時(shí)檢測(cè)237份豬血清樣本的結(jié)果比較見表1。

表1 2種方法檢測(cè)豬瘟抗體的結(jié)果比較

兩種試劑盒共同檢出128份陽(yáng)性,陽(yáng)性率54.0%。IHA單獨(dú)檢出159份陽(yáng)性,陽(yáng)性率67.1%。ELISA單獨(dú)檢出175份陽(yáng)性,陽(yáng)性率73.8%,略高于IHA(χ2=11.11,p<0.01)。二者的陽(yáng)性結(jié)果一致性為80.5%(95%置信區(qū)間:74.3%-86.7%),陰性結(jié)果一致性為39.7%(95%置信區(qū)間:28.9%-50.6%),總體樣本結(jié)果的一致率為67.1%(95%置信區(qū)間:61.1%-73.1%)。經(jīng)Kappa一致性檢驗(yàn),Kappa值為0.214(95%置信區(qū)間:0.088-0.339),表明兩種產(chǎn)品的一致性為弱。

3 分析與討論

在基層獸醫(yī)實(shí)驗(yàn)室工作中,如何選擇豬瘟抗體檢測(cè)試劑盒往往困惑著檢測(cè)人員。判斷試驗(yàn)或試劑好壞的標(biāo)準(zhǔn)通常有兩個(gè)指標(biāo),即敏感性(Se)和特異性(Sp)。國(guó)內(nèi)一般參考農(nóng)業(yè)部第 683 號(hào)公告有關(guān)規(guī)定進(jìn)行試劑盒敏感性和特異性的評(píng)價(jià)[3],但基層獸醫(yī)實(shí)驗(yàn)室無(wú)法獲取金標(biāo)準(zhǔn)和標(biāo)準(zhǔn)血清,因此通過敏感性和特異性判斷試劑的好壞存在困難。Kappa一致性檢驗(yàn)方法是Cohen在1960年首先提出的,旨在評(píng)估不同檢測(cè)方法的一致性,近年來(lái)在醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)、流行病學(xué)及臨床資料可靠性考察等方面的應(yīng)用較為廣泛[4-6],但在獸醫(yī)實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)中應(yīng)用極少[7]。Kappa值無(wú)法判定哪個(gè)試劑盒或方法較好,但Kappa值越大,表明兩種結(jié)果可靠程度越高[4]。本次試驗(yàn)的結(jié)果一致性為弱,提示IHA和ELISA至少有一種結(jié)果不可靠。IHA和ELISA試驗(yàn)各有其優(yōu)劣勢(shì),因此建議基層在開展豬瘟抗體檢測(cè)時(shí),根據(jù)實(shí)驗(yàn)室儀器和經(jīng)費(fèi)配套的情況和結(jié)果可靠性慎重選擇。

應(yīng)用Kappa一致性檢驗(yàn)分析不同豬瘟抗體檢測(cè)試劑盒檢測(cè)結(jié)果一致性,比國(guó)內(nèi)同類研究更加科學(xué)[8-11],為科學(xué)選擇試劑提供了重要的參考依據(jù)。另外,在獸醫(yī)實(shí)驗(yàn)室工作中,還常遇到評(píng)估兩種檢測(cè)方法、兩名檢驗(yàn)人員、兩種設(shè)備檢測(cè)結(jié)果的符合程度及用同一種方法進(jìn)行多次測(cè)定的結(jié)果能否重現(xiàn)的問題,這些均可以用Kappa一致性檢驗(yàn)進(jìn)行評(píng)價(jià),因而應(yīng)用范圍較廣泛。筆者認(rèn)為,在獸醫(yī)實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)工作中,應(yīng)重視和推廣Kappa一致性檢驗(yàn),為評(píng)價(jià)試驗(yàn)結(jié)果提供更加科學(xué)的依據(jù)。

[1] 孫海燕,王在時(shí),戴志紅,等.豬瘟抗體檢測(cè)技術(shù)的研究現(xiàn)狀及發(fā)展趨勢(shì)[J].中國(guó)獸藥雜志,2009,43(5):40-44.

[2] Landis J R,Koch G G. The measurement of observer agreement for Gategorical data[J].Biometrics,1977,33: 159-174.

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[11]劉秋,王前光,蔣國(guó)才.正向間接血凝法與阻斷抗體ELISA法檢測(cè)豬瘟抗體結(jié)果對(duì)比分析[J].黑龍江畜牧獸醫(yī):綜合版,2014(1):67-68.

Liu Hua1,Qian Changyin2,Zhan Songhe1,Zhu Liangqiang1
(1.Anhui Center for Animal Disease Control and Prevention,Hefei,Anhui 230096; 2.Hefei Center for Animal Disease Control and Prevention,Hefei,Anhui 230096)

Application of Kappa-test for Evaluation of IHA and ELISA in CSFV Antibody Detection

[Objective]To compare the consistency between the 2 CSFV antibody kits(IHA and ELISA)widely used in veterinary labs at grassroots level in China. [Method]237 swine serum samples were tested by kit A(IHA)and kit B(ELISA). The positive rates,positive and negative consistence rates,coincidence rate were calculated separately,and the consistency was evaluated by Kappa test. [Results]The positive rate of kit B(73.8%)was higher than kit A(67.1%)and there was a statistically signifi cant difference(p<0.01).128 positive and 31 negative were detected by the 2 kits together,the positive consistency rate was 80.5%(95%CI=74.3%-86.7%)and the negative consistency rate was 39.7%(95%CI=28.9%-50.6%),the coincidence rate was 67.1%(95%CI=61.1%-73.1%).The Kappa value was 0.214(95%CI= 0.088-0.339). [Conclusion]The results showed that there was a signifi cant difference between the two testing positive rates and a weak consistency between the two kits.

classical swine fever;antibody;ELISA;IHA;Kappa-test

S852.651

:A

:1005-944X(2015)02-0069-03

朱良強(qiáng)

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