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人C1q/TNFα相關蛋白-6的表達、純化及生物活性分析

2015-02-26 06:54:45李洪波高學飛吳東海
中國藥理學通報 2015年8期
關鍵詞:降血糖分子篩磷酸化

李洪波,高學飛,李 娜,吳東海

(1.懷化學院生命科學系,民族藥用植物資源研究與利用湖南省重點實驗室,湖南懷化 418008;2.中國科學院廣州生物醫(yī)藥與健康研究院,廣東廣州 510530)

人C1q/TNFα相關蛋白-6的表達、純化及生物活性分析

李洪波1,2,高學飛2,李 娜2,吳東海2

(1.懷化學院生命科學系,民族藥用植物資源研究與利用湖南省重點實驗室,湖南懷化 418008;2.中國科學院廣州生物醫(yī)藥與健康研究院,廣東廣州 510530)

中國圖書分類號:R-332;R378.21;R341;R394.2;R977.6

摘要:目的 利用大腸桿菌表達可溶性hCTRP6蛋白并分析其活性。方法 重組載體轉化大腸桿菌表達菌株、IPTG誘導表達、純化后測定活性。結果 Trx-hCTRP6蛋白在大腸桿菌中高效表達,經(jīng)鎳親合純化和分子篩純化,Trx-hCTRP6在細胞和動物水平上都有生物活性。結論 利用大腸桿菌表達系統(tǒng)高效制備了具有生物活性的Trx-hCTRP6蛋白。

關鍵詞:C1q/TNFα相關蛋白-6;大腸桿菌;重組蛋白;親合純化;蛋白印跡;分子篩

網(wǎng)絡出版時間:2015-7-22 10:42 網(wǎng)絡出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20150727.0901.030.html

C1q/腫瘤壞死因子相關蛋白(C1q and tumor necrosis factor related proteins,CTRPs)是一類在結構和功能上與脂聯(lián)素類似的蛋白[1-5]。所有CTRPs蛋白都以三聚體作為分泌的基本結構單元,可以形成6聚體、12聚體、18聚體以及更高形式的多聚體;CTRP3、CTRP5、CTRP6和CTRP10的三聚體通過二硫鍵進一步聚集成更有序的低聚物;除了形成同源低聚物,CTRP1/CTRP6、CTRP2/CTRP7和脂聯(lián)素/CTRP2可以作為異源低聚體分泌[1-5]。不同CTRPs間的生物功能各異,例如:CTRP1特異性結合膠原纖維并阻斷膠原介導的血小板聚集,阻止血栓形成,且具有降血糖功能,能增加胰島素敏感性等;CTRP2球狀結構域具有增加肝臟糖原合成、促進脂肪酸的氧化及胰島素增敏作用;CTRP-3能夠抑制趨化因子的釋放,CTRP5在眼部發(fā)育過程中起一定的作用,CTRP11與脂肪形成有關,CTRP13激活AMP的磷酸化并參與脂肪酸的代謝調(diào)節(jié)[2-5]。CTRP6可以誘導巨噬細胞白細胞介素-10(IL-10)的表達。CTRP6球狀區(qū)(gCTRP6)劑量依賴性地增加IL-10的表達水平,并且gCTRP6可以迅速誘導ERK1/2的磷酸化。使用選擇性抑制劑U0126后,CTRP6誘導的IL-10表達被阻斷。由于IL-10是一個有效的抗炎細胞因子,可以調(diào)節(jié)炎癥信號通路,所以CTRP6可能是一個抗炎藥物的新靶點;另外,CTRP6球狀區(qū)可以在骨骼肌細胞中調(diào)節(jié)磷酸化并激活AMPK。在肌細胞中,CTRP6誘導乙酰輔酶A羧化酶(ACC)的磷酸化和脂肪酸氧化,CTRP6在能量代謝中可能具有重要功能[1,6-7]。本研究將以大腸桿菌為宿主菌,制備重組hCTRP6蛋白,在動物和細胞水平上分析能量代謝調(diào)節(jié)活性。

1 材料

表達菌株BL21-codonplus(DE3)、表達載體pET32a(+)購自Invitrogen公司。鎳親和層析樹脂購自Qiagen公司,分子篩Sephadex G-75購自于GE公司,p-AMPKα、AMPKα及β-actin抗體購自CST公司(Cell Signaling Technology,Inc)。8周齡的C57BL/6♂小鼠由中國科學院廣州生物醫(yī)藥與健康研究院實驗動物中心飼養(yǎng)。各種工具酶為TaKa-Ra公司產(chǎn)品,PCR引物由Invitrogen合成,一般化學試劑為Sigma分析純。

2 方法

2.1表達載體構建及表達產(chǎn)物的驗證 上游引物PF:5′-GCCCATGGCCTTTGACAGAGCTGTG-3′(CCA TGG NcoI位點);下游引物PR:5′-CGCTCGAG-GTCGTCCTCGGCCTTGATG-3′(CTCGAG XhoI位點);以從北京義翹神州生物技術有限公司(Sino Bi-ological Inc.)購買hCTRP6的cDNA為模板,PCR擴增目標片段、構建重組載體pET32/hCTRP6并轉化入大腸桿菌BL21-codonplus(DE3)菌株。隨機挑取5個轉化子單菌落,接種至20 mL含50 mg·L-1Amp LB液體培養(yǎng)基的50 mL三角瓶中,37℃、250 r ·min-1培養(yǎng)至A600=0.6~0.8,加入終濃度0.1 mmol·L-1IPTG,20℃誘導5 h,取菌液2 mL,離心得菌體,向菌體中加入PBS溶液(1%曲拉通X-100、3 mmol·L-1PMSF)200 μL,超聲破碎,離心取上清,加入上樣緩沖液,熱變性后SDS-PAGE分析。

2.2重組蛋白純化 取過夜培養(yǎng)種子菌2 mL,接種至200 mL LB(含50 mg·L-1Amp)培養(yǎng)基中,37℃、250 r·min-1培養(yǎng)至A600=0.6~0.8,于20℃誘導8 h,離心取菌體。鎳親合純化參照精編分子生物學實驗指南和文獻進行[8-12]。將鎳親合純化后的蛋白利用曲拉通X-114去除內(nèi)毒素并超濾濃縮,Superdex G-75分子篩進行純化,具體步驟參照文獻進行[8,12]。取不同咪唑濃度的蛋白洗脫液和經(jīng)分子篩純化收集的蛋白,加入5×SDS-PAGE上樣緩沖液、經(jīng)煮沸變性后,12%SDS-PAGE分析純化情況,純化蛋白利用兔抗His×6抗體蛋白印跡分析。Trx(硫氧還蛋白)的表達與純化參照文獻進行[8]。

2.3重組蛋白活性分析 小鼠肌管前體細胞C2C12分化為肌管細胞參照文獻進行[8]。分化細胞無血清DMEM饑餓12 h,加入終濃度為2 mg· L-1Trx-hCTRP6蛋白溫育不同時間,用含蛋白磷酸化酶抑制劑和PMSF的RIPA裂解細胞,離心收集蛋白上清、BCA法測定濃度、12%SDS-PAGE分離蛋白、轉膜并利用相應抗體進行Western blot分析。

C57BL/6小鼠于中科院廣州生物醫(yī)藥與健康研究院動物中心飼養(yǎng),實驗操作嚴格按照動物委員會的相關規(guī)定開展。實驗小鼠在實驗前先測定其基礎血糖濃度;之后,按2 μg·g-1體重腹腔注射經(jīng)6 h饑餓的6周齡♂小鼠,腹腔注射9只,尾靜脈取血10 μL,測定注射后0、1、2、3、4、5及6 h的血糖濃度;同時,設注射Trx的對照實驗小鼠8只,腹腔注射與注射hCTRP6組等體積的Trx(2 μg·g-1體重)作為對照。

3 結果

3.1表達產(chǎn)物驗證 挑取pET32/hCTRP6重組載體的大腸桿菌BL21轉化子數(shù)個,于IPTG誘導前后分別提取可溶性總蛋白,蛋白質(zhì)的SDS-PAGE分析結果如Fig 1所示。未經(jīng)IPTG誘導的轉化子(泳道5)在50 ku左右沒有特異表達產(chǎn)物,而4株經(jīng)IPTG誘導的BL21轉化子(泳道1-4)在50 ku左右有明顯的蛋白表達(箭頭所示),hCTRP6蛋白理論分子質(zhì)量約30 ku,其N-端融合了Trx片段(理論分子質(zhì)量約20 ku),hCTRP6全長蛋白與Trx融合蛋白的表達產(chǎn)物理論分子質(zhì)量大小約50 ku,該蛋白的分子質(zhì)量大小與預期分子質(zhì)量相符,說明實現(xiàn)了重組Trx-hCTRP6蛋白在大腸桿菌中的可溶性表達。

Fig 1 SDS-PAGE identification of soluble expression of Trx-hCTRP6

3.2重組蛋白的純化 SDS-PAGE分析結果表明,含100、200及300 mmol·L-1咪唑的洗脫緩沖液能將目標蛋白從樹脂上洗脫,當咪唑為300 mmol· L-1時,目標蛋白的純度最高(Fig 2A)。純化結果說明,利用鎳親合層析可以對Trx-hCTRP6蛋白有效純化。將300 mmol·L-1咪唑洗脫的蛋白樣品收集,利用曲拉通X-114除去內(nèi)毒素后將蛋白于PBS中透析后超濾濃縮,Sephadex G-75分子篩對重組蛋白進一步純化,分子篩純化蛋白SDS-PAGE結果如Fig 2B所示,從Fig 2B可看出,經(jīng)分子篩后收集的樣品5和6純度最高,SDS-PAGE結果中看不到雜蛋白條帶。將收集的樣品5和6合并后超濾濃縮,分別取10和1 μg進行SDS-PAGE及Western blot分析,結果如Fig 2C所示,純化的樣品具有很高的純度,在目標位置的印跡條帶明顯。

3.3活性分析 純化的Trx-hCTRP6經(jīng)刺激C2C12分化肌管細胞。蛋白印跡分析信號轉導相關蛋白磷酸化變化情況,結果顯示,Trx-hCTRP6能激活AMPKα的磷酸化,Trx蛋白不能激活AMPKα的磷酸化。AMPKα的磷酸化結果如Fig 3A所示,經(jīng)2 mg·L-1的hCTRP6刺激10 min,AMPKα的磷酸化程度增加;當Trx-hCTRP6刺激超過20 min,AMPKα磷酸化的增加更趨于明顯。以上蛋白印跡結果表明,大腸桿菌表達的Trx-hCTRP6具有生物活性。

Fig 2 Purification of fusion recombinant protein of Trx-hCTRP6

降血糖活性測定結果表明:在注射前和注射重組蛋白1~2 h內(nèi),兩組小鼠的血糖水平?jīng)]有明顯差異;在注射3~4 h內(nèi),注射Trx-hCTRP6的實驗組小鼠的血糖要低于注射Trx的對照小鼠,兩者之間存在明顯差異;但注射4 h后,兩實驗組小鼠的血糖濃度間的差異消失(Fig 3B)。動物實驗結果進一步證明,利用大腸桿菌表達純化的Trx-hCTRP6具有生物活性。

4 討論

目前,已成功克隆到至少15個高度同源的脂聯(lián)素類似物,雖然CTRPs在結構上具有相似性,但是它們參與的生理過程存在明顯差異[1-5]。越來越多研究表明,CTRPs除參調(diào)節(jié)能量代謝外,在心血管疾病中也發(fā)揮重要生理功能。例如:CTRP9通過激活AMPK信號通路改善心肌缺血/再灌注損傷肥胖所致的脂肪細胞因子產(chǎn)生失衡是心血管疾病發(fā)病的一個重要原因;CTRP6在頸動脈球囊拉傷處高表達,過表達CTRP6進一步促進球囊拉傷處血管內(nèi)膜增生等。

Fig 3 Biological activity assays of purified fusion recombinant protein Trx-hCTRP6

本研究主要目的在于制備活性CTRP6重組蛋白。我們已經(jīng)制備了具有生物活性的CTRP1和 2全長及球狀功能區(qū)蛋白,與CTRP1和2重組蛋白相比較,Trx-hCTRP6有激活AMP磷酸化的作用,但在檢測動物水平的降血糖活性時,Trx-hCTRP6蛋白在注射3 h后呈現(xiàn)出降血糖活性,降血糖活性僅能維持至注射后4 h。之前表達的CTRP1和2或其球狀功能區(qū),降血糖活性在注射1 h后與對照組有明顯差異,在注射2 h后差異更為明顯,并且其降血糖活性至少維持5 h以上[8-11]。因此,相比較CTRP1 和2,Trx-CTRP6的降血糖活性明顯低于它們,這也意味著不同CTRP之間的降血糖效應存在差異。總之,本研究為hCTRP6蛋白的可溶和活性表達找到了一種有效方法,為該蛋白的應用及機制研究奠定了基礎。

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Expression,purification and biological activities assay of human C1q and tumor necrosis factor related protein-6

LI Hong-bo1,2,GAO Xue-fei2,LI Na2,WU Dong-hai2
(1.Dept of Life Sciences,Huaihua College,Huaihua Hunan 418008,China;2.Guangzhou Institute of Biomedicine and Health,CAS,Guangzhou 510530,China)

Abstract:Aim To prepare soluble human C1q and tumor necrosis factor related protein-6 in Escherichia coli and analyze the bioactivity.Methods Recombi-nant plasmid was transformed into E.coli expression strain,and the recombinant protein Trx-hCTRP6 was expressed induced by IPTG and then purified.Results

Trx-hCTRP6 was expressed efficiently and purified using Ni-NTA affinity chromatography and Superdex G- 75 column.The purified Trx-hCTRP6 was shown to be active under in vivo and in vitro assay conditions.Con-clusion Active Trx-hCTRP6 is efficiently prepared from E.coli protein expression system.

Key words:C1q and tumor necrosis factor related pro-tein-6;Escherichia coli;recombinant protein;affinity purification;Western blot;gel filtration chromatogra-phy

作者簡介:李洪波(1980-),男,博士,副教授,研究方向:生物制藥及生物化學與分子生物學,通訊作者,E-mail:lihong-bo8007@163.com

基金項目:國家自然科學基金資助項目(No 81300655);湖南省重點學科建設項目(No 2011042);廣東省科技計劃項目(No 2013B051000090)

收稿日期:2015-03-12,修回日期:2015-04-14

文獻標志碼:A

文章編號:1001-1978(2015)08-1165-04

doi:10.3969/j.issn.1001-1978.2015.08.027

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