国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

SIRT1基因的表達調控及對動物脂類代謝的功能

2015-03-19 21:54郁建鋒張燕萍顧志良
常熟理工學院學報 2015年4期
關鍵詞:脂類乙酰化調控

邵 芳,郁建鋒,張燕萍,顧志良

(1.南京醫(yī)科大學附屬常州第二人民醫(yī)院 腫瘤研究所,江蘇 常州 213003;2.常熟理工學院 生物與食品工程學院,江蘇 常熟 215500)

動物體內脂肪組織數(shù)量反映了體內能量分配、貯存和消耗的狀態(tài).脂肪組織的生長是通過脂肪細胞數(shù)目的增加和脂肪細胞體積的增大來進行的.肝臟是動物能量、脂類代謝的重要場所,在脂類的消化、吸收、合成、分解和轉運等過程中起重要作用.肝臟是調控脂類代謝包括脂肪酸β氧化、脂生成、脂蛋白生成和分泌以及對營養(yǎng)狀態(tài)和激素信號反應等重要方面的場所,對于維持體內系統(tǒng)能量平衡至關重要.SIRT1是Sirtuin家族的一個成員,一種NAD+-依賴性蛋白去乙酰化酶,在調控不同代謝過程中起著重要的作用.在對哺乳動物的研究中表明,SIRT1是脂類穩(wěn)態(tài)的一個重要調節(jié)因子,并且對脂肪酸的氧化也起作用.本文將對SIRT1基因的表達調控和對脂類代謝功能研究進行綜述.

1 Sirtuin家族的組成

沉默信息調節(jié)因子(Silent Information Regulator 2,SIR2)是新發(fā)現(xiàn)的組蛋白去乙?;?,對酵母衰老的研究發(fā)現(xiàn)SIR2參與了酵母交配型基因、端粒區(qū)基因和rDNA沉默,并抑制rDNA的重組,增加1個拷貝的SIR2基因可延長酵母的壽命,延緩其衰老[1].迄今為止在研究的所有物種中,除極少數(shù)原核生物外,都發(fā)現(xiàn)了SIR2的同源基因,且這些基因具有高度的保守性[2-3].SIR2蛋白和它的同源物Sirtuin是一類依賴于NAD+、核心區(qū)域高度保守的蛋白去乙?;福ɑ颍〢DP核糖基轉移酶[4-6],可被煙酰胺(Nicotinamide)、Sirtinol、Splitomi?cin等抑制,這類酶及其相關蛋白統(tǒng)一命名為Sirtuin[1-2,7-8].Sirtuin具有依賴于NAD+的組蛋白去乙酰化酶活性,將組蛋白去乙酰化,NAD+作為反應底物,產生煙酰胺和O-乙?;?ADP核糖,后者作為一種信號因子,攜帶從組蛋白上脫下來的乙酰基[9].Sirtuin的催化核心由NAD+結合域和小亞結構域組成,NAD+結合域由Ross?mann折疊構成,小亞結構域由一個螺旋構件和一個鋅結合(zinc-binding)構件組成.大小結構域之間形成了一個大溝,為NAD+提供結合位點,乙酰化肽在這個裂縫里結合形成酶-底物的折疊結構而發(fā)生催化反應[10].Sir?tuin蛋白家族參與了糖脂代謝、壽命調控、應激反應、炎癥反應、腫瘤形成等一系列生理病理過程[11-12].哺乳動物Sirtuin蛋白家族有7個成員(SIRT1~SIRT7),它們都具有高度保守的NAD+結合域和催化功能域[2,4],不同的N端和C端可使它們能夠結合不同的底物.SIRT1是Sirtuin蛋白家族成員之一,SIRT1通過與p53[13]、Ku70[14]、FOXOs[15-17]、PGC-1A[18]、p300[16,19]和 H1、H3、H4等不同的非組蛋白和組蛋白相互作用來發(fā)揮不同的功能.

2 SIRT1基因與脂類代謝

SIRT1是Sirtuin家族中研究最多的一個成員,它除了可以使組蛋白去乙?;?,還可以對很多重要的轉錄因子和調節(jié)蛋白去乙?;?,從而調控多種生物學過程,其中研究較多的是SIRT1基因調控肝臟、脂肪、肌肉、胰島和腦等器官中的糖脂代謝.

肝臟是響應營養(yǎng)物質和激素信號的主要糖脂代謝器官之一.近來的研究顯示,SIRT1廣泛地參與了肝臟的糖脂代謝.在短期禁食時,SIRT1可以抑制糖異生關鍵因子TORC2,從而抑制糖異生,降低血糖濃度.而在長期饑餓的條件下,SIRT1去乙?;⒓せ頟GC1-α和PPARα,促進脂肪酸的氧化并改善葡萄糖穩(wěn)態(tài)[18,20].在長期絕食狀態(tài)下,SIRT1還可以使FOXO1、STAT3等去乙?;龠M糖異生并抑制糖酵解[21-22].肝細胞中SIRT1還參與胰島素敏感性的調控[20,23].在肝臟中利用腺病毒過表達SIRT1能夠緩解肥胖小鼠的內質網應激,改善胰島素敏感性,同時還能緩解脂肪肝[24].此外,SIRT1還可以通過使CREB去乙酰化,從而調節(jié)糖脂代謝[25].利用腺病毒干擾SIRT1載體降低小鼠肝臟中SIRT1的表達,會導致饑餓狀態(tài)時脂肪酸氧化相關基因的表達降低.特異性地在小鼠肝臟中敲除SIRT1基因的第4個外顯子會導致小鼠肝臟表達一種酶活性缺失的SIRT1蛋白,這種小鼠在用高脂飲食誘導肥胖時肝臟的脂肪酸氧化能力變弱,更容易出現(xiàn)高脂飲食誘導的異常脂蛋白血癥、脂肪肝、炎癥反應和內質網應激[20],敲除小鼠肝臟中SIRT1基因的第5和第6個外顯子則導致小鼠在正常飲食的狀態(tài)下就會出現(xiàn)脂肪肝[26-27].SIRT1還可以調節(jié)LXR(Liver X receptor)、FXR(Farne?soid X receptor)和SREBP等轉錄因子進而調節(jié)脂類和膽固醇代謝[27-29].LXR和FXR是膽固醇和膽酸的重要感受器,它們都能被SIRT1去乙?;せ?SREBP是脂質和膽固醇合成的關鍵調節(jié)蛋白,它們同樣也能被SIRT1去乙酰化[29-30].小分子化合物白藜蘆醇(RES)是一種多酚類物質,它可以上調SIRT1的酶活性,用RES處理小鼠能夠抵抗高脂飲食引起的肥胖和代謝綜合征[31-33].盡管RES是直接激活SIRT1,還是通過其他信號通路來間接激活SIRT1還存在爭議[34],但是這些研究都顯示SIRT1可以調節(jié)脂質代謝.RES能夠增加SIRT1的酶活力,體內和體外實驗都表明,這些化合物能夠抑制SREBP下游基因的表達.

肌肉中的SIRT1參與糖脂代謝,也可通過去乙?;瘉砘罨疨GC1-α,從而促進線粒體中的脂肪酸氧化[35].PGC1-α和線粒體中的OXPHOS基因在胰島素抵抗或者II型糖尿病患者的骨骼肌中的表達是下降的,SIRT1對PGC1-α等的激活可能參與了胰島素敏感性的改善[36].PTP1B是一種蛋白酪氨酸磷酸酯酶,是胰島素信號通路的負調節(jié)蛋白,PTP1B缺失的小鼠的胰島素敏感性要高于野生型,并且對于高脂誘導的肥胖有抵抗作用[37].在肌肉細胞中,SIRT1可以通過抑制PTP1B的轉錄和表達而增強胰島素敏感性[23].此外,肌肉組織中的SIRT1可以通過使STAT3去乙酰化,增強PI3K信號通路,從而增強胰島素敏感性[38].

白色脂肪組織是儲存脂肪和分泌脂肪因子的主要場所,脂肪細胞分泌的瘦素(leptin)和脂聯(lián)素(adipo?nectin)調控著能量平衡、葡萄糖和脂肪酸的代謝.在很多與脂肪細胞分化相關的因子中,核受體PPARγ在調節(jié)脂肪酸的儲存和葡萄糖代謝中扮演著重要的角色[39],SIRT1可以抑制PPARγ活性,從而減少脂質儲存[40].

3 SIRT1基因的表達調控

作為一個重要的細胞內調控蛋白,SIRT1自身的表達和活性也受到精細的調控,包括在SIRT1基因的轉錄水平、轉錄后水平、SIRT1核-漿穿梭變化以及翻譯后水平的表達和活性都是受到調控的.p53是細胞中重要的腫瘤抑制因子,當機體處在不同應激條件下,具有廣泛的抗增殖效應,包括生長停滯、凋亡和細胞衰老.p53可以負性調節(jié)SIRT1轉錄,研究發(fā)現(xiàn),在p53-/-小鼠脂肪組織細胞中,SIRT1 mRNA的表達量增高.在其他多種組織細胞和p53-/-腫瘤細胞系中,同樣發(fā)現(xiàn)SIRT1轉錄水平增加的現(xiàn)象.然而,在過夜禁食的p53-/-小鼠模型中,肝臟、骨骼肌等組織中的SIRT1 mRNA水平并沒有明顯增加[41].這提示在營養(yǎng)正常條件下,p53對SIRT1的轉錄起到的是抑制性作用.在饑餓條件下,SIRT1的表達量本應增加,而在p53缺失情況下,這種表達增加受到抑制[41],這與p53和FOXO3a之間的相互作用有關.進一步研究發(fā)現(xiàn),p53對SIRT1轉錄水平的抑制作用是通過其結合到SIRT1啟動子上兩個反應元件產生的,并且受到啟動子上3個25 bp的串聯(lián)拷貝的控制[41].SIRT1與p53的相互作用還存在著一條反饋通路,SIRT1可以使p53賴氨酸382位去乙?;筽53活性降低、穩(wěn)定性下降,抑制p53在DNA損傷或氧化應激時的作用,導致依賴于p53的CDKN1A和BAX的轉錄受到抑制,同時由于p53功能下調,其對SIRT1轉錄的抑制作用將減弱[13,42].FOXO3a對SIRT1轉錄水平的調節(jié)主要通過其與p53分子的相互作用.FOXO3a與p53具有許多相同的轉錄靶點,并存在相互交叉的作用,共同參與對SIRT1的調節(jié)[15].FOXO3a上調SIRT1表達對其自身的功能也有影響.SIRT1可以催化FOXO3a去乙?;蛊鋬A向于促進細胞周期調控相關的下游靶基因p27kip和DNA修復相關的下游靶基因GADD45表達,而抑制凋亡相關的下游靶基因Bim、Fas配體的表達[16].HIC1可以通過其氨基末端的POZ結構域與SIRT1發(fā)生相互作用,并和CtBP(C terminal binding protein)共同構成轉錄抑制復合物,三者共同結合在SIRT1基因的上游啟動子元件,抑制SIRT1的轉錄,這樣就形成了一條由SIRT1自身參與的轉錄抑制調控通路[43].HIC1-CtBP復合物對于細胞內的氧化還原狀態(tài)敏感度高,當2-脫氧葡萄糖抑制糖酵解途徑時,CtBP和SIRT1與HIC1分離,此時SIRT1轉錄水平增加,而低氧狀態(tài)則會導致SIRT1的轉錄水平下降[44].HIC1與SIRT1之間還存在著反饋抑制作用,SIRT1可以對HIC1的314位賴氨酸去乙?;M而促進314位賴氨酸的SUMO化,而這一修飾恰恰使HIC1復合物的功能抑制,進而減弱HIC1抑制SIRT1轉錄的作用[45].

在SIRT1基因的啟動子區(qū)有兩個E2F1結合位點,E2F1與這兩個位點結合對SIRT1基因轉錄起正向調節(jié)作用.當細胞發(fā)生DNA損傷時,E2F1的穩(wěn)定性增加,SIRT1在E2F1的誘導作用下表達量增加.在該過程中,ATM(Ataxia telangiectasia mutated)對E2F1的磷酸化作用是必不可少的[46],但通常情況下,E2F1介導的SIRT1轉錄水平增高是短暫的.隨著SIRT1的進一步積累,E2F1也會成為SIRT1的底物發(fā)生去乙?;D錄活性得到抑制.不僅E2F1對SIRT1的激活是短暫的,目前發(fā)現(xiàn)在應激條件下,對于SIRT1的絕大多數(shù)激活過程都是非常短暫的.多數(shù)學者認為,E2F1對SIRT1的短暫激活可以使細胞在應對DNA損傷時行使高效的修復功能,而修復期過后將會繼續(xù)誘導損傷細胞的凋亡[46-47].

在轉錄后水平,同樣存在著多條調節(jié)途徑可以對SIRT1 mRNA的穩(wěn)定性產生影響.MicroRNA(miRNA)是一類新發(fā)現(xiàn)的長度大約為22個核苷酸(nt)的非編碼小RNA,miRNA的生物學功能涉及到生物的發(fā)育、分化、細胞凋亡、脂類代謝和癌癥等生物過程.同樣,SIRT1基因的表達也受到了miRNA的直接調控,從而影響SIRT1調控的生物學過程.目前,在人和哺乳動物中已經證明能直接與SIRT1 mRNA 3’-UTR結合,并在轉錄后水平上調控其表達的 miRNA,這些 miRNA 包括 miR-34a、miR-181a、miR-217、miR-22、miR-449a、miR-449、miR-143、miR-195、miR-132、miR-200a和 miR-204等[48].miR-34a是第一個被發(fā)現(xiàn)的能調控SIRT1 mRNA的microRNA,miR-34a通過與SIRT1 mRNA的3’-UTR結合,對SIRT1 mRNA的穩(wěn)定性起負性調控作用[49].miR-34a也通過調控SIRT1的表達進而影響細胞的代謝.miR-34a降低SIRT1表達量,使乙?;膒53及p53的靶基因p21和PUMA表達量增加,從而調控細胞周期和細胞凋亡.SIRT1直接與PGC-1α作用,使PGC-1α去乙?;?,說明SIRT1維持代謝的穩(wěn)態(tài)是通過調控PGC-1α實現(xiàn)的[50].FXR是肝臟代謝中的一個重要的因子,在HepG2細胞中抑制miR-34a的表達,肝細胞特異性敲除FXR可以增加miR-34a在肝臟中的表達.在飼喂日糧引起的肥胖小鼠和ob/ob肥胖小鼠的脂肪肝中,miR-34a的水平升高,而SIRT1下降[51].SIRT1還受到其他miRNA的直接作用.miR-204的下調通過激活SIRT1-LKB1通路而促進胃癌細胞的入侵,表明miR-204在胃癌擴散的調控中起重要的作用,而這與對SIRT1基因的轉錄后抑制有關[52].通過計算機程序分析發(fā)現(xiàn)人的miR-217與SIRT1 mRNA的3’-UTR之間存在配對位點,在內皮細胞中過表達miR-217能抑制SIRT1的表達.相反抑制miR-217能增加SIRT1的表達進而促進細胞的衰老[53].miR-9和miR-132分別通過調控SIRT1在胰臟和脂肪組織中的表達,miR-9能調控胰臟β-細胞中SIRT1的水平[54].在脂肪細胞中,miR-132的過表達降低SIRT1的表達,這將抑制p65NFκB的去乙?;餓L-8和MCP-1的誘導表達[48].從以上的研究和分析結果可以看出miRNA與SIRT1的關系是十分緊密的.

4 畜禽SIRT1基因及其功能

SIRT1基因的功能研究主要集中在小鼠和人,對于畜禽SIRT1的研究近來也有些報道.豬的Sirtuin基因家族也有7個成員.豬SIRT1-7在各種組織中都有表達,其中在腦、脊髓和生殖器中表達量高.用細胞雜交板技術將SIRT1-7分別定位在豬染色體的14q23、6q11-12、2q29、14q19、7p12、2q11和12p15上. 豬SIRT1基因全長31,834 bp,含9個外顯子,該基因的上游含TATA框、一個300 bp的CpG島以及幾個Sp1和p53的結合位點[55].用SIRT1-siRNA處理豬的脂肪細胞,SIRT1-siRNA能顯著抑制SIRT1的mRNA表達,同時促進FABP3基因的表達.進一步證明了在脂肪細胞中SIRT1負調控FABP3表達,并且這一過程受到PPARγ的介導[56].SIRT1和RES在豬前脂肪細胞凋亡中的作用還沒有被弄清,研究發(fā)現(xiàn)RES能誘導前脂肪細胞的凋亡并上調SIRT1蛋白的水平.有趣的是當SIRT1被干擾后也會導致前脂肪細胞凋亡,將RES誘導和SIRT1敲低對于促進豬前脂肪細胞的凋亡存在相加效應.SIRT1能提高caspase-3的剪接和降低P53的乙?;?這些數(shù)據(jù)表明,盡管RES處理上調SIRT1的表達,但促進豬前脂肪細胞的凋亡不依賴SIRT1[57].為了研究SIRT1能否影響脂肪中甘油三脂脂肪酶(ATGL)基因的轉錄,用SIRT1激活劑RES、SIRT1的抑制劑煙酰胺和SIRT1特異性的干擾小RNA(siRNA)處理豬的脂肪細胞.50 μMol/L的RES能激活SIRT1的基因的表達,增加ATGL基因的表達和甘油的釋放(P<0.01).抑制劑煙酰胺或用siRNA敲低,進一步證明當脂肪細胞中SIRT1降低后ATGL mRNA的豐度降低.還發(fā)現(xiàn)在脂肪細胞中SIRT1對于PPARγ與ATGL相反的結果.總之,在脂肪細胞中SIRT1調控ATGL的轉錄表達,PPARγ表現(xiàn)出在這一過程中起重要作用[58].研究了正在分化的牛前脂肪細胞和不同月齡背膘組織中SIRT1、FoxO1和PPARγ基因的時空表達,發(fā)現(xiàn)在背部脂肪中PPARγ表達升高,SIRT1和FoxO1表達下調.SIRT1在體內脂肪組織發(fā)育中起重要作用[59].Han等假設RES激活和煙酰胺抑制SIRT1作用于鵝肝細胞脂類代謝和細胞分化可能是通過mTOR信號通路進行的.通過研究表明RES和煙堿能明顯影響DNA的合成率、脂類的沉積、鵝的原代肝細胞中細胞周期進程、mTOR信號通路、脂類代謝相關基因的mRNA和蛋白含量.而且納巴霉素能降低煙堿在脂類沉積和細胞增殖中的作用,這些發(fā)現(xiàn)暗示SIRT1為mTOR信號的調節(jié)子,而且在肝細胞脂類代謝的調控中起重要作用[60].

5 展望

肝臟是重要的脂類代謝場所,在小鼠和其他哺乳動物的研究中發(fā)現(xiàn),SIRT1在肝臟的脂類代謝中具有調節(jié)作用,是調節(jié)脂類代謝的重要基因之一.在雞的脂類代謝中,脂類的合成主要在肝臟中完成.雖然SIRT1是生物中較為保守的基因,但是在禽類中,其在肝臟脂類代謝中的作用必定有其特點,那么雞SIRT1基因在雞肝細胞脂類代謝中是如何起作用的?SIRT1基因表達也是受到精細調控的,那么雞SIRT1基因的表達又是怎樣被調控的?miRNA通過對基因轉錄后的調控參與生物體的生長、發(fā)育等眾多生物學過程,雞SIRT1基因的3’-UTR受哪些miRNA調控?弄清雞SIRT1基因的表達調控機理,以及SIRT1基因在雞的肝臟脂類代謝中的功能對進一步認識SIRT1基因及其功能具有重要的意義.

[1]Blander G,Guarente L.The Sir2 family of protein deacetylases[J].Annu Rev Biochem,2004,73:417-435.

[2]Frye RA.Phylogenetic classification of prokaryotic and eukaryotic Sir2-like proteins[J].Biochem Biophys Res Commun,2000,273(2):793-798.

[3]Frye RA.Characterization of five human cDNAs with homology to the yeast SIR2 gene:Sir2-like proteins(sirtuins)metabolize NAD and may have protein ADP-ribosyltransferase activity[J].Biochem Biophys Res Commun,1999,260(1):273-279.

[4]Imai S,Armstrong CM,Kaeberlein M,et al.Transcriptional silencing and longevity protein Sir2 is an NAD-dependent histone deacetylase[J].Nature,2000,403(6771):795-800.

[5]Landry J,Sutton A,Tafrov ST,et al.The silencing protein SIR2 and its homologs are NAD-dependent protein deacetylases[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2000,97(11):5807-5811.

[6]Smith JS,Brachmann CB,Celic I,et al.A phylogenetically conserved NAD+-dependent protein deacetylase activity in the Sir2 pro?tein family[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2000,97(12):6658-6663.

[7]Jackson MD,Schmidt MT,Oppenheimer NJ,et al.Mechanism of nicotinamide inhibition and transglycosidation by Sir2 histone/pro?tein deacetylases[J].J Biol Chem,2003,278(51):50985-50998.

[8]Brachmann CB,Sherman JM,Devine SE,et al.The SIR2 gene family,conserved from bacteria to humans,functions in silencing,cell cycle progression,and chromosome stability[J].Genes Dev,1995,9(23):2888-2902.

[9]Borra MT,O'Neill FJ,Jackson MD,et al.Conserved enzymatic production and biological effect of O-acetyl-ADP-ribose by silent information regulator 2-like NAD+-dependent deacetylases[J].J Biol Chem,2002,277(15):12632-12641.

[10]Avalos JL,Celic I,Muhammad S,et al.Structure of a Sir2 enzyme bound to an acetylated p53 peptide[J].Mol Cell,2002,10(3):523-535.

[11]Guarente L.Sir2 links chromatin silencing,metabolism,and aging[J].Genes Dev,2000,14(9):1021-1026.

[12]Bishop NA,Guarente L.Genetic links between diet and lifespan:shared mechanisms from yeast to humans[J].Nat Rev Genet,2007,8(11):835-44.

[13]Vaziri H,Dessain SK,Ng Eaton E,et al.hSIR2(SIRT1)functions as an NAD-dependent p53 deacetylase[J].Cell,2001,107(2):149-159.

[14]Cohen HY,Miller C,Bitterman KJ,et al.Calorie restriction promotes mammalian cell survival by inducing the SIRT1 deacetylase[J].Science,2004,305(5682):390-392.

[15]Brunet A,Sweeney LB,Sturgill JF,et al.Stress-dependent regulation of FOXO transcription factors by the SIRT1 deacetylase[J].Science,2004,303(5666):2011-2015.

[16]Motta MC,Divecha N,Lemieux M,et al.Mammalian SIRT1 represses forkhead transcription factors[J].Cell,2004,116(4):551-563.

[17]Daitoku H,Hatta M,Matsuzaki H,et al.Silent information regulator 2 potentiates Foxo1-mediated transcription through its deacet?ylase activity[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2004,101(27):10042-10047.

[18]Rodgers JT,Lerin C,Haas W,et al.Nutrient control of glucose homeostasis through a complex of PGC-1alpha and SIRT1[J].Na?ture,2005,434(7029):113-118.

[19]Fulco M,Schiltz RL,Iezzi S,et al.Sir2 regulates skeletal muscle differentiation as a potential sensor of the redox state[J].Mol Cell,2003,12(1):51-62.

[20]Purushotham A,Schug TT,Xu Q,et al.Hepatocyte-specific deletion of SIRT1 alters fatty acid metabolism and results in hepatic steatosis and inflammation[J].Cell Metab,2009,9(4):327-338.

[21]Nie Y,Erion DM,Yuan Z,et al.STAT3 inhibition of gluconeogenesis is downregulated by SirT1[J].Nat Cell Biol,2009,11(4):492-500.

[22]Frescas D,Valenti L,Accili D.Nuclear trapping of the forkhead transcription factor FoxO1 via Sirt-dependent deacetylation pro?motes expression of glucogenetic genes[J].J Biol Chem,2005,280(21):20589-20595.

[23]Sun C,Zhang F,Ge X,et al.SIRT1 improves insulin sensitivity under insulin-resistant conditions by repressing PTP1B[J].Cell Metab,2007,6(4):307-319.

[24]Li Y,Xu S,Giles A,et al.Hepatic overexpression of SIRT1 in mice attenuates endoplasmic reticulum stress and insulin resistance in the liver[J].FASEB J,2011,25(5):1664-1679.

[25]Qiang L,Lin HV,Kim-Muller JY,et al.Proatherogenic abnormalities of lipid metabolism in SirT1 transgenic mice are mediated through Creb deacetylation[J].Cell Metab,2011,14(6):758-767.

[26]Wang RH,Li C,Deng CX.Liver steatosis and increased ChREBP expression in mice carrying a liver specific SIRT1 null mutation under a normal feeding condition[J].Int J Biol Sci,2010,6(7):682-690.

[27]Li X,Zhang S,Blander G,et al.SIRT1 deacetylates and positively regulates the nuclear receptor LXR[J].Mol Cell,2007,28(1):91-106.

[28]Kemper JK,Xiao Z,Ponugoti B,et al.FXR acetylation is normally dynamically regulated by p300 and SIRT1 but constitutively el?evated in metabolic disease states[J].Cell Metab,2009,10(5):392-404.

[29]Walker AK,Yang F,Jiang K,et al.Conserved role of SIRT1 orthologs in fasting-dependent inhibition of the lipid/cholesterol regu?lator SREBP[J].Genes Dev,2010,24(13):1403-1417.

[30]Ponugoti B,Kim DH,Xiao Z,et al.SIRT1 deacetylates and inhibits SREBP-1C activity in regulation of hepatic lipid metabolism[J].J Biol Chem,2010,285(44):33959-33970.

[31]Baur JA,Pearson KJ,Price NL,et al.Resveratrol improves health and survival of mice on a high-calorie diet[J].Nature,2006,444(7117):337-342.

[32]Lagouge M,Argmann C,Gerhart-Hines Z,et al.Resveratrol improves mitochondrial function and protects against metabolic dis?ease by activating SIRT1 and PGC-1alpha[J].Cell,2006,127(6):1109-1122.

[33]Milne JC,Lambert PD,Schenk S,et al.Small molecule activators of SIRT1 as therapeutics for the treatment of type 2 diabetes[J].Nature,2007,450(7170):712-716.

[34]Beher D,Wu J,Cumine S,et al.Resveratrol is not a direct activator of SIRT1 enzyme activity[J].Chem Biol Drug Des,2009,74(6):619-624.

[35]Gerhart-Hines Z,Rodgers JT,Bare O,et al.Metabolic control of muscle mitochondrial function and fatty acid oxidation through SIRT1/PGC-1alpha[J].EMBO J,2007,26(7):1913-1923.

[36]Mootha VK,Handschin C,Arlow D,et al.Erralpha and Gabpa/b specify PGC-1alpha-dependent oxidative phosphorylation gene expression that is altered in diabetic muscle[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2004,101(17):6570-6575.

[37]Elchebly M,Payette P,Michaliszyn E,et al.Increased insulin sensitivity and obesity resistance in mice lacking the protein tyro?sine phosphatase-1B gene[J].Science,1999,283(5407):1544-1548.

[38]Schenk S,McCurdy CE,Philp A,et al.Sirt1 enhances skeletal muscle insulin sensitivity in mice during caloric restriction[J].J Clin Invest,2011,121(11):4281-4288.

[39]Tontonoz P,Spiegelman BM.Fat and beyond:the diverse biology of PPARgamma[J].Annu Rev Biochem,2008,77:289-312.

[40]Picard F,Kurtev M,Chung N,et al.Sirt1 promotes fat mobilization in white adipocytes by repressing PPAR-gamma[J].Nature,2004,429(6993):771-776.

[41]Nemoto S,Fergusson MM,Finkel T.Nutrient availability regulates SIRT1 through a forkhead-dependent pathway[J].Science,2004,306(5704):2105-2108.

[42]Luo J,Nikolaev AY,Imai S,et al.Negative control of p53 by Sir2alpha promotes cell survival under stress[J].Cell,2001,107(2):137-148.

[43]Chen WY,Wang DH,Yen RC,et al.Tumor suppressor HIC1 directly regulates SIRT1 to modulate p53-dependent DNA-damage responses[J].Cell,2005,123(3):437-448.

[44]Zhang Q,Wang SY,Fleuriel C,et al.Metabolic regulation of SIRT1 transcription via a HIC1:CtBP corepressor complex[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2007,104(3):829-833.

[45]Stankovic-Valentin N,Deltour S,Seeler J,et al.An acetylation/deacetylation-SUMOylation switch through a phylogenetically con?served psiKXEP motif in the tumor suppressor HIC1 regulates transcriptional repression activity[J].Mol Cell Biol,2007,27(7):2661-2675.

[46]Wang C,Chen L,Hou X,et al.Interactions between E2F1 and SirT1 regulate apoptotic response to DNA damage[J].Nat Cell Biol,2006,8(9):1025-1031.

[47]Kwon HS,Ott M.The ups and downs of SIRT1[J].Trends Biochem Sci,2008,33(11):517-525.

[48]Yamakuchi M.MicroRNA Regulation of SIRT1[J].Front Physiol,2012(3):68.

[49]Yamakuchi M,Ferlito M,Lowenstein CJ.miR-34a repression of SIRT1 regulates apoptosis[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105(36):13421-13426.

[50]Nemoto S,Fergusson MM,Finkel T.SIRT1 functionally interacts with the metabolic regulator and transcriptional coactivator PGC-1{alpha}[J].J Biol Chem,2005,280(16):16456-16460.

[51]Lee J,Padhye A,Sharma A,et al.A pathway involving farnesoid X receptor and small heterodimer partner positively regulates he?patic sirtuin 1 levels via microRNA-34a inhibition[J].J Biol Chem,2010,285(17):12604-12611.

[52]Zhang L,Wang X,Chen P.MiR-204 down regulates SIRT1 and reverts SIRT1-induced epithelial-mesenchymal transition,anoi?kis resistance and invasion in gastric cancer cells[J].BMC Cancer,2013,13:290.

[53]Menghini R,Casagrande V,Cardellini M,et al.MicroRNA 217 modulates endothelial cell senescence via silent information regula?tor 1[J].Circulation,2009,120(15):1524-1532.

[54]Ramachandran D,Roy U,Garg S,et al.Sirt1 and mir-9 expression is regulated during glucose-stimulated insulin secretion in pan?creatic beta-islets[J].FEBS J,2011,278(7):1167-1174.

[55]Jin D,Tan HJ,Lei T,et al.Molecular cloning and characterization of porcine sirtuin genes[J].Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol,2009,153(4):348-358.

[56]Shan TZ,Ren Y,Wu T,et al.Regulatory role of Sirt1 on the gene expression of fatty acid-binding protein 3 in cultured porcine ad?ipocytes[J].J Cell Biochem,2009,107(5):984-991.

[57]Pang WJ,Xiong Y,Zhang Z,et al.Lentivirus-mediated Sirt1 shRNA and resveratrol independently induce porcine preadipocyte apoptosis by canonical apoptotic pathway[J].Mol Biol Rep,2013,40(1):129-139.

[58]Shan T,Ren Y,Wang Y.Sirtuin 1 affects the transcriptional expression of adipose triglyceride lipase in porcine adipocytes[J].J Anim Sci,2013,91(3):1247-1254.

[59]Liu X,Liu G,Tan X,et al.Gene expression profiling of SIRT1,FoxO1,and PPARgamma in backfat tissues and subcutaneous adi?pocytes of Lilu bulls[J].Meat Sci,2014,96(2 Pt A):704-711.

[60]Han C,Wan H,Ma S,et al.Role of mammalian sirtuin 1(SIRT1)in lipids metabolism and cell proliferation of goose primary hepa?tocytes[J].Mol Cell Endocrinol,2014,382(1):282-191.

猜你喜歡
脂類乙?;?/a>調控
抑癌蛋白p53乙?;揎椀恼{控網絡
如何調控困意
經濟穩(wěn)中有進 調控托而不舉
拉薩凈土藏雞蛋和普通雞蛋的脂類物質含量比較分析
兩城鎮(zhèn)陶器的脂類殘留物分析
順勢而導 靈活調控
中國組織化學與細胞化學雜志(2016年4期)2016-02-27
多胺和植物激素對巴氏杜氏藻生長及脂類含量的影響
SUMO修飾在細胞凋亡中的調控作用
組蛋白去乙?;敢种苿┑难芯窟M展
通化市| 伊金霍洛旗| 连山| 望奎县| 手游| 剑河县| 天台县| 津市市| 阆中市| 九龙城区| 多伦县| 友谊县| 诸暨市| 沂水县| 东山县| 洪泽县| 松溪县| 大洼县| 扎赉特旗| 苏尼特左旗| 齐齐哈尔市| 新昌县| 五峰| 博罗县| 玉门市| 青田县| 错那县| 汶上县| 临猗县| 舞钢市| 宜良县| 恭城| 福安市| 岳阳市| 安西县| 格尔木市| 张掖市| 泰来县| 河津市| 页游| 汉源县|