羅明志 曾慧龍 潘 艷 劉 磊 鄧林紅 商 澎
碳納米管(CNT)獨特的力學及化學性質使其在材料、信息、能源及生物醫(yī)學等領域都有巨大的應用價值[1-3]。隨著CNT的廣泛應用,其生物安全性也引起廣泛關注[4]。CNT進入人體后在體內駐留時間長達90 d。有研究[5]表明,CNT可誘導小鼠肺部炎癥和纖維化。CNT進入人體后會在骨組織富集,而在大量骨組織工程材料中加入CNT[6],可增加其力學性能,但CNT對成骨細胞功能的影響有待進一步研究[7]。
基于多壁碳納米管(MWCNT)的剛性特性,它吸附至細胞膜表面必將影響細胞膜剛度和流動性,從而改變細胞生物力學特性。而細胞運動過程涉及細胞骨架重構和細胞膜流動,細胞生物力學特性對該過程具有重要影響。因此,本實驗中我們假設MWCNT吸附可影響細胞的遷移特性,研究MWCNT分散方法,并通過原子力顯微鏡和劃痕實驗探究MWCNT分散對成骨細胞吸附及細胞遷移的影響。
MWCNT購自南京先豐納米材料科技有限公司,直徑8~15 nm,長度50 m。采用掃描電鏡觀察MWCNT未分散時的形態(tài)及其元素組成和含量,采用含0.6%牛血清白蛋白(BSA)的最低營養(yǎng)培養(yǎng)基(MEM)懸浮 MWCNT,采用超聲波細胞破碎儀(40 W)超聲分散 MWCNT5 min(超聲分散3秒,間隔3秒),采用動態(tài)光散射儀和投射電鏡評價其分散情況。
將小鼠MC3T3-E1成骨細胞(購自中國科學院上海細胞庫)培養(yǎng)于含10%胎牛血清(FBS)(美國Hyclone公司)、雙抗(青霉素、鏈霉素,100 IU/mL)的MEM培養(yǎng)基中,置于含5%CO2、飽和水蒸汽的培養(yǎng)箱(37℃)中培養(yǎng)。
收集 MC3T3-E1細胞,以8×104個/cm2接種至六孔板,12 h后用白色槍頭劃線,磷酸鹽緩沖液洗滌3次后添加MEM,加入MWCNT分散液(終濃度100 g/mL)后置入活細胞工作站(德國Leica公司)培養(yǎng),每隔5 min拍照。隨機選取30個細胞,用Gradientech Tracking分析系統(tǒng)對MC3T3-E1細胞的遷移距離、速度和方向進行分析。
采用輕敲模式原子力顯微鏡(德國JPK公司)在空氣中對細胞進行掃描。初始掃描范圍為100 m×100 m,然后縮小掃描范圍至10 m×10 m,觀測細胞表面的微觀結構,記錄原子力顯微鏡三維圖。
全部數(shù)據(jù)采用Prism5.0統(tǒng)計學軟件進行統(tǒng)計分析,結果以均數(shù)±標準差表示,采用t檢驗比較實驗組與對照組之間差異,以P<0.05為有統(tǒng)計學意義。
采用掃描電鏡觀察 MWCNT粉體(圖1a)純度、長度和寬度等基本參數(shù),能譜分析結果顯示MWCNT的主要元素為碳和氧,含量達95%(表1),直徑15 nm,長度為50 m(圖1b)。將經超聲波處理的MWCNT分散液放置于4℃環(huán)境中2周,結果無明顯沉淀(圖1c),動態(tài)光散射儀檢測結果為(180.20±16.23)nm。投射電鏡觀察發(fā)現(xiàn) MWCNT分散較好,但其長度明顯變短(圖1d)。
表1 MWCNT掃描電鏡能譜分析結果
表1 MWCNT掃描電鏡能譜分析結果
?
圖1 MWCNT顆粒及其分散后的形態(tài) a、b.未分散的MWCNT c.MWCNT分散液 d.分散的MWCNT
采用劃痕實驗檢測MWCNT對成骨細胞遷移的影響,光學顯微鏡(×10)觀察發(fā)現(xiàn)與對照組相比,MWCNT處理組劃痕區(qū)域遷入細胞較少(圖2a~2d)。采用Image Pro Plus 6.0軟件對其空白區(qū)域面積進行分析,結果顯示對照組愈合率為80%,而MWCNT處理組愈合率為45%(P<0.01)。
圖2 采用劃痕實驗檢測MWCNT對成骨細胞遷移的影響,光學顯微鏡觀察對照組、MWCNT處理組在0h(a、b)和12 h(c、d)時的細胞遷移(標尺=100 m)
采用Gradientech Tracking軟件對細胞的遷移特性進行分析,結果顯示與對照組相比(圖3a),MWCNT處理組細胞遷移距離明顯較少(圖3b),其遷移距離從 172.52 m 下降至 129.80 m(P<0.01),直線距離從(88.50±11.65)m 下降至(55.20±8.50)m (P < 0.01),遷 移 速 度 從0.3 m/min下降至0.2 m/min(P<0.01),差異均有統(tǒng)計學意義。
MWCNT處理 MC3T3-E1成骨細胞12 h后,原子力顯微鏡觀察細胞表面形態(tài),結果顯示細胞表面依然吸附大量的MWCNT(圖4)。
圖3 采用Gradientech Tracking軟件分析細胞遷移特性,對照組(a)與 MWCNT處理組(b)細胞遷移軌跡
圖4 原子力顯微鏡檢測MWCNT對成骨細胞的吸附作用 a.對照組 b.MWCNT處理組
體內外實驗研究[8-9]表明,MWCNT 的分散特性對其生物學效應具有根本性影響。用于細胞實驗的MWCNT分散方法是目前研究的熱點,基礎培養(yǎng)液、完全培養(yǎng)基、表面活性劑等被用于分散MWCNT[10-11]。本實驗采用含0.6%BSA 的完全培養(yǎng)基分散MWCNT,動態(tài)光散射儀和投射電鏡觀察顯示分散效果較好,但投射電鏡觀察發(fā)現(xiàn)分散后MWCNT長度為1 m以下,提示超聲分散可顯著降低MWCNT長度。
MWCNT對成骨細胞的影響已有報道[12]。研究表明,在未修飾的MWCNT表面可直接培養(yǎng)細胞[13],在細胞外基質或組織工程支架材料中添加MWCNT可促進成骨細胞分化和骨損傷修復[14]。但溶液中分散的MWCNT對成骨細胞遷移特性的影響研究少見報道。本實驗研究發(fā)現(xiàn),100 g/mL的MWCNT可顯著抑制成骨細胞遷移,進一步分析顯示細胞遷移距離降低,遷移速度下降。
MWCNT對細胞毒性作用的機制已有大量報道,其中氧化應激機制是其重要途徑,但也有研究表明MWCNT對細胞的吸附可能也會影響細胞的生理功能。CNT可誘導腫瘤細胞原癌基因c-Myc表達,從而抑制ABC轉運蛋白表達,但這種作用可能不是通過氧化應激發(fā)生作用,而是通過與細胞膜相互作用引起[10]。有研究[15]表明,MWCNT 可引起細胞骨架解聚,導致細胞膜重構。在本實驗中,MWCNT大量吸附于細胞表面,而CNT可改變細胞膜剛度[16],因此我們推測 MWCNT可能通過吸附作用改變細胞生物力學特性,從而影響細胞遷移,但具體機制有待進一步研究。
[1] Tsukahara T,Matsuda Y,Usui Y,et al.Highly purified,multi-wall carbon nanotubes induce light-chain 3B expression in human lung cells[J].Biochem Biophys Res Commun,2013,440(2):348-353.
[2] Pryzhkova MV,Aria I,Cheng Q,et al.Carbon nanotube-based substrates for modulation of human pluripotent stem cell fate[J].Biomaterials,2014,35(19):5098-5109.
[3] Mohammadi M,Salmasi Z,Hashemi M,et al.Single-walled carbon nanotubes functionalized with aptamer and piperazine-polyethylenimine derivative for targeted siRNA delivery into breast cancer cells[J].Inte J Pharm,2015,485(1-2):50-60.
[4] Visalli G,Bertuccio MP,Iannazzo D,et al.Toxicological assessment of multi-walled carbon nanotubes on A549 human lung epithelial cells[J].Toxicol Vitro,2015,29(2):352-362.
[5] Sager TM,Wolfarth MW,Battelli LA,et al.Investigation of the pulmonary bioactivity of double-walled carbon nanotubes[J].J Toxicol Environ Health A,2013,76(15):922-936.
[6] Rodriguez-Yanez Y,Bahena-Uribe D,Chavez-Munguia B,et al.Commercial single-walled carbon nanotubes effects in fibrinolysis of human umbilical vein endothelial cells[J].Toxicol Vitro,2015,[Epub ahead of print].
[7] Tonelli FM,Santos AK,Gomes KN,et al.Carbon nanotube interaction with extracellular matrix proteins producing scaffolds for tissue engineering[J].Int J Nanomedicine,2012,7:4511-4529.
[8] Wang X,Xia T,Ntim SA,et al.Quantitative techniques for assessing and controlling the dispersion and biological effects of multiwalled carbon nanotubes in mammalian tissue culture cells[J].ACS Nano,2010,4(12):7241-7252.
[9] Liu D,Wang L,Wang Z,et al.Different cellular response mechanisms contribute to the length-dependent cytotoxicity of multi-walled carbon nanotubes[J].Nanoscale Res Lett,2012,7(1):361.
[10] Wang Z,Xu Y,Meng X,et al.Suppression of c-Myc is involved in multi-walled carbon nanotubes’down-regulation of ATP-binding cassette transporters in human colon adenocarcinoma cells[J].Toxicol Appl Pharmacol,2015,282(1):42-51.
[11] Liu WT,Bien MY,Chuang KJ,et al.Physicochemical and biological characterization of single-walled and double-walled carbon nanotubes in biological media[J].J Hazard Mater,2014,280:216-225.
[12] Zhang F,Weidmann A,Nebe JB,et al.Osteoblast cell response to surface-modified carbon nanotubes[J].Mater Sci Eng C,2012,32(5):1057-1061.
[13] Emohare O,Rushton N.Immobilized MWCNT support osteogenic cell culture[J].J Mater Sci Mater Med,2013,24(6):1543-1550.
[14] Barrientos-Duran A,Carpenter EM,Zur-Nieden NI,et al.Carboxyl-modified single-wall carbon nanotubes improve bone tissue formation in vitro and repair in an in vivo rat model[J].Int J Nanomedicine,2014,9:4277-4291.
[15] Umemoto EY,Speck M,Shimoda LM,et al.Single-walled carbon nanotube exposure induces membrane rearrangement and suppression of receptor-mediated signalling pathways in model mast cells[J].Toxicol Lett,2014,229(1):198-209.
[16] Berntsen P,Park CY, Rothen-Rutishauser B,et al.Biomechanical effects of environmental and engineered particles on human airway smooth muscle cells[J].J R Soc Interface,2010,7(Suppl 3):S331-S340.