王光楠 陳 艷 秦書(shū)儉
1.解放軍第二〇五醫(yī)院顯微外科,遼寧錦州 121001;2.遼寧醫(yī)學(xué)院解剖學(xué)教研室,遼寧錦州 121001
在臨床工作中,骨缺損修復(fù)一直沒(méi)有得到很好的解決,目前常把植骨術(shù)作為主要的方法。 植骨術(shù)可以分為3 種:自體來(lái)源植骨術(shù)、同種異體或異種植骨術(shù)以及組織工程骨植骨術(shù)。 前兩種方法由于供源不足、供區(qū)損傷、移植排斥反應(yīng)等影響而限制其在臨床工作中的廣泛應(yīng)用,但是組織工程骨移植可以克服這些不足和弊端,成為骨缺損修復(fù)的新方法。 在組織工程骨移植中,種子細(xì)胞的性能與生物材料的選擇,以及細(xì)胞和生物材料的復(fù)合情況是最為核心的部分,關(guān)系到組織工程產(chǎn)品的治療效果,而以及生物產(chǎn)品在使用中的安全性等各個(gè)方面。
脂肪干細(xì)胞(adipose-derived stem cells,ADSCs)是存在于脂肪組織基質(zhì)中的貼壁細(xì)胞,具有增殖能力強(qiáng)以及向多個(gè)方向分化的潛能[1-2]。其與骨髓基質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow stem cells,BMSCs)相近的分子生物學(xué)特性[3-4],而B(niǎo)MSCs 已經(jīng)應(yīng)用于同種異體組織工程化組織構(gòu)建以及組織修復(fù)的研究,ADSCs 是否具有與BMSCs 相似的修復(fù)特性,國(guó)內(nèi)外文獻(xiàn)少見(jiàn)報(bào)道。 本研究旨在探討ADSCs 誘導(dǎo)產(chǎn)生的成骨細(xì)胞與豬小腸黏膜下層(small intestinal submucosa,SIS)支架復(fù)合構(gòu)建生物活性骨膜的可行性, 為進(jìn)一步應(yīng)用同種異體ADSCs 誘導(dǎo)產(chǎn)生的成骨細(xì)胞為種子細(xì)胞構(gòu)建組織工程骨修復(fù)骨缺損提供依據(jù)。
成年健康日本大耳白兔10 只,體重2~2.5 kg,雌雄不限。 動(dòng)物由上海SLAC 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司提供,合格證號(hào):2007000520595。
1.2.1 制備豬脫細(xì)胞SIS、兔ADSCs 培養(yǎng)及構(gòu)建組織工程骨膜
1.2.1.1 制備豬脫細(xì)胞SIS 采用物理方法處理及化學(xué)方法,按文獻(xiàn)[5]方法制備脫細(xì)胞小腸黏膜下層,凍干后用環(huán)氧乙烷消毒,備用。 具體方法如下:
物理方法處理:取屠宰4 h 內(nèi)經(jīng)過(guò)檢疫的健康成年豬的小腸,先使用清水洗凈,再挑選粗細(xì)均勻的管腔管壁沒(méi)有破損且無(wú)淋巴結(jié)的部位。 翻轉(zhuǎn)小腸,使黏膜面向外,清除小腸黏膜層直至黏膜下層暴露,再次翻轉(zhuǎn)小腸,使用包裹有紗布的刀柄去除漿膜層和肌層的組織。 用40℃水持續(xù)沖洗干凈。
化學(xué)方法:按文獻(xiàn)[5]方法制備,將經(jīng)過(guò)上述物理方法處理后的小腸首先進(jìn)行如下化學(xué)方法處理操作(以下所有操作均在室溫進(jìn)行, 處理的材料與溶液的體積比要始終保持在1∶100):將用上述物理方法處理過(guò)的SIS 浸泡在含有乙二胺四乙酸(EDTA,100 mmol/L)和氫氧化鈉(100 mmol/L)溶液中,2 周后取出;然后用去離子水沖洗干凈后,在含有鹽酸(1 mmol/L)和氯化鈉(1 mmol/L)的溶液中(pH 0~1)浸泡6~8 h;用去離子水沖洗干凈后在氯化鈉(1 mmol/L)的磷酸鹽緩沖液中浸泡16 h;用去離子水沖洗后,在磷酸鹽緩沖液中(pH 7~7.14)中浸泡2 h;再用去離子水沖洗2 h;殺菌:將SIS 在含過(guò)氧乙酸(0.1%)的乙醇溶液(20%)中浸泡8 h, 再用含0.05%疊氮化鈉的磷酸鹽緩沖液清洗2 h,然后程序性降溫到-80℃,凍干后用環(huán)氧乙烷消毒,備用。
1.2.1.2 ADSCs 的獲取、原代和傳代培養(yǎng)及鑒定 取大白兔,麻醉取腹股溝部及腎下脂肪組織,PBS 沖洗,脂肪剪成直徑為1 mm 的3 個(gè)小塊, 置0.1%Ⅰ型膠原酶中,消化60 min,置于離心機(jī)以1000 r/min 離心10 min,棄去上清,采用含10%胎牛血清的培養(yǎng)基制成單細(xì)胞懸液,置恒溫培養(yǎng)箱常規(guī)培養(yǎng)。待細(xì)胞融合達(dá)80%時(shí),1∶2 傳代,擴(kuò)增培養(yǎng)。取第3 代細(xì)胞采用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞表面抗原CD29、CD34 的表達(dá)進(jìn)行細(xì)胞鑒定。1.2.2.3 ADSCs 成骨誘導(dǎo) 對(duì)照組:取第3 代細(xì)胞,制成細(xì)胞懸液,DMEM 培養(yǎng)基(含50 μmol/L 抗壞血酸、10 mmol/L β-甘油磷酸鈉以及0.1 μmol/L 地塞米松的)培養(yǎng),每隔3 d 換液1 次。 倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞基本長(zhǎng)滿(mǎn)之后,用0.25%胰酶,0.01%EDTA 消化后進(jìn)行傳代培養(yǎng)。 實(shí)驗(yàn)組:培養(yǎng)基更換為加入成骨誘導(dǎo)劑的DMEM 培養(yǎng)基,其他步驟同對(duì)照組。
1.2.1.3 ADSCs 誘導(dǎo)的成骨細(xì)胞與SIS 復(fù)合 組織工程骨膜(以下用“M”表示)的復(fù)合:于操凈工作臺(tái)修剪SIS 與培養(yǎng)板6 孔和96 孔的孔徑大小基本一致,取6 孔及96 孔培養(yǎng)板,經(jīng)消毒滅菌后,每孔加入BSA(600 μL/50 μL),置于37℃,5%二氧化碳培養(yǎng)箱中12 h后,取由ADSCs 誘導(dǎo)的成骨細(xì)胞,傳2 代后制成兩種濃度的細(xì)胞懸液(5×104/孔、5×103/孔),分別接種于6孔和96 孔板中,置于37℃,5%二氧化碳培養(yǎng)箱中復(fù)合培養(yǎng)10 d,每3 天更換培養(yǎng)液1 次。 觀察、檢測(cè)ADSCs 復(fù)合SIS 構(gòu)建的M。
1.2.2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果檢測(cè)
1.2.2.1 倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài) 倒置光學(xué)顯微鏡下觀察原代及傳至3 代ADSCs 的生長(zhǎng)情況以及形態(tài)變化特點(diǎn)。
1.2.2.2 誘導(dǎo)成骨細(xì)胞檢測(cè) 成骨誘導(dǎo)第12 天, 每組取一塊6 孔培養(yǎng)板,按照堿性磷酸酶顯色試劑盒要求進(jìn)行BCIP/NBT 染色,顯微鏡下觀察拍照。 對(duì)照組處理方法及時(shí)間同實(shí)驗(yàn)組。
1.2.2.3 MTT 法檢測(cè)細(xì)胞的生長(zhǎng)曲線(xiàn)情況 用胰酶-EDTA 消化誘導(dǎo)后傳至第2 代成骨細(xì)胞接種于96 孔培養(yǎng)板中,每孔細(xì)胞密度為3×103個(gè),體積為200 μL/孔。每個(gè)培養(yǎng)板設(shè)10 孔為實(shí)驗(yàn)組,6 孔設(shè)為對(duì)照組,總共接種6 板。置于二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng),1、3、5、7、10 d后,各取1 板,實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組每孔加入5 mg/mL MTT,每孔20 μL,培養(yǎng)4 h 后,吸棄培養(yǎng)孔內(nèi)培養(yǎng)液,每孔加入DMSO 150 μL,于自動(dòng)酶標(biāo)儀上(λ=490 nm)檢測(cè)各個(gè)孔的吸光度值,數(shù)據(jù)以(s)表示,橫坐標(biāo)以時(shí)間,縱坐標(biāo)以吸光度值制作細(xì)胞的生長(zhǎng)曲線(xiàn),觀察誘導(dǎo)后傳至第2 代成骨細(xì)胞生長(zhǎng)情況。
1.2.2.4 檢測(cè)M 中的堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)表達(dá)情況 取M 的6 孔板,從復(fù)合培養(yǎng)10 d 之后,分別取0、5、10、15 d 為時(shí)間點(diǎn),吸除成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)液,先用PBS 沖洗2 次,然后在各孔中加入400 μL的1%TritonX-100 溶液,放置在4℃的冰箱中過(guò)夜之后,取出50 μL 的細(xì)胞裂解液,依據(jù)檢測(cè)試劑盒說(shuō)明書(shū)操作:設(shè)置空白管、標(biāo)準(zhǔn)管以及測(cè)定管;每組測(cè)定管均加入0.5 mL 的緩解液、50 μL 的細(xì)胞上清液和0.5 mL 的基質(zhì)液。 在混勻之后,放置在37℃的水浴箱中孵育15 min,然后再加入105 mL 顯色劑,充分混勻后,在波長(zhǎng)為520 nm 處測(cè)定各孔的吸光度。根據(jù)相應(yīng)空白管以及標(biāo)準(zhǔn)管的吸收值計(jì)算ALP 的含量,ALP=測(cè)定管吸光度/標(biāo)準(zhǔn)管吸光度×標(biāo)準(zhǔn)管含酚量(0.1×0.005)×(100/0.005),取平均值,結(jié)果用金氏單位(U/100 mL)表示。
采用統(tǒng)計(jì)軟件SPSS 13.0 對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析, 正態(tài)分布計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(s)表示,采用Oneway ANOVA 進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。 以P <0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
經(jīng)物理機(jī)械及化學(xué)方法處理獲得的SIS 呈淺乳白色半透明薄膜狀。 見(jiàn)圖1、2。
圖1 物理法制成的豬小腸黏膜下層
圖2 化學(xué)處理后的干燥豬小腸黏膜下層
原代培養(yǎng)的細(xì)胞在接種8 h 后,貼壁細(xì)胞為成纖維樣形態(tài)細(xì)胞,ADSCs 則是懸浮在培養(yǎng)瓶的底部。 細(xì)胞接種24 h 后,ADSCs 達(dá)到85%貼壁, 體積開(kāi)始小、形態(tài)為圓形透明狀態(tài);在2~4 d 時(shí)貼壁細(xì)胞的逐漸伸展,體積逐漸增大,外形為短梭形或多角形,細(xì)胞多數(shù)為單核,而且核仁清晰,細(xì)胞之間互相連接,形態(tài)類(lèi)似成纖維細(xì)胞。 在7 d 左右細(xì)胞數(shù)量明顯增多,貼壁細(xì)胞呈現(xiàn)團(tuán)簇狀或漩渦狀排列狀態(tài), 部分形成細(xì)胞集落,細(xì)胞形態(tài)呈現(xiàn)長(zhǎng)梭形,細(xì)胞間排列緊密,常伴有2~3 個(gè)突起,細(xì)胞核大,呈扁圓形。 在接種14 d 時(shí),貼壁的ADSCs 匯合成單層細(xì)胞,基本鋪滿(mǎn)于整個(gè)瓶底。部分集落細(xì)胞內(nèi)可見(jiàn)脂肪顆粒,貼壁細(xì)胞由梭形形態(tài)逐漸變?yōu)闄E圓形形態(tài)。 見(jiàn)圖3A~D。
傳代后細(xì)胞呈長(zhǎng)梭型及多角形貼壁分布,形態(tài)大小較一致,突起減少,增殖迅速,一般3~4 d 即可匯合成單層,平行或漩渦狀排列。 各代細(xì)胞于形態(tài)上無(wú)明顯變化。
流式細(xì)胞表型分析結(jié)果顯示:貼壁細(xì)胞高表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞的特異性表面標(biāo)志物CD29(93.58%),CD44(91.16%),僅表達(dá)少量的造血干細(xì)胞的特異性表面標(biāo)志物CD34(0.96%),確定貼壁細(xì)胞為ADSCs。見(jiàn)圖3E~G。
圖3 倒置顯微鏡下脂肪干細(xì)胞一般狀態(tài)觀察及流式細(xì)胞鑒定結(jié)果
細(xì)胞在成骨細(xì)胞誘導(dǎo)后, 生長(zhǎng)速度明顯變慢,細(xì)胞形態(tài)逐漸由梭形變?yōu)槿切巍⒍嘟切?,有?shù)個(gè)突起(圖4)。 隨誘導(dǎo)時(shí)間的延長(zhǎng),細(xì)胞均出現(xiàn)重疊生長(zhǎng),形成多個(gè)散在的細(xì)胞結(jié)節(jié)、基質(zhì)堆積,在細(xì)胞結(jié)節(jié)中央?yún)^(qū)形成礦化結(jié)節(jié)。 對(duì)照組細(xì)胞形態(tài)無(wú)改變。
圖4 成骨細(xì)胞誘導(dǎo)第8 天倒置顯微鏡下細(xì)胞形態(tài)(200×)
實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞ALP 表達(dá)陽(yáng)性, 表現(xiàn)為細(xì)胞漿被染成藍(lán)色(圖5,封三)。 對(duì)照組細(xì)胞漿未被染色(圖6,封三)。
圖5 實(shí)驗(yàn)組堿性磷酸酶染色(200×)(見(jiàn)內(nèi)文第7頁(yè))
圖6 對(duì)照組堿性磷酸酶染色(200×)(見(jiàn)內(nèi)文第7頁(yè))
實(shí)驗(yàn)組ADSCs 誘導(dǎo)成骨細(xì)胞在第1~5 天, 細(xì)胞數(shù)目增殖變化不大, 第7 天起細(xì)胞大量增加達(dá)到頂點(diǎn),1 周后生長(zhǎng)速度略有減慢。 見(jiàn)圖7。
圖7 脂肪干細(xì)胞誘導(dǎo)的第2 代成骨細(xì)胞生長(zhǎng)曲線(xiàn)
M 表面ADSCs 誘導(dǎo)成骨細(xì)胞在第1~3 天, 細(xì)胞數(shù)目增殖變化不大,6 d 達(dá)到峰值, 之后速度又減慢。見(jiàn)圖8。
實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組相比,相同時(shí)間點(diǎn)ALP 活性明顯增高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P <0.05)。 實(shí)驗(yàn)組M培養(yǎng)后5 d 表達(dá)明顯增多,并且達(dá)到最高值,在10~15 d都有不同程度降低。 見(jiàn)表1。
圖8 組織工程骨膜表面細(xì)胞生長(zhǎng)曲線(xiàn)
表1 兩組不同時(shí)間點(diǎn)的堿性磷酸酶活性比較(n = 10,U/100 mL,s)
表1 兩組不同時(shí)間點(diǎn)的堿性磷酸酶活性比較(n = 10,U/100 mL,s)
組別 0 d 5 d 10 d 15 d對(duì)照組實(shí)驗(yàn)組P 值0.64±0.15 3.96±0.33<0.01 0.65±0.17 9.43±4.15<0.01 0.37±0.15 8.36±0.24<0.01 0.76±0.17 8.05±0.33<0.01
骨組織工程的研究熱點(diǎn)是將具備良好成骨能力的種子細(xì)胞接種到生物相容性良好、有利于種子細(xì)胞黏附生長(zhǎng)的生物支架材料上體外復(fù)合培養(yǎng),從而構(gòu)建出具有成骨活性的植骨材料,即組織工程化骨。 一些實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,具有成骨潛能的種子細(xì)胞與支架材料復(fù)合有較強(qiáng)的成骨能力[6]。
ADSCs 在含有成骨誘導(dǎo)劑的特定條件下可以向成骨細(xì)胞分化[7-12]。在本實(shí)驗(yàn)中采用地塞米松、β-甘油磷酸鈉和抗壞血酸加入到基礎(chǔ)培養(yǎng)基中,作為成骨誘導(dǎo)分化的培養(yǎng)液。 地塞米松促進(jìn)ADSCs 早期成骨分化是通過(guò)與干細(xì)胞上的糖皮質(zhì)激素受體結(jié)合,從而激活干細(xì)胞表面的受體, 促進(jìn)ADSCs 的ALP 活性表達(dá)增強(qiáng)。也有研究表明地塞米松通過(guò)增強(qiáng)其受體與基因組中靶序列的親和力從而調(diào)控分化細(xì)胞中的基因表達(dá),提高ALP 活性,促進(jìn)成骨分化。 在成骨誘導(dǎo)后期地塞米松可誘導(dǎo)干細(xì)胞發(fā)生礦化;β-甘油磷酸鈉可釋放磷酸根,為提供干細(xì)胞體外誘導(dǎo)培養(yǎng)過(guò)程中發(fā)生鈣沉積所需要的磷離子, 為細(xì)胞礦化提供離子環(huán)境,促進(jìn)生理性鈣鹽沉積;抗壞血酸可以通過(guò)延長(zhǎng)Ⅰ型膠原轉(zhuǎn)錄因子的半衰期從而使Ⅰ型膠原mRNA 的含量增加,促進(jìn)膠原合成。 這些調(diào)控因子的聯(lián)合應(yīng)用為ADSCs 體外成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)提供了良好環(huán)境[13-17]。
本研究中ADSCS 在成骨誘導(dǎo)后, 生長(zhǎng)速度明顯變慢,細(xì)胞形態(tài)逐漸由梭形變?yōu)槿切巍⒍嘟切?,有?shù)個(gè)突起。隨誘導(dǎo)時(shí)間的延長(zhǎng),細(xì)胞均出現(xiàn)重疊生長(zhǎng),形成多個(gè)散在的細(xì)胞結(jié)節(jié),基質(zhì)堆積,在細(xì)胞結(jié)節(jié)中央?yún)^(qū)形成礦化結(jié)節(jié)。
本研究將兔的ADSCS 誘導(dǎo)而成的成骨細(xì)胞與SIS 復(fù)合構(gòu)建組織工程骨膜后進(jìn)行成骨生長(zhǎng)特性進(jìn)行了實(shí)驗(yàn)研究。 實(shí)驗(yàn)結(jié)果提示誘導(dǎo)的成骨細(xì)胞在SIS 膜上表現(xiàn)為M 表面細(xì)胞的生長(zhǎng)曲線(xiàn),可見(jiàn)M 表面ADSCs生長(zhǎng)情況,1~3 d 增殖緩慢。證實(shí)細(xì)胞在組織工程骨膜上生長(zhǎng)狀態(tài)很好,而且SIS 具有一定的促進(jìn)成骨細(xì)胞分裂作用。
[1] Fikry EM,Safar MM,Hasan WA,et al. Bone marrow and adipose-derived?Mesenchymal stem cells alleviate methotrexate-induced pulmonary fibrosis in rat:comparison with dexamethasone [J]. J Biochem Mol Toxicol,2015,29(7):321-329.
[2] Yin Y,Zhou X,Guan X,et al. In vivo tracking of human adipose-derived stem cells?Labeled with ferumoxytol in rats with middle cerebral artery occlusion by magnetic resonance imaging [J]. Neural Regen Res,2015,10(6):909-915.
[3] Aubin JE. Osteoprogenitor cell frequency in rat bone marrow stromal populations' role for heterotypic cell—cell interaction in osteoblast differentiation [J]. Cell Tissue Res,1999,72(3):396-410.
[4] Chiou GJ,Crowe C,McGoldrick R,et al.Optimization of an injectable tendon hydrogel: the effects of platelet-rich plasma and adipose-derived stem cells on tendon healing in vivo [J].Tissue Eng Part A,2015,21(9-10):1579-1586.
[5] Abraham GA,Murray J,Billiar K,et al. Evaluation of the porcine intestinal Col layer as a biomaterial [J]. J Biomed Mater Res,2000,51(3):442-452.
[6] Kneser U,Stangenberg L,Ohnolz J,et al.Evaluation of processed bovine cancellous bone matrix seeded with syngenic osteoblasts in a critical size calvarial defect rat model [J]. Cell Mol Med,2006,3(10):695-707.
[7] Zhou H,Yang J,Xin T,et al. Exendin-4 enhances the migration of adipose-derived stem cells to neonatal rat ventricular cardiomyocyte-derived conditioned medium via the phosphoinositide 3-kinase/Akt-stromal cell-derived factor-1α/CXC chemokine receptor 4 pathway [J]. Mol Med Rep,2015,11(6):4063-4072.
[8] Pascucci L,Mercati F,Marini C,et al. Ultrastructural morphology of equine adipose -derived mesenchymal stem cells [J]. Histol Histopathol,2010,25(10):1277-1285.
[9] Edwards PC,Ruggiero S,F(xiàn)antasia H,et al. Sonic hedgehog geneen hanced tissue engineering for bone regeneration [J]. Gene Therapy,2005,12(1):75-86.
[10] Girolamo L,Lopa S,Arrigoni E,et al. Human adiposederived stem cells isolated from young and elderly women:their differentiation potential and scaffold interaction during in vitro osteoblastic differentiation [J]. Cytotherapy,2009,11(6):793-803.
[11] Wall ME,Rachlin A,Otey CA,et al. Human adipose-derived adult stem cells upregulate palladin during osteogenesis and in response to cyclic tensile strain [J]. Am J Physiol Cell Physiol,2007,293(5):1532-1538.
[12] Kim YJ,Yu JM,Joo HJ,et al. Role of CD9 in proliferation and proangiogenic action of human adipose-derived mesenchymal stem cells [J]. Pflugers Arch,2007,455(2):283-296.
[13] Lin Y,Chen X,Yan Z,et al. Multilineage differentiation of adipose-derived stromal cells from GFP transgenic mice [J]. Mol Cell Biochem,2006,285(1-2):69-78.
[14] 朱肖奇,賀用禮,馬雪峰,等.生物衍生骨與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞復(fù)合修復(fù)免橈骨大段缺損[J].中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2009,13(3):417-422.
[15] Neubauer M,Hacker M,Bauer-Kreisel P,et al. Adipose tissue engineering based on mesenchymal stem cells and basic fibroblast growth factor in vitro[J].Tissue Eng,2005,11(11-12):1840-1851.
[16] 劉琴,陳芳,楊麗君,等.低溫凍存對(duì)兔脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞部分生物學(xué)特性的影響[J].中國(guó)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物學(xué)報(bào),2014,22(4):60-64.
[17] Baldursson BT,Kjartansson H,Konrádsdóttir F,et al.Healing rate and autoimmune safety of full-thickness wounds treated with fish skin acellular dermal matrix versus porcine small -intestine submucosa: a noninferiority study [J]. Int J Low Extrem Wounds,2015,14(1):37-43.