李培坤 耿小平
5-氮雜-2′-脫氧胞苷誘導(dǎo)肝癌細(xì)胞株SLIT2基因去甲基化的實(shí)驗(yàn)研究
李培坤 耿小平
目的 觀(guān)察肝細(xì)胞癌(HCC)細(xì)胞株SUN449、BEL-7402、SMMC-7721、Hep3B及epG2中SLIT2基因在5-Aza-CdR作用后,其啟動(dòng)子區(qū)甲基化狀態(tài)及表達(dá)的變化,探討HCC細(xì)胞株中SLIT2基因調(diào)控規(guī)律及甲基化調(diào)節(jié)抑制劑5-Aza-CdR對(duì)SLIT2基因轉(zhuǎn)錄的影響。方法對(duì)上述HCC細(xì)胞株體外培養(yǎng),MSP法檢測(cè)HCC細(xì)胞株中SLIT2啟動(dòng)子相關(guān)區(qū)域的甲基化狀況。應(yīng)用10 mmol/L濃度的5-Aza-CdR處理體外培養(yǎng)的5種HCC細(xì)胞后,MSP法檢測(cè)用藥前后細(xì)胞中SLIT2基因的甲基化狀態(tài),RT-PCR法檢測(cè)用藥前后細(xì)胞中SLIT2 mRNA的變化。結(jié)果SLIT2基因在各細(xì)胞株中啟動(dòng)子區(qū)呈異常高甲基化狀態(tài),mRNA低表達(dá)。經(jīng)過(guò)5-Aza-CdR 處理后,SLIT2 基因啟動(dòng)子區(qū)呈顯著去甲基化狀態(tài),其mRNA表達(dá)增強(qiáng)。結(jié)論啟動(dòng)子區(qū)異常甲基化是HCC細(xì)胞SLIT2基因失活的主要原因之一,去甲基化制劑5-Aza-CdR 能逆轉(zhuǎn)SLIT2 基因甲基化狀態(tài), 從而調(diào)控SLIT2 基因表達(dá)。
5-氮雜-2'-脫氧胞苷;肝細(xì)胞癌;SLIT2基因;DNA甲基化
肝細(xì)胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC) 為起源于肝細(xì)胞的惡性腫瘤,其惡性度高,缺乏較有效的治療手段,術(shù)后復(fù)發(fā)和肝內(nèi)轉(zhuǎn)移普遍,在惡性腫瘤中,HCC發(fā)病率位列第5,病死率位列第3[1]。近年來(lái),表觀(guān)遺傳學(xué)改變與HCC發(fā)生、發(fā)展的關(guān)系逐步被揭開(kāi),目前認(rèn)為抑癌相關(guān)基因啟動(dòng)子DNA堿基異常甲基化修飾導(dǎo)致其表達(dá)失活在HCC發(fā)生發(fā)展過(guò)程中起重要作用,本研究小組前期在HCC組織標(biāo)本和HCC細(xì)胞株中對(duì)多種基因進(jìn)行了甲基化檢測(cè),篩選出甲基化率較高的SLIT2等基因[2],本文擬在前期研究基礎(chǔ)上,應(yīng)用甲基化特異PCR技術(shù)(methylation-specific PCP,MSP),探討去甲基化制劑5-氮雜-2′-脫氧胞苷(5-aza-2′-deoxycytidine, 5-Aza-CdR)對(duì)SUN449、BEL-7402、SMMC-7721、Hep3B和HepG2 5種HCC細(xì)胞株中SLIT2基因異常高甲基化的逆轉(zhuǎn)作用,為HCC的去甲基化治療提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1.1 實(shí)驗(yàn)材料 所用HCC細(xì)胞株系香港中文大學(xué)惠贈(zèng)并于我實(shí)驗(yàn)中心留存,試劑5-Aza-CdR購(gòu)自Sigma公司,DNA提取試劑盒購(gòu)于Qiagen公司;提取全細(xì)胞RNA Trizol試劑為Invitrogen公司產(chǎn)品,DMEM細(xì)胞培養(yǎng)基購(gòu)自Hyclone公司;DNA提取并甲基化修飾試劑盒為GEPIGENTEK公司產(chǎn)品;逆轉(zhuǎn)錄PCR試劑盒、Taq酶和dNTP購(gòu)自TaKaRa公司。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 HCC細(xì)胞培養(yǎng) 各細(xì)胞株在含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中,37℃中5%CO2的條件下培養(yǎng),培養(yǎng)至細(xì)胞處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期后,活細(xì)胞計(jì)數(shù)比例大于95%時(shí)用于實(shí)驗(yàn)。在含10 mL/L胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液中待饑餓培養(yǎng)24 h后,在細(xì)胞培養(yǎng)瓶中加入含有10 mmol/L 5-Aza-CdR的細(xì)胞培養(yǎng)液,培養(yǎng)后第1、3天換取同樣含藥濃度的培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),培養(yǎng)至第5天收集細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。設(shè)未加藥物培養(yǎng)液培養(yǎng)的細(xì)胞作為對(duì)照組。
1.2.2 MSP法檢測(cè)各細(xì)胞株中SLIT2啟動(dòng)子甲基化狀態(tài) 各細(xì)胞株加入含5-Aza-CdR培養(yǎng)液作用5 d后,分別收集細(xì)胞,提取各細(xì)胞株基因組DNA,細(xì)胞基因組DNA提取及甲基化修飾:按照QIAmp DNA Mini and Blood Mini Kit 成品試劑盒步驟提取各細(xì)胞株基因組DNA,應(yīng)用紫外線(xiàn)分光光度法檢測(cè)提取DNA濃度和純度,應(yīng)用一步法DNA修飾試劑盒對(duì)所提取的DNA進(jìn)行修飾,甲基化特異PCR擴(kuò)增反應(yīng)總體系25 μL,包括樣本DNA 1.0 μL, 10×PCR buffer 2.5 μL, 甲基化或非甲基化引物各0.5 μL, dNTP 2 μL, Taq酶0.2 μL, PCR-Water 18.3 μL。MSP反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性10 min; 95℃ 1 min,甲基化及非甲基化均 68℃退火1 min, 72℃ 1 min, 45個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。以未加引物只加PCR-Water的體系作為空白對(duì)照,梯度為100 bp 的1 000 bp DNA Ladder作為分子量標(biāo)記,據(jù)相關(guān)文獻(xiàn)提供序列合成引物:①SLIT2基因甲基化引物:上游序列:5′-TTG GGG CGC GGG TTT GGG TTT TTA CGC-3′,下游序列:5′-CGT AAA CGA CGC CGA CCC CAC TA-3′;②非甲基化引物: 上游序列:5′-TTG GGG TGT GGG TTT GGG TTT TTA TG-3′,下游序列:5′- CAT AAA CAA CAC CAA CCC CAC TA -3′ ,甲基化及非甲基化產(chǎn)物大小均為160 bp,2%瓊脂糖凝膠電泳,設(shè)定電壓100 V,電泳時(shí)間30 min,紫外凝膠成像系統(tǒng)下照相分析。每組實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次。
1.2.3 RT- PCR法分析SLIT2 mRNA表達(dá) 用TRIzol 法提取各HCC細(xì)胞總RNA, 紫外分光光度測(cè)定判斷提取RNA濃度及純度,按濃度算取 2 μg 總RNA,以其為模板并與逆轉(zhuǎn)錄酶和Oliga(dT)引物反應(yīng)逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,SLIT2引物序列:上游序列:5′-GGT GTC CTC TGT GAT GAA GAG-3′,下游序列:5′-GTG TTT AGG AGA CAC ACC TCG-3′,SLIT2產(chǎn)物片段387 bp。選擇GADPH為內(nèi)參:其上游引物序列:5′-GAC CCC TTC ATG ACC TCA ACT ACA-3′,下游引物序列:5′-CTA AGC AGT TGG TGG TGC AGG A-3′,產(chǎn)物片段為100 bp,兩對(duì)引物同時(shí)加入 25 μL 體系中,聚合酶鏈反應(yīng)反應(yīng)條件: 95℃ 預(yù)變性5 min; 95℃ 變性90 s, 61℃ 復(fù)性30 s, 72℃延伸30 s, 共30循環(huán); 72 ℃延伸10 min。2%瓊脂糖凝膠電泳分離擴(kuò)增產(chǎn)物,核酸凝膠圖像分析儀攝影并分析RT-PCR產(chǎn)物。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
2.1 5-Aza-CdR對(duì)SLIT2甲基化狀態(tài)的影響 SLIT2基因在5種HCC細(xì)胞株中表現(xiàn)為異常高甲基化狀態(tài),未擴(kuò)增出非甲基化產(chǎn)物,對(duì)各HCC細(xì)胞株用10 mmol/L濃度的5-Aza-CdR作用5 d后,各HCC細(xì)胞株MSP產(chǎn)物同時(shí)擴(kuò)增出甲基化和非甲基化產(chǎn)物,表現(xiàn)為甲基化和非甲基化狀態(tài)并存,而對(duì)照組未見(jiàn)擴(kuò)增產(chǎn)物(圖1)。實(shí)驗(yàn)得出,HCC細(xì)胞株中SLIT2基因啟動(dòng)子呈完全甲基化狀態(tài),去甲基化制劑5-Aza-CdR能使SLIT2基因異常高甲基化狀態(tài)得到一定程度的逆轉(zhuǎn),使該基因啟動(dòng)子表現(xiàn)為部分甲基化現(xiàn)象,有效降低該基因甲基化程度。
2.2 SLIT2基因 mRNA的表達(dá) 以5-Aza-CdR干預(yù)前,SUN449、BEL-7402、Hep3B 細(xì)胞株中SLIT2 mRNA微弱表達(dá)甚至不表達(dá),以10 mmol/L 濃度的5-Aza-CdR干預(yù)各細(xì)胞后,3種細(xì)胞株RT-PCR結(jié)果均出現(xiàn)明顯產(chǎn)物條帶,表明此3種HCC細(xì)胞株中異常高甲基化狀態(tài)的SLIT2基因轉(zhuǎn)錄受到抑制,異常高甲基化狀態(tài)得到逆轉(zhuǎn)后重新獲得mRNA的表達(dá)能力;在HCC細(xì)胞株SMMC-7721和HepG2中,5-Aza-CdR干預(yù)前后均可見(jiàn)mRNA表達(dá)(圖2)。
神經(jīng)生長(zhǎng)導(dǎo)向因子2(SLIT2)基因被認(rèn)為是候選抑癌基因[3],是SLIT-ROBO基因家族成員之一,該基因家族編碼的膜相關(guān)蛋白與ROBO相關(guān)基因表達(dá)的蛋白相互作用,發(fā)揮配體功能[4],主要介導(dǎo)炎性趨化、細(xì)胞和凋亡、血管內(nèi)皮的生成和移動(dòng)[5]。SLIT2基因啟動(dòng)子異常高甲基化已在多系統(tǒng)腫瘤中被發(fā)現(xiàn)。本課題組前期實(shí)驗(yàn)證實(shí)SLIT2在HCC組織標(biāo)本中甲基化率為78%[6],在SUN449、BEL-7402、SMMC-7721、Hep3B和HepG2細(xì)胞株中均出現(xiàn)完全甲基化,甲基化率為100%,推測(cè)SLIT2基因異常甲基化使基因表達(dá)沉默可能在HCC的發(fā)生及侵襲、轉(zhuǎn)移過(guò)程中起重要作用,提示SLIT2可能是HCC的靶基因。
DNA異常甲基化為表觀(guān)遺傳學(xué)變化[7],其在原基因堿基排列順序不變的基礎(chǔ)上,通過(guò)加減甲基的方式改變基因結(jié)構(gòu),從而使改變后的基因表達(dá)發(fā)生變化,開(kāi)啟或關(guān)閉基因的表達(dá)行為,這就使對(duì)某些腫瘤相關(guān)基因,如抑癌基因的調(diào)控,改變其遺傳特性作為治療腫瘤的手段成為可能。甲基化調(diào)節(jié)劑能上調(diào)或下調(diào)基因甲基化水平,5-AZA-CdR為核苷類(lèi)甲基化調(diào)節(jié)劑,主要作用于細(xì)胞周期的S期[8],其機(jī)制主要通過(guò)特異性抑制DNA甲基轉(zhuǎn)移酶活性阻斷其甲基化反應(yīng)[9],下調(diào)基因甲基化狀態(tài)而被研究用于抑制腫瘤的生長(zhǎng),其在間質(zhì)性腫瘤中的基礎(chǔ)和臨床研究已初見(jiàn)成效,并逐漸被推廣至實(shí)性腫瘤的研究中,Liu 等[10]用5-AZA-CdR干預(yù)中國(guó)視網(wǎng)膜母細(xì)胞瘤細(xì)胞株HXO-RB44發(fā)現(xiàn),藥物干預(yù)后HXO-RB44 抑癌相關(guān)基因RASSF1A甲基化率明顯降低,且能抑制細(xì)胞生長(zhǎng)、誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。Ma等[11]同時(shí)檢測(cè)了肺癌癌旁組織及肺癌細(xì)胞株,發(fā)現(xiàn)Syk基因在肺癌細(xì)胞株異常高甲基化同時(shí)表達(dá)沉默,癌組織較癌旁組織Syk表達(dá)明顯降低,4 μmol/L的5-Aza-CdR使異常高甲基化狀態(tài)的Syk得到逆轉(zhuǎn)而重新表達(dá)。Mirza等[12]用5-AZA-CdR聯(lián)合PTX、ADR、5-FU對(duì)MDA、MB231 和MCF-7乳腺癌細(xì)胞株進(jìn)行干預(yù),發(fā)現(xiàn)聯(lián)合10 μmol/L的5-Aza-CdR能增強(qiáng)化療藥物的作用,藥物聯(lián)合使用較單用5-Aza-CdR更顯著降低 SLIT2基因的甲基化水平。
Liu等[13]研究發(fā)現(xiàn)5-Aza-CdR處理HCC細(xì)胞株Huh7后誘導(dǎo)甲硫氨酸腺苷轉(zhuǎn)移酶-1A基因mRNA轉(zhuǎn)錄及相應(yīng)蛋白表達(dá),同時(shí)通過(guò)下調(diào)Bcl-2、上調(diào) Bax 和Caspase-3抑制細(xì)胞生長(zhǎng)。黃鈾新等[14]用不同濃度的5-Aza-CdR作用HepG2細(xì)胞后,RT-PCR、Western blot分別檢測(cè)DLK1基因及蛋白的表達(dá)水平,用MTT、Transwell和流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)HepG2細(xì)胞的生長(zhǎng)、侵襲性變化,發(fā)現(xiàn)處理后DLK1 mRNA及蛋白表達(dá)量均降低;HepG2細(xì)胞生長(zhǎng)、增殖、侵襲能力得到抑制。在本實(shí)驗(yàn)中,對(duì)5種HCC細(xì)胞株進(jìn)行多種基因的去甲基化檢測(cè),發(fā)現(xiàn)SLIT2基因在5種HCC細(xì)胞株中均出現(xiàn)甲基化產(chǎn)物條帶而無(wú)非甲基化產(chǎn)物條帶,提示SLIT2基因啟動(dòng)子區(qū)域在五種HCC細(xì)胞株中為完全甲基化,甲基化狀態(tài)相同,證實(shí)SLIT2基因啟動(dòng)子區(qū)域在五種HCC細(xì)胞株中均呈異常高甲基化現(xiàn)象,提示SLIT2基因異常甲基化在肝癌細(xì)胞株中為普遍現(xiàn)象,SLIT2基因異常甲基化預(yù)示腫瘤的發(fā)生,為肝癌發(fā)生的表觀(guān)遺傳學(xué)特征之一。用去甲基化制劑5-Aza-CdR處理各HCC細(xì)胞株后,SLIT2基因甲基化和非甲基化產(chǎn)物條帶同時(shí)出現(xiàn),提示SLIT2基因異常甲基化得部分到逆轉(zhuǎn)。同時(shí)在轉(zhuǎn)錄水平應(yīng)用RT-PCR方法檢測(cè)去甲基化處理后SLIT2基因再表達(dá)情況,RT-PCR顯示處理前SLIT2 mRNA不表達(dá)或低表達(dá),而處理后其產(chǎn)物表達(dá)則明顯增加。SLIT2基因去甲基化伴隨著轉(zhuǎn)錄水平的上調(diào),說(shuō)明兩者存在著內(nèi)在關(guān)聯(lián),可以認(rèn)為該基因在肝癌細(xì)胞株中異常高甲基化導(dǎo)致了基因表達(dá)沉默,甲基化水平得到逆轉(zhuǎn)后又部分恢復(fù)了轉(zhuǎn)錄表達(dá)水平,從而部分開(kāi)放了基因功能。本實(shí)驗(yàn)5-Aza-CdR通過(guò)甲基化調(diào)節(jié)作用誘導(dǎo)SUN449、 BEL-7402、Hep3B 3種細(xì)胞株中原本微弱表達(dá)甚至低表達(dá)的SLIT2 mRNA 重新表達(dá),與文獻(xiàn)報(bào)道相符,但SMMC-7721和HepG2 細(xì)胞株中處理前后均出現(xiàn)明顯條帶,未得出5-Aza-CdR干預(yù)前后對(duì)轉(zhuǎn)錄的影響,原因可能是缺乏定量或半定量數(shù)據(jù)顯示表達(dá)變化,也可能有其他遺傳學(xué)及表觀(guān)遺傳學(xué)機(jī)制參與抑癌相關(guān)基因的調(diào)控,下一步研究擬運(yùn)用定量及半定量的方法,設(shè)置藥物的濃度梯度干預(yù)判定去甲基化干預(yù)效果,另外尋找基因去甲基化修飾與其他表觀(guān)遺傳學(xué)變化之間的內(nèi)在聯(lián)系,進(jìn)一步探討HCC去甲基化干預(yù)的潛在臨床應(yīng)用價(jià)值。
[1] Shariff MI, Cox IJ, Gomaa AI,et al.Hepatocellular carcinoma: current trends in worldwide epidemiology, risk factors, diagnosis and therapeutics[J].Expert Rev Gastroenterol Hepatol,2009,3(4):353-367
[2] 董桂銀, 錢(qián)葉本, 耿小平,等. 肝細(xì)胞癌中SLIT2基因甲基化狀態(tài)研究[J]. 肝膽外科雜志, 2006, 14(1): 62-65.
[3] Singh RK, Indra D, Mitra S, et al.Deletions in chromosome 4 differentially associated with the development of cervical cancer: evidence of slit2 as a candidate tumor suppressor gene[J].Hum Genet, 2007,122(1):71-81.
[4] Brose K, Bland KS, Wang KH, et al. Slit proteins bind robo receptors and have an evolutionarily conserved role in repulsive axon guidance[J]. Cell, 1999,96(6):795-806.
[5] Liu D, Hou J, Hu X,et al. Neuronal chemorepellent Slit2 inhibits vascular smooth muscle cell migration by suppressing small GTPase Rac1 activation[J]. Circ Res, 2006,98(4):480-489.
[6] 李培坤, 耿小平, 朱立新,等. HCC細(xì)胞株中SLIT2、DAPK、RIZ1、CHFR、EDNRB、3-OST-2基因甲基化狀態(tài)的研究[J].安徽醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào), 2010,46(5):412-415.
[7] Ozen C, Yildiz G, Dagcan AT,et al.Genetics and epigenetics of liver cancer[J]. N Biotechnol, 2013,30(4):381-4.
[8] Momparler RL. Pharmacology of 5-Aza-20-deoxycytidine (decitabine)[J]. Semin Hematol, 2005,42(3 Suppl 2):S9-16.
[9] 李培坤,耿小平,朱立新. DNA甲基化抑制劑研究進(jìn)展[J].國(guó)際藥學(xué)研究雜志,2010,37(3):198-202.
[10]Liu R,Zhang XH,Zhang K, et al. 5-Aza-2′-deoxycytidine inhibits retinoblastoma cell by reactivating epigenetically silenced RASSF1A gene[J]. Int J Ophthalmol,2014,7(1):51-56.
[11]Ma L, Dong S, Zhang P, et al.The relationship between methylation of the Syk gene in the promoter region and the genesis of lung cancer[J]. Clin Lab, 2010,56(9-10):407-416.
[12]Mirza S, Sharma G, Pandya P, et al. Demethylating agent 5-aza-2-deoxycytidine enhances susceptibility of breast cancer cells to anticancer agents[J]. Mol Cell Biochem, 2010,342(1-2):101-109.
[13]Liu WJ,Ren JG,Li T,et al, 5-Aza-2-deoxycytidine induces hepatoma cell apoptosis via enhancing methionine adenosyltransferase 1A expression and inducing S-adenosylmethionine production[J]. Asian Pac J Cancer Prev,2013,14(11):6433-6438.
[14]黃鈾新,羅耀玲,劉瑤.5-Aza-CdR抑制HepG2細(xì)胞DLK1基因表達(dá)及細(xì)胞生長(zhǎng)[J].基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床,2013,8(33):215-219.
(2014-10-11 收稿 2014-12-21 修回)
5-Aza-CdR induces demethylation of SLIT2 gene in human hepatoma cell lines
LiPeikun,GengXiaoping
DepartmentofGeneralSurgery,theSecondAffiliatedHospitalofAnhuiMedicalUniversity,Hefei230601,China
Objective To investigate the effect of 5-Aza-CdR on methylation state and transcription of SLIT2 gene in hepatocellular carcinoma cell lines, and to discuss mechanism of SLIT2 gene silencing in 5 human hepatoma cell lines as well as the effect of demethylation agent on its expression.MethodsAll cell lines of SUN449, BEL-7402, SMMC-7721, Hep3B and HepG2 were cultured in vitro and treated with 10 mmol/L 5-Aza-CdR. The promoter methylation state of SLIT2 gene and the mRNA expression of SLIT2 gene in the 5 hepatoma cell lines before and after 5-Aza-CdR treatment were detected by methylation-specific PCP (MSP) and reverse transcription-PCR (RT-PCR), respectively.ResultsPromoter hypermethylation of SLIT2 gene was detected in all 5 hepatoma cell lines and SLIT2 gene was expressed at a low level before 5-Aza-CdR treatment. After treated with demethylation agent 5-Aza-CdR, the promoter region of SLIT2 gene exhibited demethylation state, and gene expression increased significantly at mRNA level.ConclusionPromoter hypermethylation is a main mechanism of SLIT2 gene silencing in 5 human hepatoma cell lines, and could be reversed by demethylation agent 5-Aza-CdR.
5-Aza-CdR; Hepatocellular carcinoma; SLIT2 gene; DNA methylation
安徽省科技攻關(guān)計(jì)劃面上項(xiàng)目 (編號(hào):08010302191)
230601 合肥 安徽醫(yī)科大學(xué)第二附屬醫(yī)院普外科
10.3969/j.issn.1000-0399.2015.02.002