溫 昱 李 彬
1.中國醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院組織胚胎學(xué)教研室,遼寧沈陽110122;2.中國醫(yī)科大學(xué)附屬盛京醫(yī)院運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)教研室,遼寧沈陽110022
體外誘導(dǎo)小鼠骨髓CD45-細(xì)胞向竇房結(jié)起搏樣細(xì)胞定向分化
溫 昱1李 彬2
1.中國醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院組織胚胎學(xué)教研室,遼寧沈陽110122;2.中國醫(yī)科大學(xué)附屬盛京醫(yī)院運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)教研室,遼寧沈陽110022
目的探討體外誘導(dǎo)小鼠骨髓CD45-細(xì)胞向竇房結(jié)起搏樣細(xì)胞定向分化的方法。方法免疫磁珠分選小鼠骨髓CD45-細(xì)胞,體外培養(yǎng)擴(kuò)增后,采用添加了5-氮胞苷和小鼠竇房結(jié)組織培養(yǎng)上清液的誘導(dǎo)培養(yǎng)基培養(yǎng),經(jīng)免疫熒光染色檢測(cè)起搏樣細(xì)胞標(biāo)志物神經(jīng)絲蛋白-160(NF-160)和超級(jí)化激活環(huán)核苷酸門控陽離子通道(HCN)4表達(dá),并采用qRT-PCR定量檢測(cè)起搏基因NF-160、HCN4和HCN2表達(dá)。結(jié)果小鼠骨髓CD45-細(xì)胞經(jīng)體外誘導(dǎo)培養(yǎng)后得到的分化細(xì)胞表達(dá)NF-160和HCN4;qRT-PCR分析顯示,與體外培養(yǎng)的小鼠竇房結(jié)細(xì)胞比較,分化起搏樣細(xì)胞NF-160和HCN4的表達(dá)升高,HCN2的表達(dá)降低。結(jié)論體外培養(yǎng)能夠?qū)⑿∈蠊撬鐲D45-細(xì)胞誘導(dǎo)分化為竇房結(jié)起搏樣細(xì)胞,為構(gòu)建生物起搏器種子細(xì)胞提供選擇。
起搏樣細(xì)胞曰CD45曰HCN4曰NF-160曰竇房結(jié)
心律失常是常見病,嚴(yán)重將危及患者生命。目前,對(duì)于嚴(yán)重心律失常、病態(tài)竇房結(jié)綜合征患者,安裝心臟起搏器是理想的治療方法[1-3]。隨著生物學(xué)及干細(xì)胞研究的發(fā)展,利用其相關(guān)技術(shù)逐步構(gòu)建生物起搏器,對(duì)受損心傳導(dǎo)系統(tǒng)的組織進(jìn)行修復(fù)或替代,尤其是竇房結(jié)功能重建,可以使心臟的起搏和傳導(dǎo)功能得以修復(fù)[4-5]。構(gòu)建生物起搏器的種子細(xì)胞目前以干細(xì)胞為主[6-7]。由于骨髓源干細(xì)胞具有多向分化潛能,可自體獲得,并能夠在體外擴(kuò)增,是比較理想的種子細(xì)胞,所以本研究采用5-氮胞苷聯(lián)合竇房結(jié)細(xì)胞培養(yǎng)上清液體外誘導(dǎo)培養(yǎng)骨髓CD45-細(xì)胞,探討其分化為起搏樣細(xì)胞的可能性。研究周期為2014年8月~2015年1月,旨在為臨床因竇房結(jié)起搏細(xì)胞數(shù)量減少或功能衰退造成的心傳導(dǎo)系統(tǒng)功能障礙、嚴(yán)重心律失常等疾病的替代治療以及生物起搏技術(shù)的應(yīng)用奠定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物堯儀器和試劑
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物選取昆明小鼠10只,雌雄不限,4~5周齡,體重20~30 g,常規(guī)飼養(yǎng),健康。
1.1.2 主要儀器和試劑低糖DMEM和胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購自Hyclone;DMEM-F12購自Gibco;5-氮胞苷(5-azacytidine)購自Sigma;兔源HCN4一抗、小鼠來源NF-160一抗和TRITC標(biāo)記山羊抗兔IgG購自Abcam;FITC標(biāo)記山羊抗小鼠IgG和DAPI購自武漢博士德生物工程有限公司;RNA extraction kit購自Qiagen;PCR引物購自生工生物工程(上海)有限公司;SYBR Green Real Time-PCR Master Mix購自Invitrogen。免疫磁珠分選系統(tǒng)(Miltenyi Biotec),激光共聚焦顯微鏡(NikonEZ-C1),PCR儀(Roche Light Cycler?480)。
1.2 小鼠骨髓CD45-細(xì)胞純化堯擴(kuò)增
隨機(jī)取5只小鼠經(jīng)2.5%戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉后,70%乙醇浸泡30 min,超凈臺(tái)無菌條件下取出小鼠股骨和脛骨數(shù)根,用低糖DMEM反復(fù)沖洗髓腔,收集沖洗液,經(jīng)400目尼龍篩網(wǎng)過濾,1000 r/min離心6 min,棄上清。采用添加了10%FBS的低糖DMEM培養(yǎng)基重新混懸細(xì)胞,37℃,5%CO2,飽和濕度培養(yǎng),1 d后換液,棄去未貼壁細(xì)胞,以后每2天換液1次。細(xì)胞長至80%融合時(shí),PBS洗滌2次,0.25%胰蛋白酶消化,1000 r/min離心5 min,棄上清,10%FBS的低糖DMEM培養(yǎng)基重新混懸,以1∶3傳代。培養(yǎng)大約1個(gè)月后,采用免疫磁珠分選系統(tǒng),選取CD45抗體,按照說明書操作,使細(xì)胞通過分選柱,收集CD45-細(xì)胞。采用添加了10%FBS的低糖DMEM培養(yǎng)基,37℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)。
1.3 小鼠竇房結(jié)組織分離堯培養(yǎng)袁收集培養(yǎng)基上清液
余下5只小鼠經(jīng)2.5%戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉后,70%乙醇浸泡30 min,超凈臺(tái)無菌條件下取出心臟,解剖顯微鏡下將心臟界嵴中部靜脈竇側(cè)、前腔靜脈根部0.3 cm×0.3 cm×0.3 cm大小組織塊,剪成1 mm左右大小的碎塊,添加0.07%胰蛋白酶消化,經(jīng)篩網(wǎng)過濾后,1000 r/min離心5 min,加入添加了20% FBS的DMEM-F12培養(yǎng)基,37℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)4 h,吸出未貼壁細(xì)胞重置于6孔板中,繼續(xù)培養(yǎng)。每天半量換液。
1.4 條件培養(yǎng)基誘導(dǎo)分化骨髓CD45-細(xì)胞
收集竇房結(jié)細(xì)胞培養(yǎng)后的培養(yǎng)液,經(jīng)1000 r/min離心10 min,取上清與10%FBS的低糖DMEM培養(yǎng)基1∶1混合,并添加10 mmol/L的5-氮胞苷,作為CD45-細(xì)胞的條件培養(yǎng)基。CD45-細(xì)胞經(jīng)條件培養(yǎng)基培養(yǎng)后2~3周,選取生長穩(wěn)定細(xì)胞,進(jìn)行檢測(cè)。
1.5 免疫熒光檢測(cè)分化細(xì)胞起搏標(biāo)志物表達(dá)
將生長良好的分化細(xì)胞接種至8孔Chamber中,培養(yǎng)過夜,常規(guī)免疫熒光染色,一抗兔HCN4(1∶200)、小鼠NF-160(1∶300),二抗TRITC標(biāo)記山羊抗兔IgG(1∶500),F(xiàn)ITC標(biāo)記山羊抗小鼠(1∶500)。激光共聚焦顯微鏡下觀察,拍照。
1.6 qRT-PCR檢測(cè)誘導(dǎo)分化細(xì)胞起搏基因表達(dá)
選擇生長良好的分化起搏樣細(xì)胞和小鼠竇房結(jié)細(xì)胞作為對(duì)照,采用RNA extraction kit提取兩種細(xì)胞的總RNA,稀釋濃度為200 ng/μL,然后逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,再采用SYBR Green Real Time-PCR Master Mix方法檢測(cè)小鼠NF-160、HCN4和HCN2基因表達(dá),選取GAPDH作為內(nèi)參,引物序列見表1。NF-160、HCN4和HCN2基因表達(dá)結(jié)果以倍數(shù)變化表示。設(shè)立對(duì)照以確定無DNA污染。反應(yīng)體系為20 μL,其中cDNA模板1 μL,Nuclease-free water 8.2 μL,NF-160、HCN4、HCN2基因引物序列上游引物和下游引物各0.4 μL,2X SYBR Green Master Mix 10 μL。PCR反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性3 min,進(jìn)行35個(gè)循環(huán)(94℃30 s,52℃30 s,72℃30 s),然后72℃再延伸10 min,4℃保存。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
表1 SBYR Green法qRT-PCR引物
2.1 小鼠骨髓CD45-細(xì)胞及誘導(dǎo)培養(yǎng)基誘導(dǎo)分化細(xì)胞
CD45-細(xì)胞貼壁后多為短梭形、三角形、多邊形,排列無規(guī)律,細(xì)胞體積較小,分散生長(圖1A)。生長良好的CD45-細(xì)胞更換為條件培養(yǎng)基后,細(xì)胞形態(tài)發(fā)生明顯變化,體積變大,大小比較一致,多呈長梭形,向同一方向生長(圖1B)。
2.2 分化細(xì)胞起搏標(biāo)志物表達(dá)
經(jīng)免疫熒光染色后,發(fā)現(xiàn)絕大多數(shù)分化細(xì)胞NF-160和起搏離子通道HCN4表達(dá)陽性,可見胞質(zhì)內(nèi)呈絲狀表達(dá)的NF-160和HCN4,胞核未著色(圖2,見封三)。
圖1 免疫磁珠分選小鼠骨髓CD45-細(xì)胞及誘導(dǎo)培養(yǎng)基誘導(dǎo)分化細(xì)胞(標(biāo)尺:100 μm)
2.3 誘導(dǎo)分化起搏樣細(xì)胞起搏基因qRT-PCR檢測(cè)
與培養(yǎng)的竇房結(jié)細(xì)胞比較,分化起搏樣細(xì)胞NF-160、HCN4、HCN2基因表達(dá)水平不同,以倍數(shù)形式表示,其中NF-160、HCN4表達(dá)水平較培養(yǎng)的竇房結(jié)細(xì)胞高(P<0.01),而HCN2表達(dá)水平低于培養(yǎng)的竇房結(jié)細(xì)胞(P<0.01)。見表2和圖3。
表2 起搏基因NF-160、HCN4和HCN2表達(dá)水平
圖3 起搏基因NF-160、HCN4和HCN2表達(dá)水平
20世紀(jì)末,Makino等[8]首次以5-氮胞苷誘導(dǎo)培養(yǎng)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)能夠體外分化為心肌樣細(xì)胞,部分細(xì)胞的動(dòng)作電位與心臟起搏細(xì)胞相似。隨后,大量研究圍繞起搏樣細(xì)胞的誘導(dǎo)分化展開。目前,常用方法有應(yīng)用5-氮胞苷誘導(dǎo)分化方法[8-9]、起搏離子通道基因轉(zhuǎn)移方法[10-11]和竇房結(jié)細(xì)胞裂解液誘導(dǎo)分化方法[12]。但是這些體外誘導(dǎo)分化條件仍不完善,單獨(dú)應(yīng)用成功率低,所以本實(shí)驗(yàn)聯(lián)合應(yīng)用5-氮胞苷和竇房結(jié)細(xì)胞培養(yǎng)上清液,提高誘導(dǎo)效率。
5-氮胞苷誘導(dǎo)分化機(jī)制是可引起細(xì)胞DNA中某些胞嘧啶的去甲基化,激活表達(dá)肌細(xì)胞的特異性啟動(dòng)或分化調(diào)控基因,從而使啟動(dòng)細(xì)胞向心肌分化,并表達(dá)心肌細(xì)胞特異性標(biāo)志物,并有一部分細(xì)胞具有自律性[8,13]。由于竇房結(jié)是一個(gè)多態(tài)性的結(jié)構(gòu),心臟成纖維細(xì)胞能通過縫隙連接提高心肌細(xì)胞間的交通,因而穩(wěn)定培養(yǎng)心肌的自發(fā)性收縮節(jié)律。因此,體外培養(yǎng)時(shí)不必將竇房結(jié)細(xì)胞完全分離純化。竇房結(jié)細(xì)胞培養(yǎng)液對(duì)CD45-細(xì)胞的誘導(dǎo)分化作用依賴于竇房結(jié)細(xì)胞分泌的細(xì)胞因子,可以為干細(xì)胞向起搏樣細(xì)胞分化提供一個(gè)接近于竇房結(jié)細(xì)胞生長的環(huán)境。
研究表明,竇房結(jié)起搏細(xì)胞的電生理特性為舒張期自動(dòng)除極化,起主要作用的是起搏電流,其分子基礎(chǔ)是HCN,包括HCN1~HCN4,小鼠心臟主要表達(dá)HCN4和HCN2,以竇房結(jié)細(xì)胞HCN表達(dá)水平最高,所以選擇HCN4和HCN2作為檢測(cè)指標(biāo)[14-17]。
本實(shí)驗(yàn)采用全骨髓細(xì)胞直接接種,然后經(jīng)免疫磁珠分選其中的CD45-細(xì)胞,換用條件培養(yǎng)基誘導(dǎo)分化的方法,從成年小鼠骨髓源干細(xì)胞得到竇房結(jié)起搏樣細(xì)胞。該方法操作簡(jiǎn)便,得到細(xì)胞量大,細(xì)胞成活率高,傳代后,細(xì)胞形態(tài)漸趨同一,排列趨同一個(gè)方向,光鏡下可見胞體呈梭形,胞質(zhì)淡染,胞核明顯,位于胞體中央。筆者采用小鼠竇房結(jié)細(xì)胞培養(yǎng)基上清液,并添加5-氮胞苷作為條件培養(yǎng)基,得到的起搏樣細(xì)胞能夠表達(dá)起搏離子通道HCN4和神經(jīng)絲蛋白NF-160,由qRT-PCR結(jié)果看出,分化細(xì)胞表達(dá)起搏離子通道,符合起搏細(xì)胞特點(diǎn),說明得到的細(xì)胞大部分是起搏樣細(xì)胞。形態(tài)學(xué)和免疫組織化學(xué)染色研究顯示,得到的細(xì)胞具有較好的生物學(xué)活性,證明誘導(dǎo)分化方法有效,得到起搏樣細(xì)胞在體外能夠存活較長時(shí)間,并保持其生物學(xué)活性,為生物起搏器奠定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
目前仍有尚未解決的問題,比如得到的細(xì)胞并非全部是起搏樣細(xì)胞,還包含有其他細(xì)胞成分,這些混雜的細(xì)胞會(huì)對(duì)進(jìn)一步研究帶來干擾,因此進(jìn)一步完善誘導(dǎo)分化條件或增加分化后的篩選指標(biāo),利用流式細(xì)胞分離技術(shù)或免疫磁珠分選,對(duì)得到的細(xì)胞進(jìn)行分離提純,以提高細(xì)胞純度。
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Inducing directional differentiation of mouse bone marrow CD45-cells in鄄to sinoatrial node pacemaker-like cells in vitro
WEN Yu1LI Bin2
1.Department of Histology&Embryology,Basic Medical College of China Medical University,Liaoning Province, Shenyang110122,China;2.Department of Sports Medicine,Affiliated Shengjing Hospital of China Medical University, Liaoning Province,Shenyang110022,China
Objective To study method on inducing directional differentiation of mouse bone marrow CD45-cells into sinoatrial node pacemaker-like cells in vitro.Methods Mouse bone marrow CD45-cells were derived by using immunomagnetic beads system.After amplification in vitro,induced medium supplemented with 5-azacytidine and culture supernatant liquid of mouse sinoatrial node cells was used to cultivate.The expression on pacemaker-like cells markers of neurofilament protein(NF-160)and hyperpolarization activated cyclic nucleotide-gated potassium channel(HCN)4 were detected by immunofluorescence staining.The expression of pacing genes(NF-160,HCN4 and HCN2)were detected by qRT-PCR.Results Differentiated cells of bone marrow CD45-cells after induced by culture in vitro expressed NF-160 and HCN4.qRT-PCR analysis showed,compared with cultured sinoatrial node cells in vitro,the expression of NF-160 and HCN4 were higher,while expression of HCN2 was lower.Conclusion The sinoatrial node pacemaker-like cells can be induced and differentiated from mouse bone marrow CD45-cells,and the cells will be one choice of ideal seeding cells for biological pacemaker building.
Pacemaker-like cells;CD45;HCN4;NF-160;Sinoatrial node
R329.2
A
1673-7210(2015)06(b)-0009-04
2015-03-15本文編輯:李亞聰)
國家自然科學(xué)基金青年科學(xué)基金項(xiàng)目(81200068)。
溫昱(1974.8-),女,遼寧沈陽人,博士,副教授;研究方向:心傳導(dǎo)系統(tǒng)三維重建、干細(xì)胞。